Идентичность генов устойчивости к расе G заразихи у линий подсолнечника разного происхождения
Автор: Гучетль С.З., Антонова Т.С., Арасланова Н.М., Челюстникова Т.А., Питинова Ю.В.
Рубрика: Селекция и семеноводство сельскохозяйственных растений
Статья в выпуске: 3 (187), 2021 года.
Бесплатный доступ
Заразиха - облигатный паразит, является одним из наиболее существенных биотических факторов, снижающих урожайность подсолнечника. Основное средство борьбы с заразихой - селекция на устойчивость подсолнечника к ней. Требуются новые стратегии создания устойчивого к паразиту селекционного материала, такие как пирамидирование основных генов или сочетание качественных и количественных механизмов устойчивости. Поэтому приходится постоянно проводить поиск новых источников устойчивости и комбинировать имеющиеся гены в случае, если они не являются идентичными. В связи с этим, необходимо установить, являются ли идентичными гены устойчивости к расе G заразихи у линий подсолнечника селекции ВНИИМК. Материалом исследования служили созданные ранее линии подсолнечника - доноры устойчивости к расе G заразихи RG, RGP1, RGP2, RGB, RGL1, RGL2 и RGM. Гибриды первого поколения от попарных скрещиваний этих линий получали в теплице. Гибриды второго поколения получали в полевых условиях, путём самоопыления растений гибридов Fi. Растения испытывали в теплице на устойчивость и восприимчивость к заразихе, применяя метод ранней диагностики. Математическую обработку проводили с использованием Х2-критерия. Получено 13 комбинаций скрещивания для проведения теста на аллелизм. На устойчивость к расе G заразихи было оценено от 11 до 33 растений каждой комбинации в F1. Среди испытанных комбинаций не было ни одной, не поразившейся заразихой. Несмотря на различия количеств пораженных растений, степень поражения была небольшой у всех гибридных комбинаций - от 1,0 до 1,8. Также не было обнаружено гибридных комбинаций F2 без поражения заразихой. Для восьми комбинаций F2 было обнаружено два фенотипических класса. Для трех - расщепления обнаружено не было. Для двух - количество растений слишком мало для расчёта х-критерия. В основном значения х2 были больше допустимых при вероятности 0,05, что указывает на то, что гены устойчивости к расе G заразихи у данных линий являются идентичными.
Подсолнечник, заразиха, раса g, доноры, устойчивость, аллельные гены
Короткий адрес: https://sciup.org/142231248
IDR: 142231248 | DOI: 10.25230/2412-608X-2021-3-187-3-9
Текст научной статьи Идентичность генов устойчивости к расе G заразихи у линий подсолнечника разного происхождения
Введение. В производстве растительного масла одной из наиболее востребованных культур является подсолнечник ( Helianthus annuus L.). В силу своих биологических характеристик, культура обладает широким спектром адаптивных особенностей, спрос на продукты ее переработки увеличивается с каждым годом [1]. Заразиха кумская ( Orobanche cumana Wallr.) относится к высшим растениям и является одним из наиболее существенных биотических факторов, снижающих урожайность подсолнечника [2]. Этот облигатный паразит не имеет собственных корней и листьев, лишен хлорофилла. Проросток семени заразихи врастает в корень подсолнечника, формируя внутри него гаусториальный орган, с помощью которого потребляет водно-минеральные и органические вещества из сосудистой системы растения-хозяина [2]. Основным средством борьбы с паразитом выступает селекция на устойчивость к нему. Этот процесс является непрерывным, так как появление новой, более вирулентной расы заразихи сводит на нет предыдущие 4
