Гуморальные и клеточно-опосредованные механизмы иммунитета при африканской чуме свиней (обзор)

Автор: Середа А.Д., Казакова А.С., Иматдинов А.Р., Колбасов Д.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 6 т.50, 2015 года.

Бесплатный доступ

О формировании защитного иммунитета при африканской чуме свиней (АЧС) свидетельствует бессимптомное течение инфекции в аборигенных популяциях Phacochoerus africanus, Potamochoerus porcus, Hylochoerus spp. в Африке и лабораторное получение авирулентных штаммов вируса АЧС (African swine fever virus - ASFV), инокуляция которых свиньям защищает их от гибели в случае последующего заражения гомологичным вирулентным изолятом. Перенос сыворотки или молозива от конвалесцентов интактным свиньям в случае их последующего заражения вирулентным изолятом может задержать проявление клинических симптомов болезни, уменьшить виремию и увеличить процент выживших особей (R.C. Knudsen с соавт., 1987; D.H. Schlafer с соавт., 1984; D.V. Onisk с соавт., 1994). Вероятнее всего, гуморальное звено иммунитета реализуется не за счет нейтрализации вируса АЧС, а с участием механизмов комплементзависимого цитолиза (КЗЦ) и антителозависимой клеточной цитотоксичности (АЗКЦ) (В.В. Макаров, 2013). Включение клеточно-опосре-дованных механизмов защиты, лизис зараженных клеток нормальными киллерами (N-киллерами) и цитотоксическими Т-лимфоцитами (ЦТЛ) обеспечивает хроническое или бессимптомное течение инфекции (S.G. Norley с соавт., 1983, 1984). Установлено, что истощение моноклональными антителами in vivo CD8+ T-лимфоцитов свиней, предварительно иммунизированных аттенуированным штаммом вируса АЧС, аннулирует защитный иммунитет к их последующему заражению вирулентным гомологичным штаммом (C.A.L. Oura с соавт., 2005). Индукция и эффекторная активность АЗКЦ и ЦТЛ зависят от дозы и биологических свойств штаммов вируса АЧС (А.Д. Середа, 2010). Высокая АЗКЦ, начиная с 3-х сут, и активность клеточно-опосредованных механизмов иммунитета на 6-е сут после инокуляции вируса АЧС обеспечивают быстрое снижение титров вируса в крови и, соответственно, отсутствие клинических симптомов болезни (А.Д. Середа с соавт., 1992). Гуморальные и клеточно-опосредованные механизмы защиты действуют синергично, что принципиально важно учитывать при создании кандидатных рекомбинантных вакцин против АЧС. Определены белки вируса АЧС, которые считаются вероятными кандидатами на роль антигенов, индуцирующих формирование протективных механизмов при АЧС. Иммунизация свиней комбинацией вирусных белков р54 и р30-32 приводила к отсрочке начала проявления клинических симптомов болезни после инфицирования вирулентным изолятом (P. Gómez-Puertas с соавт., 1998). CD2v (или ГП 110-140) - мембранный белок вируса АЧС, определяющий феномен гемадсорбции и охарактеризованный как серотипоспецифический (J.M. Rodriguez с соавт., 1993; А.Д. Середа с соавт., 1992; A. Malogolovkin с соавт., 2014). Поэтому его следует рассматривать как критически важный компонент при создании экспериментальных защитных препаратов (H.H. Takamatsu с соавт., 2013). Таким образом, проведенные к настоящему времени исследования свидетельствуют об участии как гуморального, так и клеточного эффекторного механизма иммунитета в формировании защиты при АЧС.

Еще

Африканская чума свиней, протективный иммунитет, антитела, цитотоксические т-лимфоциты, нормальные киллеры

Короткий адрес: https://sciup.org/142133634

IDR: 142133634   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2015.6.709rus

Список литературы Гуморальные и клеточно-опосредованные механизмы иммунитета при африканской чуме свиней (обзор)

