Глюкозинолаты рапса и рыжика: состав, концентрации, токсичность и антипитательность для птицы, методы нейтрализации - мини-обзор
Автор: Егорова Т.А.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Обзоры, проблемы
Статья в выпуске: 6 т.58, 2023 года.
Бесплатный доступ
В последние десятилетия в кормлении животных и кормопроизводстве во всем мире все более острой становится проблема дефицита кормового протеина. Она особенно актуальна для регионов, где не возделывается соя (которая считается идеальным источником протеина для всех видов кормов), в том числе для России с ее невысоким объемом внутреннего производства сои. Для решения этой проблемы, снижения себестоимости кормов и импортозависимости по кормовому протеину все шире используются местные ресурсы, в частности масличные культуры семейства Brassicaceae рапс ( Brassica napus L.) и рыжик ( Camelina sativa L.), которые неприхотливы к условиям возделывания. Их жмыхи и шроты богаты протеином, но при этом содержат антипитательные факторы, в том числе гликозиды - глюкозинолаты (ГЛ). Это защитные вещества растений - вторичные метаболиты, представляющие собой обширный класс О-сульфатов алкил-альдоксимов, у которых к гидроксиминовому углеродному атому в цис-положении к сульфатной группе присоединен остаток β-D-тиоглюкопиранозида. Сейчас их идентифицировано уже более 120 (B.A. Halkier и J. Gershenzon, 2006). Однако если токсические и антипитательные эффекты ГЛ рапса и методы их нейтрализации изучены довольно хорошо, то по рыжику такие исследования только начинаются, поскольку эту культуру стали массово возделывать относительно недавно. При работе с рыжиком зачастую приходится ориентироваться на данные исследований на рапсе. Настоящий обзор посвящен анализу свойств ГЛ, их неблагоприятного воздействия на сельскохозяйственную птицу и методам его нейтрализации. Сами по себе ГЛ не токсичны, и их участие в защитном ответе растений на повреждения связан с эндогенными ферментами β-тиоглюкозидазами (мирозиназами), которые в норме локализуются в разных органах и тканях, но при повреждении вступают во взаимодействие. Это приводит к гидролизу ГЛ с отщеплением глюкозы и последующей трансформацией аглюконового остатка в различные потенциально токсичные продукты: изотиоцианаты, тиоцианаты, оксазолидинтионы, нитрилы и эпитионитрилы (D.J. Kliebenstein с соавт., 2005). Аналогичные процессы могут осуществляться микрофлорой пищеварительного тракта птицы. Главным токсическим эффектом этих продуктов считается гойтрогенность - нарушение синтеза и выброса в кровоток щитовидной железой тиреоидных гормонов, которое при более тяжелых формах интоксикации приводит к гипертрофии железы и образованию зоба. В субтоксических дозах такие метаболиты могут ухудшать рост молодняка, а у несушек - снижать яйценоскость и вызывать «рыбный» запах яиц. По рапсу с 1960-х годов в результате селекция на снижение содержания ГЛ создано значительное число низкогликозидных сортов. По рыжику такие работы начаты недавно, и о получении его низкогликозидных сортов пока не сообщалось. Для уменьшения содержания ГЛ в продуктах переработки рапса и рыжика (шротах и жмыхах) можно использовать разные методы, в частности термообработку (при ~ 100 °С), замачивание в воде, воздействие водными растворами щелочей или сульфата меди, твердофазную микробную ферментацию, микронизацию, экструзию (M.K. Tripathi и A.S. Mishra, 2007). Максимальным допустимым количеством глюкозинолатов в рационах птицы принято считать 5-6 ммоль/кг, что соответствует 5-10 % продуктов из рыжика, 10 % продуктов из немодифицированного рапса и 15-20 % продуктов из рапса с генетически сниженным содержанием глюкозинолатов. Изучение механизмов токсичности ГЛ и антипитательных свойств рапса и в особенности рыжика необходимо для решения практически задач кормления птицы и селекционного улучшения сортов этих кормовых культур.