усилия селекционеров [3]. В настоящее время в популяциях заразихи в РФ и других странах присутствуют расы E, F, G, H [4; 5; 6; 7]. Во ВНИИМК постоянно проводится мониторинг расовой принадлежности семян заразихи с разных полей Российской Федерации для правильного размещения возделываемого сортимента подсолнечника. Так, показано, что в 2019 г. в регионах Ростовской, Воронежской, Белгородской областей и Краснодарского края ещё имелись поля с наличием рас Е или F, но с примесью высоковирулентного биотипа G, который на большинстве полей РФ уже стал доминирующим [7]. Таким образом, актуально создание гибридов и сортов подсолнечника, устойчивых к расе G заразихи. У подсолнечника в отношении O. cumana описаны как качественно, так и количественно (QTL) наследуемые гены резистентности [8]. Устойчивость к расе G обеспечивается одним доминантным [9] или, напротив, одним рецессивным геном [10; 11]. Во ВНИИМК с использованием различных источников генетического разнообразия подсолнечника был создан ряд инбред-ных линий разного происхождения, проявляющих иммунитет к расе G [12]. Устойчивость к данной расе контролируется у этих линий одним геном с неполным доминированием [13]. На основе этих доноров устойчивости уже создаются новые линии и гибриды подсолнечника, поскольку этот тип устойчивости является наиболее предпочти-тельным из-за простоты отбора [14; 15]. Но такая устойчивость может быть со временем преодолена быстро возникающими в современных условиях возделывания культуры новыми расами патогена [16]. Требуются новые стратегии создания устойчивого к паразиту селекционного материала, такие как пирамидирование основных генов или сочетание качественных и количественных механизмов устойчивости [8]. В связи с этим необходимо постоянно искать новые источники устойчивости и комбинировать имеющиеся гены в случае, если они не являются идентичными. Цель данного исследования – установить, являются ли идентичными гены устойчивости к расе G заразихи у линий подсолнечникам селекции ВНИИМК RG, RGP1, RGP2, RGВ, RGL1, RGL2 и RGM.
Материалы и методы. Материалом исследования служили линии подсолнечника разного происхождения – доноры устойчивости к расе G заразихи: RG, RGP1, RGP2, RGВ, RGL1, RGL2, RGM [13]. Семена заразихи для исследований были собраны на полях Боковского и Мо-розовского районов Ростовской области и идентифицированы как раса G с помощью линий-дифференциаторов.
Гибриды первого поколения от попарных скрещиваний линий получали в теплице. Принудительное самоопыление проводили с использованием индивидуальных изоляторов. При гибридизации использовали ручную кастрацию. Гибриды второго поколения получали в полевых условиях, путём самоопыления растений гибридов F 1 .
Растения испытывали в теплице на устойчивость и восприимчивость к заразихе, применяя метод ранней диагностики А.Я. Панченко [17]. Инфекционный фон создавался внесением семян заразихи в короба с почвенно-песчаной смесью из расчета 200 мг на 1 кг смеси. Выращивали растения подсолнечника при температуре 25–27 °С и 16-часовом фотопериоде. Через 25–30 дней после появления всходов растения выкапывали и проводили учет клубеньков или побегов заразихи на их корнях. В качестве контроля был использован сорт ВНИИМК 8883, восприимчивый ко всем расам O. сumana. Восприимчивыми считались растения, на корнях которых было обнаружено более пяти клубеньков или сформировавшихся побегов заразихи, как рекомендовано [18]. К устойчивым относили растения на корнях, которых было обнаружено пять и меньше клубеньков заразихи. Для определения степени поражения подсчитыва- ли среднее количество клубеньков заразихи на одно пораженное растение. Математическую обработку проводили с использованием χ2-критерия соответствия фактических расщеплений теоретически ожидаемым при дигибридных скрещиваниях [19].
Результаты и обсуждение. В предыдущих исследованиях нами было получено семь гетерозиготных поколений F 1 и F 2 от попарного скрещивания устойчивых линий друг с другом: RG × RGP1, RG × RGM, RG × RGL1, RG × RGB, RGМ × RGL1, RGB × RGL1, RGP2 × RGL2, и показано, что гены устойчивости могут быть аллельными [20]. В данном исследовании было получено еще 13 комбинаций скрещивания для завершения теста на ал-лелизм. Перед проведением теста линии были предварительно оценены на пораженность расой G заразихи. В основном линии поражались заразихой в малой степени (пять и менее клубеньков заразихи на одно растение подсолнечника) или не поражались совсем [20]. Растения подсолнечника с небольшим числом особей заразихи на корнях условно могут быть отнесены к резистентным [14; 18].