  • Malmquist W.A. Serologic and immunologic studies with African swine fever virus. Am. J. Vet. Res., 1963, 24: 450-459.
  • Ruiz-Gonzalvo F., Carnero M.E., Bruyel V. Immunological responses of pigs to partially attenuated African swine fever virus and their resistance to virulent homologous and heterologous viruses. Proc. of EUR 8466 EN: CEC/FAO «African swine fever»/P.J. Wilkinson (ed.). Sardinia, 1983: 2066-2216.
  • King K., Chapman D., Argilaguet J.M., Fishbourne E., Hutet E., Cariolet R., Hutchings G., Oura C.A., Netherton C.L., Moffat K., Taylor G., Le Potier M.F., Dixon L.K., Takamatsu H.H. Protection of European domestic pigs from virulent African isolates of African swine fever virus by experimental immunization. Vaccine, 2011, 29: 4593-4600 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2011.04.052
  • Mutowembwa1 P., Souto R., van Heerden J.H. Vaccination of domestic pigs with a naturally attenuated strain of African swine fever virus. Proc. of the 9th Annual Congress of the Southern African Society for Veterinary Epidemiology and Preventive Medicine (18-20 August 2010). Farm Inn, Republic of South Africa, 2010: 126-128.
  • Середа А.Д., Балышев В.М. Антигенное разнообразие вируса африканской чумы свиней. Вопросы вирусологии, 2011, 4: 38-42.
  • Malogolovkin A., Burmakina G., Titov I., Sereda A., Gogin A., Baryshnikova E., Kolbasov D. Comparative analysis of African swine fever virus genotypes and serogroups. Emerging Infectious Diseases, 2015, 21(2): 312-315 ( ) DOI: 10.3201/eid2102.140649
  • Колбасов Д.В., Балышев В.М., Середа А.Д. Итоги разработки живых вакцин против африканской чумы свиней. Ветеринария, 2014, 8: 3-8.
  • Knudsen R.C., Genovesi E.V., Whyard T.C. In vitro immune serum-mediated protection of pig monocytes against African swine fever virus. Am. J. Vet. Res., 1987, 48: 1067-1071.
  • Schlafer D.H., McVicar J.W., Mebus C.A. African swine fever convalescent sows: Subsequent pregnancy and the effect of colostral antibody on challenge inoculation of their pigs. Am. J. Vet. Res., 1984, 45: 1361-1366.
  • Onisk D.V., Borca M.V., Kutish G., Kramer E., Irusta P., Rock D.L. Passively transferred African swine fever virus antibodies protect swine against lethal infection. Virology, 1994, 198(1): 350-354 ( ) DOI: 10.1006/viro.1994.1040
  • Parker J., Plowright W. Plaque formation by African swine fever virus. Nature, 1968, 219(5153): 524-525 ( ) DOI: 10.1038/219524a0
  • Hess W.R. African swine fever: a reassessment. Adv. Vet. Sci. Compar. Med., 1981, 25: 39-69.
  • Viñuela E. African swine fever virus. Curr. Top. Microbiol. Immunology, 1985, 116: 151-170.
  • Escribano J.M., Galindo I., Alonso C. Antibody-mediated neutralization of African swine fever virus: myths and facts. Virus Res., 2013, 173: 101-109 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2012.10.012
  • Zsak L., Onisk D.V., Afonso C.L., Rock D.L. Virulent African swine fever virus isolates are neutralized by swine immune serum and by monoclonal antibodies recognising a 72-kDa viral protein. Virology, 1993, 196: 596-602 ( ) DOI: 10.1006/viro.1993.1515
  • Gómez-Puertas P., Rodriguez F., Oviedo J.M., Ramiro-Ibanez F., Ruiz-Gonzalvo F., Alonso C., Escribano J.M. Neutralizing antibodies to different proteins of African swine fever virus inhibit both virus attachment and internalization. J. Virol., 1996, 70(8): 5689-5694.
  • Afonso C.L., Alcaraz C., Brun A., Sussman M.D., Onisk D.V., Escribano J.M., Rock D.L. Characterization of p30, a highly antigenic membrane and secreted protein of African swine fever virus. Virology, 1992, 189(1): 368-373 ( ) DOI: 10.1016/0042-6822(92)90718-5
