Генотипирование коров по локусам каппа-казеина, бета-лактоглобулина и BLAD-мутации
Автор: Ахметов Т.М., Тюлькин С.В., Валиуллина Э.Ф.
Статья в выпуске: 1 т.205, 2011 года.
Бесплатный доступ
В данной работе у коров определены частоты встречаемости генотипов и аллелей каппа-казеина, бета-лактоглобулина и BLAD-мутации. Исследования показали, что частота аллеля А генов каппа-казеина и бета-лактоглобулина составила 0,80 и 0,41, аллеля В - 0,20 и 0,59 соответственно. Не выявлено ни одного животного-носителя мутантного аллеля BLAD-мутации.
K-казеин, в-лактоглобулин, blad-мутация, днк, пцр-пдрф, аллель, генотип
Короткий адрес: https://sciup.org/14287118
IDR: 14287118
Текст научной статьи Генотипирование коров по локусам каппа-казеина, бета-лактоглобулина и BLAD-мутации
Насыщение рынка продовольствия качественными продуктами отечественного производства в достаточном объёме невозможно без интенсификации животноводства , где одной из составляющих является эффективная селекция . Сегодня уже ни у кого не вызывает сомнения эффективность использования генетических маркёров , таких как группы крови , биохимические белки , ферменты , а также новых маркёров , выявляемых с помощью ПЦР - анализа ( полимеразная цепная реакция ). Применение такой маркёрной технологии в селекции позволяет выявлять генетические дефекты и прогнозировать генетический потенциал продуктивности животных сразу после рождения ( Г . М . Гончаренко , 2009).
В качестве потенциальных маркеров молочной продуктивности могут рассматриваться гены молочных белков, а именно каппа-казеина и бета-лактоглобулина. Ген каппа-казеина – связан с белковомолочностью и технологическими свойствами молока. Аллель В гена каппа-казеина ассоциирована с более высоким содержанием белка в молоке. Ген бета-лактоглобулина отвечает за белковомолочность и показатель биологической ценности молока. Аллель В гена бета-лактоглобулина связана с высоким содержанием в молоке казеиновых белков, высоким процентом жира, тогда как аллель А характеризуется с высоким содержанием сывороточных белков (N. Strzalkowska et al., 2002; Я.А. Хабибрахманова, 2009).
Широкий обмен генетическим материалом между странами сопровождается распространением различных инфекционных заболеваний , а также заболеваний , вызываемых редкими мутациями , возникающими у выдающихся представителей коммерческих пород . В отдельных случаях наблюдается высокая скорость распространения таких мутаций . Огромный экономический ущерб обусловливает необходимость строго генетического контроля импортируемого генетического материала , а также изучение возможных механизмов распространения мутаций ( А . Е . Маріуца , 2005).
Одним из таких наследственных заболеваний крупного рогатого скота является BLAD - мутация , характеризующаяся дефицитом лейкоцитарной адгезии ( Г . М . Гончаренко , 2009).
В связи с этим , мы изучили у коров частоты генов каппа - казеина и бета - лактоглобулина , определяющих белковый состав молока и BLAD - мутации , связанной с резистентностью к заболеваниям .
Материалы и методы . Исследования проводились в ООО им . Тукая Балтасинского района Республики Татарстан . Для определения полиморфизма генов каппа - казеина и бета - лактоглобулина , а также BLAD - мутации было отобрано 107 черно - пёстрых голштинских коров .
Кровь , получали из яремной вены животных , вносили в пробирки с 100 мМ ЭДТА до конечной концентрации 10 мМ .
Выделение ДНК из крови проводили разработанным и оптимизированным нами аммиачным способом .
Генотипирование коров по гену каппа - казеина проводили разработанными и оптимизированными нами способами : 1. высокоточной ПЦР и 2. аллель - специфичной ПЦР .