Как было сказано выше, в ходе проведения теста на аллелизм генов устойчивости были получены 13 гетерозиготных семей F 1 и F 2 от попарного скрещивания устойчивых линий друг с другом (табл. 1). На устойчивость к расе G заразихи было оценено от 11 до 33 растений каждой комбинации F 1 . Результаты поражения гибридных растений подсолнечника представлены в таблице 1.
Количество клубеньков на пораженное растение не превышало пять.
Среди испытанных 13 комбинаций не было ни одной, не поразившейся заразихой. Наименьший процент пораженных растений показали комбинации RG × RGL2 и RG × RGP2 – 9 и 7 соответственно. Гибридная комбинация RGP1 × RGP2 показала наибольший процент пораженных растений – 63. Но несмотря на такие 5
различия количеств пораженных растений в испытываемой выборке, степень поражения была небольшой у всех гибридных комбинаций – от 1,0 до 1,8 (табл. 1). Таким образом, первое поколение гибридов является устойчивым, с неполным доминированием резистентности.
Таблица 1
Поражение расой G заразихи растений подсолнечника 13 гибридных комбинаций F 1 от попарного скрещивания устойчивых линий
Гибридная комбинация |
Количество растений, шт. |
Поражено растений, % |
Степень поражения, шт. |
||
всего |
непо-раженных |
поражен-ных |
|||
RGL2 × RGB |
28 |
21 |
7 |
25 |
1,8 |
RGL2 × RGP1 |
15 |
7 |
8 |
53 |
1,5 |
RGL1× RGL2 |
11 |
6 |
5 |
45 |
1,0 |
RGL1 × RGP2 |
14 |
6 |
8 |
57 |
1,8 |
RGP1 × RGB |
29 |
13 |
16 |
55 |
1,5 |
RGP1 × RGP2 |
33 |
12 |
21 |
63 |
1,4 |
RGP2 × RGB |
27 |
16 |
11 |
40 |
1,0 |
RGL1 × RGP1 |
28 |
14 |
14 |
50 |
1,5 |
RG × RGL2 |
21 |
19 |
2 |
9 |
1,0 |
RG × RGP2 |
13 |
12 |
1 |
7 |
1,0 |
RGM × RGL2 |
29 |
20 |
9 |
31 |
1,1 |
RGM × RGP1 |
16 |
9 |
7 |
44 |
1,1 |
RGM × RGP2 |
11 |
9 |
3 |
27 |
1 |
Контроль |
10 |
0 |
100 |
100 |
87 |
*Степень поражения – среднее количество клубеньков заразихи на пораженное растение
Для определения идентичности генов устойчивости у данных комбинаций были получены и проанализированы потомства F 2 от данных гибридов (табл. 2, 3). В таблице 2 представлены результаты поражения расой G заразихи растений подсолнечника 13 гибридных комбинаций F 2 от попарного скрещивания устойчивых линий. Не было обнаружено комбинаций без поражения заразихой. Но количество восприимчивых растений, то есть с количеством клубеньков паразита на корнях больше пяти, не превышало восьми растений. Исключением явилась комбинация скрещивания F 2 (RGL1 × RGP1), у которой количество восприимчивых растений составило 15. В общем степень поражения растений особями паразита была небольшой – от 1,0 до 3,4.