  • Alcaraz C., Rodriguez F., Oviedo J.M., Eiras A., De Diego M., Alonso C., Escribano J.M. Highly specific confirmatory western blot test for African swine fever virus antibody detection using the recombinant virus protein p54. J. Virol. Meth., 1995, 52(1-2): 111-119 ( ) DOI: 10.1016/0166-0934(94)00150-F
  • Rodriguez F., Ley V., Gomez-Puertas P., Garcia R., Rodriguez J.F., Escribano J.M. The structural protein p54 is essential for African swine fever virus viability. Virus Res., 1996, 40(2): 161-167 ( ) DOI: 10.1016/0168-1702(95)01268-0
  • Gómez-Puertas P., Rodriguez F., Oviedo J.M., Brun A., Alonso C., Escribano J.M. The African swine fever virus proteins p54 and p30 are involved in two distinct steps of virus attachment and both contribute to the antibody-mediated protective immune response. Virology, 1998, 243(2): 461-471.
  • Barderas M.G., Rodriguez F., Gomez-Puertas P., Aviles M., Beitia F., Alonso C., Escribano J.M. Antigenic and immunogenic properties of a chimera of two immunodominant African swine fever virus proteins. Arch. Virol., 2001, 146: 1681-1691 ( ) DOI: 10.1007/s007050170056
  • Neilan J.G., Zsak L., Lu Z., Burrage T.G., Kutish G.F., Rock D.L. Neutralizing antibodies to African swine fever virus proteins p30, p54, and p72 are not sufficient for antibody-mediated protection. Virology, 2004, 319: 337-342 ( ) DOI: 10.1016/j.virol.2003.11.011
  • Макаров В.В., Малахова М.С., Власов Н.А. Реакции вируса африканской чумы свиней с антителами и причины отсутствия нейтрализации. Доклады ВАСХНИЛ, 1991, 12: 27-31.
  • Макаров В.В. Иммунологическая концепция африканской чумы свиней (некоторые итоги исследований). Ветеринарная практика, 2013, 3(62): 7-22.
  • Norley S.G., Wardley R.C. Complement-mediated lysis of African swine fever virus-infected cells. Immunology, 1982, 46: 75-81.
  • Norley S.G., Wardley R.C. Effector mechanisms in the pig. Antibody-dependent cellular cytolysis of African swine fever virus infected cells. Res. Vet. Sci., 1983, 35: 75-79.
  • Середа А.Д., Соловкин С.Л., Фугина Л.Г., Макаров В.В. Иммунные реакции на вирус африканской чумы свиней. Вопросы вирусологии, 1992, 3: 168-170.
  • Шубина Н.Г., Колонцов А.А., Песковацков А.А., Устин А.В., Макаров В.В. Полипептиды вируса африканской чумы свиней -индукторы и мишени иммунологических реакций, направленных на элиминирование зараженных клеток. Доклады РАСХН, 1993, 5: 44.
  • Norley S.G., Wardley R.C. Investigation of porcine natural-killer cell activity with reference to African swine fever virus infection. Immunology, 1983, 49: 593-597.
  • Norley S.G., Wardley R.C. Cytotoxic lymphocytes induced by African swine fever infection. Res. Vet. Sci., 1984, 37: 255-257.
  • Leitão A., Cartaxeiro C., Coelho R., Cruz B., Parkhouse R.M., Portugal F., Vigario J.D., Martins C.L. The non-haemadsorbing African swine fever virus isolate ASFV/NH/P68 provides a model for defining the protective anti-virus immune response. J. Gen. Virol., 2001, 82(3): 513-523 ( ) DOI: 10.1099/0022-1317-82-3-513
  • Wardley R.C., Norley S.G., Martins C.V., Lawman M.J.P. The host response to African swine fever virus. Progres en Virologie Medicale, 1987, 34: 180-192.
  • Alonso F., Domínguez J., Viñuela E., Revilla Y. African swine fever virus-specific cytotoxic T lymphocytes recognize the 32 kDa immediate early protein (vp32). Virus Res., 1997, 49: 123-130 ( ) DOI: 10.1016/S0168-1702(97)01459-7
  • Martins C.L.V., Lawman M.J.P., Scholl T., Mebus C.A., Lunney J.K. African swine fever virus specific porcine cytotoxic T cell activity. Arch. Virol., 1993, 129(1-4): 211-225 ( ) DOI: 10.1007/BF01316896
  • Oura C.A.L., Denyer M.S., Takamatsu H., Parkhouse R.M.E. In vivo depletion of CD8+ T lymphocytes abrogates protective immunity to African swine fever virus. J. Gen. Virol., 2005, 86: 2445-2450 ( ) DOI: 10.1099/vir.0.81038-0
