Генотипирование герпесвирусов крупного рогатого скота на основе однонуклеотидных полиморфизмов и полногеномного сиквенса
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Микробиология, вирусология, молекулярная биология
Статья в выпуске: 4 т.61, 2026 года.
Бесплатный доступ
Вирус герпеса крупного рогатого скота 1-го типа (BоAHV1, по современной классификации Varicellovirus bovinealpha1) — один из основных патогенов, поражающих крупный рогатый скот во всем мире и вызывающий как респираторные, так репродуктивные патологии, включая аборты и бесплодие у коров. У вируса выделено три подгруппы (1.1, 1.2а, 1.2b), неодинаково распространенные в мире. Вирус герпеса крупного рогатого скота 5-го типа (BоAHV5, Varicellovirus bovinealpha5), ранее относившийся к BоAHV1, распространен преимущественно в Южной Америке. BоAHV1 и BоAHV5 вызывают заболевания, сходные по клиническим признакам, и остаются предметом пристального внимания. Особенно актуально изучение распространения и частоты выявления этих агентов и их генетических подгрупп. В настоящей работе впервые установлено генетическое разнообразие герпесвирусов, циркулирующих в популяции крупного рогатого скота на территории бывшего СССР и Российской Федерации. Были дифференцированы 22 штамма и изолята герпесвирусов крупного рогатого скота (BоAHV1 и BоAHV5). Показано наличие в исследованном пуле представителей всех трех известных генетических типов и подтипов BоAHV1 (1.1, 1.2a и 1.2b), а также изолятов, принадлежащих к BоAHV5. Целью работы было генотипирование штаммов и изолятов герпесвирусов крупного рогатого скота, выделенных на территории бывшего СССР и Российской Федерации, при помощи полногеномного сиквенса и поиск однонуклеотидных полиморфизмов для определения генетических подгрупп. Работу проводили в 2022-2025 годах в Институте экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока ФГБУН Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий РАН, в ФБУН Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Роспотребнадзора и в ФГБНУ Федеральный научный центр — Всероссийский НИИ экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко. Объектами исследования были 21 штамм и изолят BоAHV1, выделенные на территории бывшего СССР и Российской Федерации в период 1969-2004 год, а также вакцинный штамм ТК-А(ВИЭВ)В2, входящий в состав живых вакцин против инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота, длительное время применявшихся в нашей стране для специфической профилактики болезни. Все агенты перед секвенированием прошли три пассажа в культуре клеток MDBK на среде Игла МЕМ с глутамином и добавлением 5 % эмбриональной сыворотки и антибиотиков. Нуклеиновые кислоты экстрагировали с использованием набора лабораторных реагентов для выделения общей ДНК QIAamp DNA Mini Kit (250) («Qiagen», США). Элюцию ДНК с мембраны проводили буфером ТЕ. Концентрацию полученной ДНК измеряли с помощью Qubit 3.0 с применением набора реагентов Qubit dsDNA HS Assay Kit («Thermo Fisher Scientific Inc.», США) и затем использовали для подготовки библиотек NGS методом лигирования Y-образных адаптеров («Illumina, Inc.», США). Секвенирование осуществляли на платформе MiSeq («Illumina, Inc.», США) с использованием набора для секвенирования MiSeq Reagent Kit v2 (500-cycles) («Illumina, Inc.», США). Анализ последовательностей фрагментов вируса проводили при помощи пакета MIRA (v.4.9.6), BWA (Burrows-Wheeler Aligner) (v.0.7.15), IGV (v.2.3.78), Samtools (v.1.3.1), GenomeAnalysisTK (v.3.6) (22). Полногеномные последовательности выравнивали при помощи Ugene (v.1.24.1) с использованием алгоритма MAFFT (Multiple Alignment using Fast Fourier Transform) (v7.407) по последовательности штамма Cooper (KU198480.2). Выравнивание последовательностей генов и поиск сайтов для рестриктаз проводили в программе Mega 7 (https://www.megasoftware.net/) по последовательности штамма Cooper (KU198480.2) в соответствии с информацией о последовательности генов, представленных в GenBank. Построение филогенетических деревьев проводили в программе Mega 7. Филогенетический анализ осуществляли методом ближайших соседей (Neighbor-Joining method), матрицу генетических расстояний рассчитывали методом минимальной эволюции. Анализ однонуклеотидных полиморфизмов на сайтах рестрикции HPA I, Sac II, Hind III на участках генов UL28, US3 и UL39, а также филогенетический анализ генов US8 и UL27 показали наличие в исследованном пуле представителей всех трех известных генетических групп BоAHV1 (1.1, 1.2a и 1.2b). На основе выявленных SNP в секвенированных последовательностях были выделены следующие группы: тип 1.1. — 7 последовательностей BоAHV1, субтип 1.2а — 4 последовательности BоAHV1, субтип 1.2b — 3 последовательности BоAHV1, тип 1.3 — 8 последовательностей BоAHV5, включая штамм ТК-А. Результаты типирования были подтверждены филогенетическим анализом герпесвирусов по генам гликопротеинов Е и B. Поскольку некоторые штаммы, отнесенные к субтипу 1.3, были выделены до массового применения вакцины из штамма ТК-А и вызывали заболевание при экспериментальном введении телятам, можно предположить, что они имеют естественное происхождение или возникли либо в результате мутаций, либо рекомбинаций ТК-А и полевых штаммов BоAHV1. Для подтверждения этого необходимо проведение дальнейших исследований.