-
1. ПЦР проводили на программируемом термоциклере « Терцик » ( Россия ) в объеме 20 мкл , содержащей 60 м M Трис -HCl (pH 8,5), 1,5 мМ MgCl2, 25 мМ KCl, 10 мМ меркаптоэтанол ; 0,1 мМ тритон Х -100; 0,2 мМ дНТФ , 0.5 ед . Taq ДНК полимеразы ; по 0,5 мкМ праймеров JK5-hs ( состоит из 5/- некомплементарного участка ( n ) длиной 5 нуклеотидов и 3/- комплементарного участка ( N ) длиной 25 нуклеотидов ( расчетная nN T m =700C; N T m =60,80C) и JK3-hs ( состоит из 5/- некомплементарного участка ( n ) длиной 4 нуклеотида и 3/- комплементарного участка ( N ) длиной 26 нуклеотидов ( расчетная nN Tm =73,50C; N Tm =66,70C),
сконструированных Р . Р . Вафиным и др . (2007); 1 мкл пробы ДНК , в следующих режимах :
-
2. ПЦР проводили на программируемом термоциклере « Терцик » ( Россия ) в объеме 20 мкл , содержащей 60 м M Трис -HCl (pH 8,5), 1,5 мМ MgCl 2 , 25 мМ KCl, 10 мМ меркаптоэтанол ; 0,1 мМ тритон Х -100; 0,2 мМ дНТФ ; 0,5 ед . Taq ДНК полимеразы , 2 пары аллель - специфичных праймеров по 0,5 мкМ каждого : 1- ая пара B - аллель - специфичных праймеров «B-F-hs» и «B-R-hs» и 2- ая пара A - аллель - специфичных праймеров «A-F-hs» и «A-R-hs», сконструированных Р . Р . Вафиным и др . (2008); 1 мкл пробы ДНК , в следующем оптимальном режиме амплификации : ×1: 940 С – 4 мин ; ×40: 940 С – 1 мин , 720 С – 1 мин ; ×1: 720 С – 10 мин .
×1: 940 С – 4 мин ; ×40: 940 С – 30 сек , 720 С – 30 сек ; ×1: 720 С – 10 мин ,
×1: 940 С – 4 мин ; ×40: 940 С – 10 сек , 680 С – 20 сек ; ×1: 720 С – 5 мин , ×1: 940 С – 4 мин ; ×40: 940 С – 10 сек , 720 С – 20 сек ; ×1: 720 С – 5 мин . Для определения аллельного полиморфизма гена каппа - казеина по вариантам А и В 20 мкл ПЦР пробы обрабатывали 10 ед . эндонуклеазы рестрикции HinfI в 1× буфере « О » или 10 ед . эндонуклеазы рестрикции HindIII в × буфере «W» фирмы СибЭнзим ( Россия ) при 370C в течение ночи .
Генотипирование коров по гену бета - лактоглобулина проводили оптимизированным нами способом .
ПЦР проводили на программируемом термоциклере « Терцик » ( Россия ) в объеме 20 мкл , содержащей буфер (60 мМ трис -HCl ( рН 8,5), 1,5 мМ MgCl 2 , 25 мМ KCl, 10 мМ меркаптоэталол ; 0,1 мМ тритон Х -100), 0,2 мМ dNTP, 0,2 мкл Taq ДНК полимеразы , 0,5 мкМ праймера BLGP3, 0,5 мкМ праймера BLGP4, сконструированных Дж . Ф . Медрано , Е . Акилар - Кордова (J.F. Medrano, E. Aguilar-Cordova, 1990), 1 мкл пробы ДНК в следующем режиме : ×1:940 С – 4 мин ; ×38:940 С – 10 сек , 600 С – 10 сек , 720 С – 10 сек ; ×1:720 С – 5 мин ; хранение : 40 С .
Для определения полиморфизма гена бета - лактоглобулина по вариантам А и В 20 мкл ПЦР пробы обрабатывали 5 ед . эндонуклеазы рестрикции Hae III в 1× буфере « С » фирмы СибЭнзим ( Россия ) при 370 С течение ночи .
Выявление животных - носителей BLAD - мутации осуществляли оптимизированным нами способом .
ПЦР проводили на программируемом термоциклере « Терцик » ( Россия ) в объеме 20 мкл , содержащей буфер (60 мМ трис -HCl ( рН 8,5), 1,5 мМ MgCl 2 , 25 мМ KCl, 10 мМ меркаптоэталол ; 0,1 мМ тритон Х -100), 0,2 мМ dNTP, 0,2 мкл Taq ДНК полимеразы , по 0,5 мкМ праймеров BLAD-F и BLAD-R, сконструированных К . Е . Грир и др . (C.E. Greer et al., 1991), 1 мкл пробы ДНК в следующем режиме : ×1:940 С – 4 мин ; ×40:940 С – 20 сек , 690 С – 20 сек , 720 С – 20 сек ; ×1:720 С – 7 мин ; хранение : 40 С .