  • Середа А.Д., Соловкин С.Л., Сенечкина Е.К., Макаров В.В. Тестирование первичных вирусоспецифических Т-лимфоцитов свиней. Сельскохозяйственная биология, 1994, 6: 112-115.
  • Середа А.Д. Противоклеточные эффекторы иммунитета при африканской чуме свиней. Научный журнал КубГАУ (Краснодар) , 2010, 62(08): 1-9 (http://ej.kubagro.ru/2010/08/pdf/24.pdf).
  • Макаров В.В., Вишняков И.Ф., Коломыцев А.А., Середа А.Д. Сравнительный анализ показателей функциональной активности гуморального и клеточного иммунитета при вирусных инфекциях in vivo. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 1995, 12: 599-602.
  • Середа А.Д. Моделирование in vitro защитных иммунных механизмов при африканской чуме свиней. Сельскохозяйственная биология, 2013, 4: 59-64 ( , 10.15389/agrobiology.2013.4.59eng) DOI: 10.15389/agrobioogy.2013.4.59rus
  • Макаров В.В. Африканская чума свиней. М., 2011.
  • Takamatsu H.H., Denyer M.S., Lacasta A., Stirling C.M., Argilaguet J.M., Netherton C.L., Oura C.A., Martins C., Rodríguez F. Cellular immunity in ASFV responses. Virus Res., 2013, 173(1): 110-121 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2012.11.009
  • Argilaguet J.M., Perez-Martin E., Gallardo C., Salguero F.J., Borrego B., Lacasta A., Accensi F., Diaz I., Nofrarias M., Pujols J., Blanco E., Perez-Filgueira M., Escribano J.M., Rodriguez F. Enhancing DNA immunization by targeting ASFV antigens to SLA-II bearing cells. Vaccine, 2011, 29: 5379-5385 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2011.05.084
  • Argilaguet J.M., Pérez-Martín E., Nofrarías M., Gallardo C., Accensi F., Lacasta A., Mora M., Ballester M., Galindo-Cardiel I., López-Soria S., Escribano J.M., Reche P.A., Rodríguez F. DNA vaccination partially protects against African swine fever virus lethal challenge in the absence of antibodies. PLoS ONE, 2012, 7(9): 940-942 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0040942
  • Borca M.V., Kutish G.F., Afonso C.L., Irusta P., Carrillo C., Brun A., Sussman M., Rock D.L. An African swine fever virus gene with similarity to the T-lymphocyte surface antigen CD2 mediates hemadsorption. Virology, 1994, 199(2): 463-468 ( ) DOI: 10.1006/viro.1994.1146
  • Rodriguez J.M., Yanez R.J., Almazan F., Vinuela E., Rodriguez J.F. African Swine Fever Virus Encodes a CD2 Homolog Responsible for the Adhesion of Erythrocytes to Infected Cells. Journal of Virology, 1993, 67(9): 5312-5320.
  • Kay-Jackson P.C., Goatley L.C., Cox L., Miskin J.E., Parkhouse R.M.E., Wienands J., Dixon L.K. The CD2v protein of African swine fever virus interacts with the actin-binding adaptor protein SH3P7. J. Gen. Virol., 2004, 85: 119-130 ( ) DOI: 10.1099/vir.0.19435-0
  • Dixon L.K., Abrams C.C., Bowick G., Goatley L.C., Kay-Jackson P.C., Chapman D., Liverani E., Nix R., Silk R., Zhang F. African swine fever virus proteins involved in evading host defence systems. Vet. Immunol. Immunopathol., 2004, 100: 117-134 ( ) DOI: 10.1016/j.vetimm.2004.04.002
  • Goatley L.C., Dixon L.K. Processing and localization of the African swine fever virus CD2v transmembrane protein. J. Virol., 2011, 85(7): 3294-3305 ( ) DOI: 10.1128/JVI.01994-10
  • Середа А.Д., Макаров В.В. Идентификация изолятоспецифического гликополипептида вируса африканской чумы свиней. Ветеринария, 1992, 1: 22-24.
  • Середа А.Д., Анохина Е.Г., Макаров В.В. Гликопротеины вируса африканской чумы свиней. Вопросы вирусологии, 1994, 39(6): 278-281.
  • Malogolovkin A., Burmakina G., Tulman E.R., Delhon G., Diel D.G., Salnikov N., Kutish G.F., Kolbasov D., Rock D.L. African swine fever virus CD2v and C-type lectin gene loci mediate serologic specificity. J. Gen. Virol., 2015, 96: 866-873 ( ) DOI: 10.1099/jgv.0.000024
Еще
Статья научная