Сельскохозяйственная птица, кормление, рапс, рыжик, жмыхи, шроты, глюкозинолаты, гойтрогенность, селекция
Короткий адрес: https://sciup.org/142240674
IDR: 142240674 | DOI: 10.15389/agrobiology.2023.6.1021rus
Список литературы Глюкозинолаты рапса и рыжика: состав, концентрации, токсичность и антипитательность для птицы, методы нейтрализации - мини-обзор
- Егорова Т.А., Ленкова Т.Н. Рапс (Brassica napus L.) и перспективы его использования в кормлении птицы. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(2): 172-182 (doi: 10.15389/agrobiology.2015.2.172rus).
- Ghidoli M., Ponzoni E., Araniti F., Miglio D., Pilu R. Genetic improvement of Camelina sativa (L.) Crantz: opportunities and challenges. Plants (Basel), 2023, 12(3): 570 (doi: 10.3390/plants12030570).
- Fahey J.W., Zalcman A.T., Talalay P. The chemical diversity and distribution of glucosinolates and isothiocyanates among plants. Phytochemistry, 2001, 56(1): 5-51 (doi: 10.1016/s0031-9422(00)00316-2).
- Halkier B.A., Gershenzon J. Biology and biochemistry of glucosinolates. Annual Review of Plant Biology, 2006, 57(1): 303-333 (doi: 10.1146/annurev.arplant.57.032905.105228).
- Rask L., Andreasson E., Ekbom B., Eriksson S., Pontoppidan B., Meijer J. Myrosinase: gene family evolution and herbivore defense in Brassicaceae. Plant Molecular Biology, 2000, 42(1): 93-113 (doi: 10.1023/A:1006380021658).
- Kliebenstein D.J., Kroymann J., Mitchell-Olds T. The glucosinolate-myrosinase system in an ecological and evolutionary context. Current Opinion in Plant Biology, 2005, 8(3): 264-271 (doi: 10.1016/j.pbi.2005.03.002).
- Song L., Morrison J.J., Botting N.P., Thornalley P.J. Analysis of glucosinolates, isothiocyanates, and amine degradation products in vegetable extracts and blood plasma by LC-MS/MS. Analytical Biochemistry, 2005, 347(2): 234-243 (doi: 10.1016/j.ab.2005.09.040).
- Miklavčič Višnjevec A., Tamayo Tenorio A., Steenkjær Hastrup A.C., Hansen N., Peeters K., Schwarzkopf M. Glucosinolates and isothiocyantes in processed rapeseed determined by HPLC-DAD-qTOF. Plants (Basel), 2021, 10(11): 2548 (doi: 10.3390/plants10112548).
- EFSA. Opinion of the Scientific Panel on Contaminants in the Food Chain on a request from the European Commission on glucosinolates as undesirable substances in animal feed. EFSA Journal, 2008, (590): 1-76.
- Brown P.D., Morra M.J. Hydrolysis products of glucosinolates in Brassica napus tissues as inhib-itors of seed germination. Plant and Soil, 1996, 181(2): 307-316 (doi: 10.1007/BF00012065).
- Vierheilig H., Bennett R., Kiddle G., Kaldorf M., Ludwig-Müller J. Differences in glucosinolate patterns and arbuscular mycorrhizal status of glucosinolate-containing plant species. New Phytol-ogist, 2000, 146(2): 343-352 (doi: 10.1046/j.1469-8137.2000.00642.x).
- Morra M.J., Kirkegaard J.A. Isothiocyanate release from soil-incorporated Brassica tissues. Soil Biology and Biochemistry, 2002, 34(11): 1683-1690 (doi: 10.1016/S0038-0717(02)00153-0).
- Okada K., Matsuzaki M., Yasumoto S. Effect of the preceding crops in rice-based double-crop-ping systems including rapeseed and sunflower. Japan Journal of Crop Science, 2008, 77(extra issue 1): 96-97.
- Schuster A., Friedt W. Glucosinolate content and composition as parameters of quality of Camelina seed. Industrial Crops and Products, 1998, 7(2-3): 297-302 (doi: 10.1016/S0926-6690(97)00061-7).