Таблица 2
Поражение расой G заразихи растений подсолнечника 13 гибридных комбинаций F 2 от попарного скрещивания устойчивых линий
Гибридная комбинация |
Количество растений, шт. |
Степень поражения, шт. |
|||
всего |
непо-раженных |
поражённых, с количеством клубеньков |
|||
5 и меньше |
больше 5 |
||||
RGL2 × RGB |
304 |
261 |
43 |
0 |
2,3 |
RGL2 × RGP1 |
369 |
225 |
143 |
1 |
1,8 |
RGL1 × RGL2 |
363 |
283 |
79 |
1 |
1,6 |
RGL1 × RGP2 |
420 |
224 |
188 |
8 |
3,5 |
RGP1 × RGB |
380 |
181 |
196 |
3 |
2,3 |
RGP1 × RGP2 |
285 |
185 |
99 |
1 |
1,6 |
RGP2 × RGB |
395 |
312 |
83 |
1 |
2,0 |
RGL1 × RGP1 |
375 |
115 |
245 |
15 |
3,4 |
RG × RGL2 |
205 |
153 |
52 |
0 |
1,1 |
RG × RGP2 |
262 |
165 |
96 |
1 |
1,9 |
RGM × RGL2 |
94 |
74 |
20 |
0 |
1,2 |
RGM × RGP1 |
7 |
4 |
3 |
0 |
1,0 |
RGM × RGP2 |
10 |
7 |
3 |
0 |
1,0 |
Контроль |
10 |
0 |
10 |
100 |
79,0 |
Количество растений у гибридов F 2 (RGM × RGP1) и F 2 (RGM × RGP2) было слишком мало для расчёта χ2 -критерия соответствия фактических расщеплений теоретически ожидаемым при дигибрид-ных скрещиваниях (7 и 10 соответственно), поэтому они были исключены из дальнейшего анализа. Для потомств остальных 11 гибридов был рассчитан χ2 -критерий (табл. 3).
Таблица 3
Анализ идентичности генов устойчивости к расе G заразихи в F 2 при попарном скрещивании устойчивых линий подсолнечника
Комбинация скрещивания |
Всего растений, шт. |
Количество растений, шт. |
Ожи-дае-мое соот-ношение |
χ2 |
df |
Р |
||
устой-чи-вых |
вос-при-им-чивых |
|||||||
RGL2 × RGB |
304 |
304 |
0 |
15 : |
1 |
|||
RGL2 × RGP1 |
369 |
368 |
1 |
15 : |
1 |
22,5 |
1 |
<0,05 |
RGL1 × RGL2 |
363 |
362 |
1 |
15 : |
1 |
21,9 |
1 |
<0,05 |
RGL1 × RGP2 |
420 |
412 |
8 |
15 : |
1 |
13,5 |
1 |
<0,05 |
RGP1 × RGB |
380 |
377 |
3 |
15 : |
1 |
21,9 |
1 |
<0,05 |
RGP1 × RGP2 |
285 |
284 |
1 |
15 : |
1 |
16,9 |
1 |
<0,05 |
RGP2 × RGB |
395 |
394 |
1 |
15 : |
1 |
24,5 |
1 |
<0,05 |
RGL1 × RGP1 |
375 |
360 |
15 |
15 : 1 |
3,2 |
1 |
0,10– 0,05 |
|
RG × RGL2 |
205 |
205 |
0 |
15 : |
1 |
|||
RG × RGP2 |
262 |
261 |
1 |
15 : |
1 |
15,6 |
1 |
<0,05 |
RGM × RGL2 |
94 |
94 |
0 |
15 : |
1 |
Ожидаемое теоретическое расщепление в F 2 при дигибридных скрещиваниях, при условии, что оба гена доминантные, независимо наследуемые и не аллельные, 15 устойчивых к 1 восприимчивому [19]. Для восьми комбинаций было обнаружено два фенотипических класса. Для остальных трех комбинаций скрещивания (RGL2 × RGB), (RG × RGL2), (RGМ × RGL2) в потомстве F 2 расщепления обнаружено не было, и χ2 для таких комбинаций не считается. Для комбинации F 2 (RGL1 × RGP1) фактически наблюдаемое расщепление соответствовало теоретически ожидаемой модели 15 : 1. Величина χ2 находилась в пределах от 0,32 до 0,69, что подтверждает гипотезу о контроле устойчивости у каждой из изучаемых линий неаллельными генами с вероятностью 0,10–0,05. Для остальных семи комбинаций значения χ2 были больше допустимых при вероятности 0,05, что указывает на то, что гены устойчивости к расе G заразихи у данных линий являются идентичными.