Для выявления BLAD - мутации 20 мкл ПЦР пробы обрабатывали 5 ед . эндонуклеазы рестрикции Hae III в 1× буфере « С » фирмы СибЭнзим ( Россия ) при 37 0 С течение ночи .
Для визуализации фрагментов ДНК пробы вносили в лунки 2,5% ( каппа - казеин и бета - лактоглобулин ) и 4% ( BLAD - мутация ) агарозного геля с содержанием этидия бромида (0,5 мкг / мл ) и проводили горизонтальный электрофорез при 15 В / см в течение 40 мин в 1× ТВЕ буфере .
После электрофореза гель просматривали в УФ - трансиллюминаторе при длине волны 310 нм . Идентификацию генотипов каппа - казеина , бета - лактоглобулина и BLAD - мутации определяли по количественным и качественным признакам .
Частоту встречаемости генотипов каппа - казеина и бета - лактоглобулина определяли по формуле : р = n / N , где р – частота определения генотипа , n – количество особей , имеющих определенный генотип , N – число особей .
Частоту отдельных аллелей определяли по формулам :
Р А = (2nAA+nAB) : 2N и q B = (2nBB+nAB) : 2N , где P А – частота аллеля А , qB – частота аллеля В , N – общее число аллелей .
По закону Харди - Вайнберга ( В . Л . Петухов , А . И . Жигачёв , Г . А . Назарова , 1985) рассчитывали ожидаемые частоты генотипов в исследуемой популяции .
Результаты исследований . При проведении высокоточной ПЦР в режиме разработанного нами способа для амплификации фрагмента гена каппа - казеина крупного рогатого скота с модифицированными праймерами JK5-hs: 5/-gggggATCATTTATGGCCATTCCACCAAAG-3/ и JK3-hs: 5/-ccccGCCCATTTCGCCTTCTCTGTAACAGA-3/ амплифицировались только специфичные ПЦР продукты размером 363 bp.
На основании положительного результата по исключению неспецифичной амплификации нами были предприняты дальнейшие действия по оптимизации режима 2- х стадийной ПЦР с температурным совмещением стадий отжига и синтеза при 68 (72)0 С .
В режиме 2- х стадийной ПЦР модифицированные праймеры JK5-hs и JK3-hs эффективно инициируют амплификацию фрагмента гена каппа - казеина крупного рогатого скота длиной 359 bp, а ПДФР - HinfI профиль ( AA =139/131/89 bp, BB =270/89 bp и AB =270/139/131/89 bp) и ПДФР - HindIII профиль ( AA =359 bp, BB =222/137 bp и AB =359/222/137 bp) идентифицируют его генотипы .
При проведения аллель - специфичной ПЦР для генотипирования крупного рогатого скота по аллелям А и В гена каппа - казеина используются две пары аллель - специфичных праймеров , не имеющие дополнительных некомплементарных ни к одному из аллелей гена каппа - казеина крупного рогатого скота «mismatch- нуклеотидов » в позиции –2 от
3/- терминальных нуклеотидов праймеров , но имеющие 5/- некомплементарные участки (n) длиной 5-3 нуклеотидов : В - аллель - специфичные праймеры «B-F-hs»: 5/-cccccGTGAGCCTACAAGTACACCTACCAT-3/ и «B-R-hs»: 5/-cCcccGATGTCTCCT TAGAGTATTTAGACC-3/, которые инициируют амплификацию В - аллель - специфичного фрагмента ДНК гена каппа - казеина крупного рогатого скота размером 156 bp; А - аллель - специфичные праймеры A-F-hs: 5/-gggggCTGTTCACACACAAAAACAGTAAAG-3/ и A-R-hs: 5/-gggGGGTGCCT AACCTTATACAGCCTTTCG-3/, которые инициируют амплификацию А - аллель - специфичного фрагмента ДНК гена каппа - казеина крупного рогатого скота размером 242 bp; проводили 2- х стадийную ПЦР с совмещением температуры отжига и синтеза при 720 С .