- Tripathi M.K., Mishra A.S. Glucosinolates in animal nutrition: A review. Animal Feed Science and Technology, 2007, 132(1-2): 1-27 (doi: 10.1016/j.anifeedsci.2006.03.003).
- Lardy G.P., Kerley M.S. Effect of increasing the dietary level of rapeseed meal on intake by growing beef steers. Journal of Animal Science, 1994, 72(8): 1936-1942 (doi: 10.2527/1994.7281936x).
- Russo R., Reggiani R. Glucosinolates and sinapine in Camelina meal. Food and Nutrition Sciences, 2017, 8(12): 1063-1073 (doi: 10.4236/fns.2017.812078).
- Burel C., Boujard T., Kaushik S.J., Boeuf G., Mol K.A., van der Geyten G.S., Darras V.M., Kuhn E.R., Pradet-Balade B., Querat B., Quinsac A., Krouti M., Ribaillier D. Effects of rapeseed meal glucosinolates on thyroid metabolism and feed utilization in rainbow trout. General and Comparative Endocrinology, 2001, 124(3): 343-358 (doi: 10.1006/gcen.2001.7723)
- Martland M.F., Butler E.J., Fenwick G.R. Rapeseed induced liver haemorrhage reticulolysis and biochemical changes in laying hens: the effects of feeding high and low glucosinolate meals. Research in Veterinary Science, 1984, 36(3): 298-309.
- Umemura T., Yamashiro S., Bhatnagar M.K., Moody D.L., Slinger S.J. Liver fibrosis of the turkey on rapeseed products. Research in Veterinary Science, 1977, 23(2): 139-145.
- Mawson R., Heaney R.K., Zdunczyk Z., Kozlowska H. Rapeseed meal-glucosinolates and their antinutritional effects. Part 6. Taint in end-products. Nahrung, 1995, 39(1): 21-31 (doi: 10.1002/food.19950390103).
- March B.E., MacMillan C. Trimethylamine production in the caeca and small intestine as a cause of fishy taints in eggs. Poultry Science, 1979, 58(1): 93-98 (doi: 10.3382/PS.0580093).
- Goh Y.K., Robblee A.R., Clandinin D.R. Influence of glucosinolates and free oxazolidinethione in a laying hen diet containing a constant amount of sinapine on the trimethylamine content and fishy odor of eggs from brown-shelled egg layers. Canadian Journal of Animal Science, 1983, 63(3): 671-676 (doi: 10.4141/cjas83-075).
- Honkatukia M., Reese K., Preisinger R., Tuiskula-Haavisto M., Weigend S., Roito J., Mäki-Tanila A., Vilkki J. Fishy taint in chicken eggs is associated with a substitution within a conserved motif of the FMO3 gene. Genomics, 2005, 86(2): 225-232 (doi: 10.1016/j.ygeno.2005.04.005).
- Kretzschmar K., Reese K., Honkatukia M., Eding H., Preisinger R., Karl H., Dänicke S., Weigend S. Effect of flavin containing monooxygenase (FMO3) genotype on trimethylamine (TMA) content in the chicken egg yolk. Archiv für Geflügelkunde, 2007, 71(6): 200-206.
- Ward A.K., Classen H.L., Buchanan F.C. Fishy-egg tainting is recessively inherited when brown-shelled layers are fed canola meal. Poultry Science, 2009, 88(4): 714-721 (doi: 10.3382/ps.2008-00430).
- Oryschak M.A., Smit M.N., Beltranena E. Brassica napus and Brassica juncea extruded-expelled cake and solvent-extracted meal as feedstuffs for laying hens: Lay performance, egg quality, and nutrient digestibility. Poultry Science, 2020, 99(1): 350-363 (doi: 10.3382/ps/pez501).
- Zhu L.P., Wang J.P., Ding X.M., Bai S.P., Zeng Q.F., Su Z.W., Xuan Y., Applegate T.J., Zhang K.Y. The effects of varieties and levels of rapeseed expeller cake on egg production per-formance, egg quality, nutrient digestibility, and duodenum morphology in laying hens. Poultry Science, 2019, 98(10): 4942-4953 (doi: 10.3382/ps/pez254).