Линии с предположительно неаллельными генами устойчивости RGL1 и RGP1 в скрещиваниях с другими линиями показали отсутствие расщепления в F 2. Следовательно, RGL1 и RGP1 тоже обладают идентичным геном, несмотря на достоверность гипотезы о неаллельности их генов устойчивости. В предыдущем исследовании для F 2 (RGM × RGL1) и F 2 (RGB × RGL1) была подтверждена гипотеза о контроле устойчивости у каждой из изучаемых линий неаллельными генами с вероятностью от 0,3 до 0,7 [20]. Но отсутствие расщепления в скрещиваниях с одной и той же линией RG позволило предположить, что линии RGM с RGL1 и RGB с RGL1 обладают идентичным геном. В той же работе нами приведены и различные гипотезы, объясняющие искажение фенотипического проявления признака в различных комбинациях скрещиваний: линии могут иметь один и тот же локус устойчивости, но, возможно, с разными аллелями; дополнительные
QTL с незначительным влиянием на устойчивость к расе G заразихи могут влиять на искажение фенотипического проявления признака в различных комбинациях скрещиваний из-за различного генетического окружения гена ус-устойчивости; возможно неправильное определение фенотипов растений как восприимчивых, поскольку классы восприимчивых и устойчивых растений определены условно; вероятно присутствие единичных, более вирулентных биотипов, чем раса G, заразихи среди семян паразита, используемых для создания инфекционного фона. Такие биотипы могут единично поражать линии, устойчивые к расе G [20].
Выводы. Таким образом, в результате проведенного теста на аллелизм доминантных генов устойчивости к расе G заразихи у линий подсолнечника селекции ВНИИМК (RG, RGP1, RGP2, RGВ, RGL1, RGL2, RGM) в 11 комбинациях скрещиваний подтверждена их идентичность.
Исследования выполнены при финансовой поддержке Российского фонда фундаментальных исследований и Администрации Краснодарского края, грант №19-44-230025.
Список литературы Идентичность генов устойчивости к расе G заразихи у линий подсолнечника разного происхождения
- Kostenkova E.V., Bushnev A.S., Vasilko V.P. The study of Helianthus annuus L. of domestic breeding in arid Crimea // IOP Conference Series: Earth and Environmental Science. - 2019. - V. 341 (1). - P. №012011.
- Molinero-Ruiz L., Delavault P., Pérez-Vich B., Pacureanu-Joita M., Bulos M., Altieri E., Domínguez J. History of the race structure of Orobanche cumana and the breeding of sunflower for resistance to this parasitic weed // A review: Spanish Journal of Agricultural Research. - 2015. - V. 13 (4). - P. e10R01. DOI: http://dx.doi.org/10.5424/sjar/2015134-8080.
- Cveji'c S., Radanovi'c A., Dedi'c B., Jockovi'c M., Joci'c S., Miladinovi'c D. Genetic and genomic tools in sunflower breeding for broomrape resistance // Genes. - 2020. - V. 11, Is. 152. doi. org/10.3390/genes11020152.
- Kaya Y. Current situation of sunflower broom-rape around the world // In Proceedings of the 3rd International Symposium on Broomrape (Orobanche spp.) in Sunflower, Cordoba, Spain, June 3-6, 2014. -P. 9-18.
- Duca M., Clapco S., Nedealcov M., Dencicov L. Influence of environmental conditions on the virulence and distribution of Orobanche cumana Wallr. in the Republic of Moldova // OCL. - 2019. - V. 26. -No. 3. - 10 p. https://doi.org/10.1051/ocl/2018049.
- Maklik E., Kyrychenko V.V., Pacureanu M.J. Race composition and phenology of sunflower broomrape (Orobanche cumana Wallr.) in Ukraine // In: Proceedings of the 4th International Symposium on Broomrape in Sunflower, Bucharest, Romania, July 2-4, 2018. - P. 67-78.
- Антонова Т.С., Арасланова Н.М., Питинова Ю.В. Расовая принадлежность семян заразихи (Orobanche cumana Wallr.), собранных на полях разных регионов РФ в 2019 году // Аграрная наука. -2020. - Т. 6. - С. 62-65. DOI: 10.32634/0869-81552020-339-6-62-65.