Короткий адрес: https://sciup.org/142248606
IDS: 142248606 | УДК: 636.22/.28:619:616.98:578.825.1-078:57.088:537 | DOI: 10.15389/agrobiology.2026.4.673rus
Genotype analysis of cattle herpesviruses using single-nucleotide polymorphisms and whole-genome sequencing
Bovine herpesvirus type 1 (BoAHV1, currently classified as Varicellovirus bovinealpha1) is a major pathogen affecting cattle worldwide causing both respiratory and reproductive disorders including abortion and infertility in cows. Three subgroups of this virus (1.1, 1.2a, and 1.2b) are distinguished with varying global distributions. Bovine herpesvirus type 5 (BoAHV5, Varicellovirus bovinealpha5) previously classified as BoAHV1 is distributed primarily in South America. BoAHV1 and BoAHV5 cause diseases with similar clinical signs and remain the subject of close attention. Studying the distribution and detection rates of these agents and their genetic subgroups is particularly important. This study establishes for the first time the genetic diversity of herpesviruses circulating in cattle populations in the former USSR and the Russian Federation. Twenty-two strains and isolates of bovine herpesviruses (BoAHV1 and BoAHV5) were differentiated. Representatives of all three known genetic types and subtypes of BoAHV1 (1.1, 1.2a, and 1.2b), as well as isolates belonging to BoAHV5 were found in the studied pool. The aim of this study was to genotype bovine herpesvirus strains and isolates allocated from animals in the former USSR and the Russian Federation using whole-genome sequencing and to search for single-nucleotide polymorphisms to determine genetic subgroups. The study was conducted from 2022 to 2025 at the Institute of Experimental Veterinary Medicine of Siberia and the Far East of the Siberian Federal Research Center of Agrobiotechnology of the Russian Academy of Sciences, the State Research Center of Virology and Biotechnology Vector of Rospotrebnadzor and the Federal Research Center — Skryabin and Kovalenko All-Russian Research Institute of Experimental Veterinary Medicine. The study involved 21 BoAHV1 strains and isolates allocated in the former USSR and the Russian Federation between 1969 and 2004, as well as the TK-A(VIEV)B2 vaccine strain which as part of live vaccines against infectious bovine rhinotracheitis was used for a long time in our country for the specific prevention of the disease. Before sequencing, all agents underwent three passages in MDBK cell culture in Eagle's MEM medium with glutamine and the addition of 5% fetal serum and antibiotics. Nucleic acids were extracted using the QIAamp DNA Mini Kit (250) (Qiagen, USA) for the isolation of total DNA. DNA was eluted from the membrane with TE buffer. The concentration of the obtained DNA was measured with a Qubit 3.0 using the Qubit dsDNA HS Assay Kit (Thermo Fisher Scientific Inc., USA) and then used to prepare NGS libraries by Y-adapter ligation (Illumina, Inc., USA). Sequencing was performed on the MiSeq platform (Illumina, Inc., USA) using the MiSeq Reagent Kit v2 (500-cycles) (Illumina, Inc., USA). Sequence analysis of virus fragments was performed using the MIRA package (v.4.9.6), BWA (Burrows-Wheeler Aligner) (v.0.7.15), IGV (v.2.3.78), Samtools (v.1.3.1), Genome Analysis TK (v.3.6) (22). Whole-genome sequences were aligned using Ugene (v.1.24.1) with the MAFFT (Multiple Alignment using Fast Fourier Transform) algorithm (v7.407) against the Cooper (KU198480) strain sequences. Gene sequence alignment and restriction enzyme site search were performed using the Mega 7 program (https://www.megasoftware.net/) against the Cooper (KU198480.2) strain sequences in accordance with the gene sequence information provided in GenBank. Phylogenetic trees were constructed using the Mega 7 program. Phylogenetic analysis was performed using the neighbor-joining method, and the genetic distance matrix was calculated using the minimal evolution method. Analysis of single nucleotide polymorphisms at the restriction sites HPA I, Sac II and Hind III in the UL28, US3, and UL39 genes, as well as phylogenetic analysis of the US8 and UL27 genes, revealed the presence of representatives of all three known BоAHV1 genetic groups (1.1, 1.2a, and 1.2b) in the studied pool. Based on the SNPs identified in the sequenced sequences, the following groups were distinguished: type 1.1 — 7 BоAHV1 sequences, subtype 1.2a — 4 BоAHV1 sequences, subtype 1.2b — 3 BоAHV1 sequences, type 1.3 — 8 BоAHV5 sequences including the TK-A strain. The typing results were confirmed by phylogenetic analysis of herpesviruses based on the E and B glycoprotein genes. Since some strains classified as subtype 1.3 were isolated from the TK-A strain prior to the widespread using of the vaccine and caused disease when experimentally administered to calves, it can be assumed that they are of natural origin or arose either as a result of mutations or recombinations between TK-A and field strains of BoAHV1. Further researches are needed to confirm this assumption.