- Tan Q., Wang J.P., Zeng Q.F., Ding X.M., Bai S.P., Peng H.W., Xuan Y., Zhang K.Y. Effects of rapeseed meal on laying performance and egg quality in laying ducks. Poultry Science, 2022, 101(3): 101678 (doi: 10.1016/j.psj.2021.101678).
- Bell J.M., Shires A. Comparison and digestibility by pigs of hull fractions from rapeseed cultivars with yellow or brown seed coats. Canadian Journal of Animal Science, 1982, 62(2): 557-565 (doi: 10.4141/cjas82-065).
- Kloss P., Jeffrey E., Wallig M., Tumbleson M., Parsons C., Johnson L., Reuber M. Efficacy of feeding glucosinolate-extracted crambe meal to broiler chicks. Poultry Science, 1994, 73(10): 1542-1551 (doi: 10.3382/ps.0731542).
- Mawson R., Heaney R.K., Zdunczyk Z., Kozlowska H. Rapeseed meal glucosinolates and their antinutritional effects. Part 4. Goitrogenicity and internal organs abnormalities in animals. Nahrung, 1994, 38(2): 178-191 (doi: 10.1002/food.19940380210).
- Yadav S., Teng P.Y., Singh A.K., Choi J., Kim W.K. Influence of Brassica spp. rapeseed and canola meal, and supplementation of bioactive compound (AITC) on growth performance, intestinal permeability, oocyst shedding, lesion score, histomorphology, and gene expression of broilers challenged with E. maxima. Poultry Science, 2022, 101(2): 101583 (doi: 10.1016/j.psj.2021.101583).
- Inglis G.D., Wright B.D., Sheppard S.A., Abbott D.W., Oryschak M.A., Montina T. Expeller-pressed canola (Brassica napus) meal modulates the structure and function of the cecal microbiota, and alters the metabolome of the pancreas, liver, and breast muscle of broiler chickens. Animals (Basel), 2021, 11(2): 577 (doi: 10.3390/ani11020577).
- Adewole D.I., Rogiewicz A., Dyck B., Slominski B.A. Effects of canola meal source on the standardized ileal digestible amino acids and apparent metabolizable energy contents for broiler chickens. Poultry Science, 2017, 96(12): 4298-4306 (doi: 10.3382/ps/pex245).
- Recoules E., Lessire M., Labas V., Duclos M.J., Combes-Soia L., Lardic L., Peyronnet C., Quinsac A., Narcy A., Réhault-Godbert S. Digestion dynamics in broilers fed rapeseed meal. Scientific Reports, 2019, 9(1): 3052 (doi: 10.1038/s41598-019-38725-1).
- Ryhänen E.-L., Perttilä S., Tupasela T., Valaja J., Eriksson C., Larkka K. Effect of Camelina sativa expeller cake on performance and meat quality of broilers. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2007, 87(8): 1489-1494 (doi: 10.1002/jsfa.2864).
- Hajiazizi F., Sadeghi A., Karimi A. The effects of dietary inclusion of Camelina sativa on perfor-mance and ascites incidence in broilers subjected to cold exposure. Veterinary Medicine and Sci-ence, 2023, 9(4): 1711-1725 (doi: 10.1002/vms3.1185).
- Oryschak M.A., Christianson C.B., Beltranena E. Camelina sativa cake for broiler chickens: ef-fects of increasing dietary inclusion on clinical signs of toxicity, feed disappearance, and nutrient digestibility. Translational Animal Science, 2020, 4(2): txaa029 (doi: 10.1093/tas/txaa029).
- Singh Y., Cullere M., Tůmová E., Dalle Zotte A. Camelina sativa as a sustainable and feasible feedstuff for broiler poultry species: A review. Czech Journal of Animal Science, 2023, 68(7): 277-295 (doi: 10.17221/29/2023-CJAS).