При проведении ПЦР - анализа в ООО им . Тукая черно - пестро х голштинских коров по локусу гена каппа - казеина нами получены следующие результаты , что из 107 коров 68 (63,6%) имели генотип АА ; 36 (33,6%) – АВ и лишь 3 (2,8%) – ВВ . При этом частота аллеля А составила 0,80, а аллеля В – 0,20 ( табл . 1).
1. Частота встречаемости генотипов и аллелей гена каппа - казеина у коров
Хозяйство |
n |
Частота генотипов |
Частота аллелей |
χ 2 |
|||||||
АА |
АВ |
ВВ |
|||||||||
n |
% |
n |
% |
n |
% |
А |
В |
||||
ООО им . Тукая |
Н |
107 |
68 |
63,6 |
36 |
33,6 |
3 |
2,8 |
0,80 |
0,20 |
0,38 |
О |
69 |
64,0 |
34 |
32,0 |
4 |
4,0 |
Н – наблюдаемое распределение генотипов , О – ожидаемое распределение генотипов .
Для оценки качества работы известных протоколов по генотипированию крупного рогатого скота по гену бета - лактоглобулина нами была протестирована пара олигонуклеотидных праймеров : BLGP3: 5'-GTCCTTGTGCTGGACACCGACTACA-3', праймера BLGP4: 5'-CAGGACAC CGGCTCCCGGTATATGA - 3' по оптимизированной нами технике ПЦР - ПДРФ .
Праймеры BLGP3+BLGP4 инициируют амплификацию фрагмента гена бета - лактоглобулина крупного рогатого скота длиной 262 bp, а β -LGB- ПДРФ - HaeIII профиль (AA=153/109 bp, BB=109/79/74 bp и AB=153/109/79/74) идентифицирует его генотипы .
При исследовании в ООО им. Тукая черно-пестро х голштинских коров по локусу гена бета-лактоглобулина методом ДНК-анализа получены следующие результаты, что из 107 коров 14 имели генотип АА, 60 коров – генотип АВ, 33 коровы – генотип ВВ. Частота гомозиготного генотипа АА составила 13,1%, гетерозиготного генотипа АВ – 56,1%, гомозиготного генотипа ВВ –30,8%, при этом частота аллеля А составила 0,41 и аллеля В – 0,59 соответственно (табл. 2).
2. Частота встречаемости генотипов и аллелей гена бета - лактоглобулина у коров
Хозяйство |
n |
Частота генотипов |
Частота аллелей |
χ 2 |
|||||||
АА |
АВ |
ВВ |
|||||||||
n |
% |
n |
% |
n |
% |
А |
В |
||||
ООО им . Тукая |
Н |
107 |
14 |
13,1 |
60 |
56,1 |
33 |
30,8 |
0,41 |
0,59 |
2,55 |
О |
18 |
16,8 |
52 |
48,4 |
37 |
34,8 |
Н – наблюдаемое распределение генотипов , О – ожидаемое распределение генотипов .
Для оценки качества работы известных протоколов по выявлению у крупного рогатого скота BLAD - мутации нами была протестирована пара олигонуклеотидных праймеров : BLAD-F: 5/-TCCGGAGGGCCAAGGGCTA-3/ и BLAD-R: 5/-GAGTAGGAGAGGTCCATCAGGTAGTACAGG-3/ по оптимизиро - ванной нами технике ПЦР - ПДРФ .
Праймеры BLAD-F+BLAD-R инициируют амплификацию фрагмента для выявления BLAD - мутации крупного рогатого скота длиной 58 bp, у здоровых животных ПДРФ - HaeIII профиль 49/9 bp, у больных животных 30/19/9 bp и у животных - носителей BLAD - мутации 49/30/19/9.
Из протестированных 107 коров , принадлежащих ООО им . Тукая методом ПЦР на носительство BLAD - мутации , нами не выявлено ни одного животного - носителя данного генетического заболевания .
Вывод . При распределении частот аллелей и генотипов гена каппа - казеина у черно - пестро х голштинских коров ООО им . Тукая преобладал аллель А с частотой 0,80 и генотип АА с частотой 63,6%. Частота генотипа ВВ была низкой – 2,8%. В изученном стаде преобладал В аллель гена бета - лактоглобулина с частотой 0,59. Среди коров чаще представлен генотип АВ (56,1%). Животных носителей BLAD- мутации не обнаружено .