- Perez-Vich B., Perez-Vich B., Velasco L., Rich P.J., Ejeta G. Marker-assisted and physiology-based breeding for resistance to root parasitic Orobanchaceae // In: Parasitic Orobanchaceae. -Springer: Berlin/Heidelberg, Germany, 2013. - P. 369-391.
- Velasco L., Perez-Vich B., Yassein A.A., Jan C.C., Fernandez-Martinez /.M.Inheritance of resistance to sunflower broomrape (Orobanche cumana Wallr.) in an interspecific cross between Helianthus annuus and Helianthus debilis subsp. Tardiflorus // Plant Breed. - 2012. - Vol. 131. - P. 220-221. https://doi.org/ 10.1111/j.1439-0523.2011.01915.x.
- Imerovski I., Dimitrijevic A., Miladinovic D., Dedic B., /ocic S., Tubic N.K., Cvejic S. Mapping of a new gene for resistance to broomrape races higher than F // Euphytica. - 2016. - V. 209. - P. 281-289. DOI: 10.1007/s10681-015-1597-7.
- Imerovski I., Dedic B., Cvejic S., Miladinovic D., /ocic S., Owens G.L., Tubic N.K., Rieseberg L.H. BSA-seq mapping reveals major QTL for broomrape resistance in four sunflower lines // Mol. Breeding. -2019. - Vol. 39. - 41 p. https://doi.org/10.1007/s11032-019-0948-9.
- Антонова Т.С., Арасланова Н.М., Стрельников ЕА., Гучетль С.З., Челюстникова ТА. Скрининг образцов культурного и дикорастущего подсолнечника на устойчивость к расе G (Oroban-he cumana Wallr.), распространяющейся на юге России // Наука Кубани. - 2016. - № 3. - С. 4-12.
- Гучетль С.З., Арасланова Н.М., Антонова Т.С., Челюстникова Т.А., Питинова Ю.В. Генетический анализ устойчивости к расе G Oroban-che cumana Wallr. в F2 и ВС1 линий подсолнечника RGP1, RGP2, RGВ, RGL1, RGL2 // Масличные культуры. - 2019. - Вып. 4 (180) . - С. 23-28.
- Boyd L.A., Ridout C., O'Sullivan D.M., Leach J.E., Leung H. Plant-pathogen interactions: Disease resistance in modern agriculture // Trend Genet. - 2013. - V. 29. - P. 233-240. https://doi.org/10.1016/j .tig.2012.10.011
- Демурин Я.Н., Савченко В.Д., Борисенко О.М. [и др.]. Заразихоустойчивый гибрид подсолнечника Тайзар // Масличные культуры. - 2020. -Вып. 4 (184). - С. 87-90. DOI: 10.25230/2412-608X-2020-4-184-87-90.
- Croll D., Laine A. What the population genetic structures of host and pathogen tell us about disease evolution // New Phytologist. - 2016. - Vol. 212. - Is. 3. - P. 537-539. https://doi.org/10.1111/nph.14203.
- Панченко А.Я. Ранняя диагностика зара-зихоустойчивости при селекции и улучшающем семеноводстве подсолнечника // Вестник с.-х. науки. - 1975. - Вып. 2. - P. 107-115.
- Acimovic M. Phisiological races of Orobanche cumana Wallr. on sunflowers in Yugoslavia // In: Proc. of the 9-th Intern. Sunflower Conference. -1980. - 1. - P. 162-165.
- Гостимский С.А., Синюшин А.А., Хартина Г.А. Генетический анализ у растений. - М.: МАКС Пресс, 2015. - 68 с.
- Гучетль С.З., Арасланова Н.М., Антонова Т.С., Челюстникова Т.А., Питинова Ю.В. Идентичность генов устойчивости к расе G заразихи у некоторых линий подсолнечника // Вестник российской сельскохозяйственной науки. - 2020. - Т. 6. - С. 45-49. DOI: 10.30850/vrsn/2020/6/45-49.