- Juodka R., Nainienė R., Juškienė V., Juška R., Leikus R., Kadžienė G., Stankevičienė D. Came-lina (Camelina sativa (L.) Crantz) as feedstuffs in meat type poultry diet: а source of protein and n-3 fatty acids. Animals (Basel), 2022, 12(3): 295 (doi: 10.3390/ani12030295).
- Orczewska-Dudek S., Pietras M. The effect of dietary Camelina sativa oil or cake in the diets of broiler chickens on growth performance, fatty acid profile, and sensory quality of meat. Animals (Basel), 2019, 9(10): 734 (doi: 10.3390/ani9100734).
- Lolli S., Grilli G, Ferrari L., Battelli G., Pozzo S., Galasso I., Russo R., Brasca M., Reggian R., Ferrante V. Effect of different percentage of Camelina sativa cake in laying hens diet: performance, welfare, and eggshell quality. Animals (Basel), 2020, 10(8): 1396 (doi: 10.3390/ani10081396).
- Kondra Z., Stefansson B. Inheritance of the major glucosinolates of rapeseed (Brassica napus) meal. Canadian J. Plant. Sci., 1970, 50(6): 643-647 (doi: 10.4141/cjps70-122).
- Kliebenstein D.J., Gershenzon J., Mitchell-Olds T. Comparative quantitative trait loci mapping of aliphatic, indolic and benzylic glucosinolate production in Arabidopsis thaliana leaves and seeds. Genetics, 2001, 159(1): 359-370 (doi: 10.1093/genetics/159.1.359).
- Liu S., Huang H., Yi X., Zhang Y., Yang Q., Zhang C., Fan C., Zhou Y. Dissection of genetic architecture for glucosinolate accumulations in leaves and seeds of Brassica napus by genome-wide association study. Plant Biotechnology Journal, 2020, 18(6): 1472-1484 (doi: 10.1111/pbi.13314).
- Nour-Eldin H.H., Halkier B.A. Piecing together the transport pathway of aliphatic glucosinolates. Phytochemistry Reviews, 2009, 8(1): 53-67 (doi: 10.1007/s11101-008-9110-8).
- Nour-Eldin H.H., Andersen T.G., Burow M., Madsen S.R., Jørgensen M.E., Olsen C.E., Dreyer I., Hedrich R., Geiger D., Halkier B.A. NRT/PTR transporters are essential for translo-cation of glucosinolate defense compounds to seeds. Nature, 2012, 488(7412): 531-534 (doi: 10.1038/nature11285).
- Nour-Eldin H.H., Madsen S.R., Engelen S., Jørgensen M.E., Olsen C.E., Andersen J.S., Seynnaeve D., Verhoye T., Fulawka R., Denolf P., Halkier B.A. Reduction of antinutritional glucosinolates in Brassica oilseeds by mutation of genes encoding transporters. Nature Biotechnol-ogy, 2017, 35(4): 377-382 (doi: 10.1038/nbt.3823).
- Russo R., Galasso I., Reggiani R. Glucosinolate content among Camelina species. American Journal of Plant Sciences, 2014, 5(3): 294-298 (doi: 10.4236/ajps.2014.53040).
- Kozlowska H.J., Nowak H., Nowak J. Characterisation of myrosinase in Polish varieties of rapeseed. Journal of the Science of Food and Agriculture, 1983, 34(11): 1171-1178 (doi: 10.1002/jsfa.2740341104).
- Nega T., Woldes Y. Review on nutritional limitations and opportunities of using rapeseed meal and other rape seed by-products in animal feeding. Journal of Nutritional Health and Food Engi-neering, 2018, 8(1): 43-48 (doi: 10.15406/jnhfe.2018.08.00254).
- So K.K.Y., Duncan R.W. Breeding Canola (Brassica napus L.) for protein in feed and food. Plants (Basel), 2021, 10(10): 2220 (doi: 10.3390/plants10102220).