ЛИТЕРАТУРА: 1. Гончаренко, Г.М. Генетическая структура популяций сельскохозяйственных животных Западной Сибири и использование маркёров в селекции: автореф. дисс. … докт. биол. наук : 06.02.01 / Гончаренко Галина Моисеевна. – Новосибирск, 2009. – 37 с. 2. Патент РФ на изобретение № 2299240 Способ проведение ПЦР / Рамиль Р. Вафин, Раиф Р. Вафин, Т.М. Ахметов, Ш.К. Шакиров, Ф.Ф. Замалиева, И.В. Пикалова И.В., Р.Х. Равилов, И.Х. Бакиров. – Приоритет изобретения 21.02.2005. – Зарегистр. в Гос. реестре изобретений РФ 20.05.2007. – Бюл. № 14. 3. Патент РФ на изобретение № 2337141 Способ проведение аллель-специфичной ПЦР для генотипирования крупного рогатого скота по аллелям А и В гена каппа-казеина / Рамиль Р. Вафин, Т.М. Ахметов, Э.Ф. Валиуллина, О.Г. Зарипов, Раиф Р. Вафин. – Приоритет изобретения 25.09.2006. – Зарегистр. в Гос. реестре изобретений РФ 27.10.2008. – Бюл. № 30. 4. Хабибрахманова, Я.А. Полиморфизм генов молочных белков и гормонов крупного рогатого скота : автореф. дисс. канд. биол. наук: 06.02.01 / Хабибрахманова Язиля Аминовна. – Лесные Поляны. – 2009. – 19 с. 5. Greer, C.R. PCR amplification from paraffin embedded tissues: Effects of fixative and fixation times / C.R. Greer, S.L. Peterson, N.B. Kiviat, M.M. Manos // American Journal of Clinical Pathology, 1991. – 95: 117-124. 6. Маріуца, А.Е. Популяційно-генетичні механізми адаптації і розповсюдження напівлетальних рецесивних мутацій на прикладі BLAD у великої рогатої худоби: автореф. дис... канд. с.-г. наук: 03.00.15 / Маріуца Алла Ергашівна. – Кieв, 2005. – 22 с. 7. Medrano, J.F. Polymerase chain reaction of bovine β-lactoglobuline genomic sequences and identification of genetic variants by RFLP analysis / J.F. Medrano, Е. Aguilar-Cordova // Animal Biotechnology. – 1990. – № 1. – P.73-77. 8. Strzalkowska, N. Effects of k-casein loci polymorphism, cow`s age, stage of lactation and somatic cell count on daily milk yield and milk composition in Polish Black-and-White cattle / N. Strzalkowska [et al.] // Anim. Science Papers and Reports. – 2002. – V. 20. – № 1. – P. 21-35.
ГЕНОТИПИРОВАНИЕ КОРОВ ПО ЛОКУСАМ КАППА - КАЗЕИНА , БЕТА - ЛАКТОГЛОБУЛИНА И BLAD- МУТАЦИИ
Ахметов Т . М ., Тюлькин С . В ., Валиуллина Э . Ф . Резюме
В данной работе у коров определены частоты встречаемости генотипов и аллелей каппа - казеина , бета - лактоглобулина и BLAD - мутации . Исследования показали , что частота аллеля А генов каппа - казеина и бета - лактоглобулина составила 0,80 и 0,41, аллеля В – 0,20 и 0,59 соответственно . Не выявлено ни одного животного - носителя мутантного аллеля BLAD - мутации .
STUDYING OF GENOTYPES COWS ON LOCI KAPPA-CASEIN, BETALACTOGLOBULIN AND BLAD-MUTATION
Ahmetov T.M., Tjulkin S.V., Valiullina E.F. Summary
In the given work at cows frequencies of occurrence genotypes and alleles kappa-casein, beta-lactoglobulin, BLAD -mutation are defined. Researches have shown that frequency allele A of kappa-casein and beta-lactoglobulin genes has made 0,80 and 0,41, allele В - 0,20 and 0,59 accordingly. It is not revealed any animal-carrier mutant allele BLAD -mutation.