- Eklund M., Sauer N., Schöne F., Messerschmidt U., Rosenfelder P., Htoo J.K., Mosenthin R. Effect of processing of rapeseed under defined conditions in a pilot plant on chemical composition and standardized ileal amino acid digestibility in rapeseed meal for pigs. Journal of Animal Science, 2015, 93(6): 2813-2825 (doi: 10.2527/jas.2014-8210).
- Wiąz M., Mroczyk M., Józefiak D., Rutkowski A. Composition of rapeseed cakes and meals manufactured under different technological conditions. Journal of Animal and Feed Sciences, 2005, 14(Suppl. 1): 507-510 (doi: 10.22358/jafs/70718/2005).
- Wu Z., Liu J., Chen J., Pirzado S.A., Li Y., Cai H., Liu G. Effects of fermentation on standard-ized ileal digestibility of amino acids and apparent metabolizable energy in rapeseed meal fed to broiler chickens. Animals (Basel), 2020, 10(10): 1774 (doi: 10.3390/ani10101774).
- Wu Z., Chen J., Pirzado S.A., Haile T.H., Cai H., Liu G. The effect of fermented and raw rapeseed meal on the growth performance, immune status and intestinal morphology of broiler chickens. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition (Berlin), 2022, 106(2): 296-307 (doi: 10.1111/jpn.13593).
- Taheri M., Dastar B., Ashayerizadeh O., Mirshekar R. The effect of fermented rapeseed meal on production performance, egg quality and hatchability in broiler breeders after peak production. British Poultry Science, 2023, 64(2): 259-267 (doi: 10.1080/00071668.2022.2144712).
- Elbaz A.M., El-Sheikh S.E., Abdel-Maksoud A. Growth performance, nutrient digestibility, an-tioxidant state, ileal histomorphometry, and cecal ecology of broilers fed on fermented canola meal with and without exogenous enzymes. Tropical Animal Health and Production, 2023, 55(1): 46 (doi: 10.1007/s11250-023-03476-9).
- Zając M., Kiczorowska B., Samolińska W., Klebaniuk R. Inclusion of camelina, flax, and sun-flower seeds in the diets for broiler chickens: apparent digestibility of nutrients, growth perfor-mance, health status, and carcass and meat quality traits. Animals (Basel), 2020, 10(2): 321 (doi: 10.3390/ani10020321).
- Zając M., Kiczorowska B., Samolińska W., Kowalczyk-Pecka D., Andrejko D., Kiczorowski P. Effect of inclusion of micronized camelina, sunflower, and flax seeds in the broiler chicken diet on performance productivity, nutrient utilization, and intestinal microbial populations. Poultry Science, 2021, 100(7): 101118 (doi: 10.1016/j.psj.2021.101118).
- Pirgozliev V.R., Whiting I.M., Mansbridge S.C., Rose S.P. Sunflower and rapeseed meal as al-ternative feed materials to soybean meal for sustainable egg production, using aged laying hens. British Poultry Science, 2023, 64(5): 634-640 (doi: 10.1080/00071668.2023.2239176).
- Cullere M., Singh Y., Pellattiero E., Berzuini S., Galasso I., Clemente C., Dalle Zotte A. Effect of the dietary inclusion of Camelina sativa cake into quail diet on live performance, carcass traits, and meat quality. Poultry Science, 2023, 102(6): 102650 (doi: 10.1016/j.psj.2023.102650).
- Traka M.H. Health benefits of glucosinolates. In: Advances in botanical research /S. Kopriva (ed.). Academic Press, 2016, 80(Chpt. 9): 247-279 (doi: 10.1016/bs.abr.2016.06.004).
- Akram M., Jabeen F., Riaz M., Said Khan F., Okushanova E., Imran M., Shariati M.A., Riaz T., Egbuna Ch., Ezeofor N.J. Health benefits of glucosinolate isolated from cruciferous and other vegetables. In: Preparation of phytopharmaceuticals for the management of disorders /Ch. Egbuna, A.P. Mishra, M.R. Goyal (eds.). Academic Press, 2021, Chpt. 19: 361-371 (doi: 10.1016/B978-0-12-820284-5.00006-X).