Иммуногенность и инвазивность микроорганизмов рода Bacillus при пероральном применении
Автор: Донченко Н.А., Козлова Ю.Н., Коптев В.Ю., Ян Ф., Хоменко Ю.С., Нефедова Е.В., Афонюшкин В.Н., Мишукова О.В., Ермакова Л.П., Ан К.В., Новик Я.В.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Ветеринарная вирусология, микробиология, иммунология
Статья в выпуске: 4 т.59, 2024 года.
Бесплатный доступ
Иммуномодулирующие эффекты пробиотиков на основе микроорганизмов рода Bacillus связаны с их способностью к проникновению через слизистые оболочки желудочно-кишечного тракта в кровеносную систему. Представляется перспективным создание рекомбинантных вакцин на основе микроорганизмов рода Bacillus , продуцирующих рекомбинантные антигены наиболее значимых и антигенно изменчивых вирусных и бактериальных агентов сельскохозяйственной птицы, свиней и крупного рогатого скота. Проблема пероральной вакцинации заключается в развитии пищевой иммунотолерантности, связанной с вовлечением в реакции адаптивного иммунитета CD4+ и CD8+/Treg лимфоцитов, подавляющих иммунный ответ в отношении вводимого антигена. В настоящей работе впервые показано, что наличие инвазивности у микроорганизмов родов Bacillus и Geobacillus служит важным, но не единственным фактором, определяющим их иммуногенность. Мы установили, что, помимо B. subtillis, в качестве средства доставки рекомбинантных антигенов можно рассматривать B. atrophaeus. Нашей целью был поиск штаммов рода Bacillus, обладающих оптимальной инвазивностью и иммуногенностью, как пероральных средств доставки рекомбинантных антигенов с эффектом преодоления пищевой иммунотолерантности. Культуры микроорганизмов рода Bacillus были предоставлены Институтом химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН (ИХБФМ СО РАН) (22 культуры) и ООО «СибАФ» (г. Бердск) (7 культур). Идентификацию культур проводили методом секвенирования 16S рибосомальной РНК по Сэнгеру. Штаммы высевали на 3 % триптиказо-соевой бульон (TSB), 0,5 % дрожжевой экстракт (YE) и 1,5 % агар Bacto («BD Biosciences», США), после чего инкубировали при 37 °C в течение 16 ч. Бактериальные клетки инактивировали прогреванием при 65 °С в течение 3 ч и добавлением фурацилина до концентрации 0,1 %. Культуры 29 штаммов тестировали на иммуногенность in vivo на мышах-гибридах F1 (A/Sn × Balb/C). Животным выпаивали перорально через зонд по 200 мкл культуральной жидкости микроорганизмов родов Bacillus и Geobacillus в концентрации 0,7 ед. McF, 3-кратно с интервалом 7 сут. Через 3 нед брали кровь для серологических исследований. Показатели иммуногенности и инвазивности оценивали в реакции агглютинации с флуоресцентно меченными О-антигенами. Реакцию агглютинации проводили с сыворотками крови мышей. Инвазивность при пероральном введении культур рода Bacillus оценивали посредством постановки биопробы на 10-суточных цыплятах (Gallus gallus L.) кросса Shaver. Ежесуточно в течение 10 сут цыплятам вводили 1-суточную культуру исследуемого микроорганизма в дозе 200 мкл орально (1 млрд КОЕ/мл). На 11-е сут проводили убой и делали посевы биоматериала (мышцы, печень и сердце) на мясопептонный агар и в мясопептонный бульон. Также анализировали инвазивность микроорганизмов рода Bacillus на мышах линии С57Black. Животным вводили орально по 100 мкл культуры микроорганизма 1 раз в сутки в течение 2 сут подряд. На 3-и сут проводили убой и делали посевы материала печени и сердца на Eugonic агар, мясопептонный агар и в мясопептонный бульон. При проведении теста на наличие биосурфактантной активности Oil spreading assay культуральную жидкость разводили дистиллированной водой и вносили 20 мкл нефти. В качестве негативного контроля использовали дистиллированную воду, в качестве позитивного контроля - SDS (sodium dodecyl sulfate, 1 % v/v). Разрушение нефтяного пятна учитывали как положительный результат. Только 27,5 % культур микроорганизмов рода Bacillus инициировали образование антител к собственным корпускулярным антигенам при пероральном введении мышам F1 (A/Sn × Balb/C). Среди изученных культур B. subtilis образование антител вызывали 71,42 %. Образование антител также стимулировали культуры других видов: B. atrophaeus B8, изолят B23 B. zhangzhoulensis (по другим источникам отнесен к B. pumilus или B. safensis), штамм B. licheniformis В10. Большинство микроорганизмов рода Bacillus не стимулировали продукцию антител к собственным антигенам. Культуры B. mucoides / B. weihenstephanensis B31, B. simplex B32, B. thuringiensis B20, B. subtillis, B. amyloliquefaciens 2-15, Bacillus spp. 1’-37-7 оказывали патогенное действие, сопровождавшееся гибелью мышей при пероральном введении: погибало от 25 до 50 % особей. При пероральном введении культур рода Bacillus птице у всех опытных кур грудные и бедренные мышцы были контаминированы на 100 %, печень и сердце - соответственно на 96 и 52 %. Инвазивность для мышей характеризовалась выявлением микроорганизмов в образцах печени и сердца через 18 ч после последнего перорального введения. Устойчивой инвазивностью обладали культуры Bacillus spp. B56, Bacillus spp. В50, B. atrophaeus B8 и B. safensis В23. Однако антитела были обнаружены только к B. atropheus B8 и B. safensis В23.
Bacillus, споровые пробиотики, иммунофлуоресцентная реакция агглютинации, вакцинация, иммуногенность, инвазивность, кормовые вакцины, рекомбинантные вакцины, векторный штамм
Короткий адрес: https://sciup.org/142243781
IDR: 142243781 | DOI: 10.15389/agrobiology.2024.4.814rus
Список литературы Иммуногенность и инвазивность микроорганизмов рода Bacillus при пероральном применении
- Блохина Е.А., Равина И.В. Конструирование мозаичных HBC-частиц, несущих консервативные участки м2-белка и гемагглютинина вируса гриппа А. Вопросы вирусологии, 2018, 63(3): 130-135 (doi: 10.18821/0507-4088-2018-63-3-130-135).
- Коптев В.Ю., Ладейщикова Е.Е., Козенёва В.С. Пробиотические штаммы микроорганизмов рода Bacillus в птицеводстве. Птицеводство, 2018, 8: 47-48.
- Афонюшкин В.Н., Донченко Н.А., Коптев В.Ю., Фуди Я., Барсукова Е.Н., Козлова О.С. "Малая" биотехнология или хозяйство-ориентированная биотехнология в ветеринарии — аналог персонализированной медицины. Ветеринария, 2022, 11: 28-34 (doi: 10.30896/0042-4846.2022.25.11.28-34).
- Ahmed M., Loos D., Vanrompay E., Cox E. Oral immunization with Lactococcus lactis-expressing EspB induces protective immune responses against Escherichia coli O157:H7 in a murine model of colonization. Vaccine, 2014, 32(31): 3909-3916 (doi: 10.1016/j.vaccine.2014.05.054).
- Amuguni H., Zipori S. Bacillus subtilis: a temperature resistant and needle free delivery system of immunogens. Human Vaccines & Immunotherapeutics, 2012, 8(7): 979-986 (doi: 10.4161/hv.20694).
- Afonyushkin V.N., Kechin A.A., Tromenshleger I.N., Filipenko M.L., Smetanina M.A. Determination of cell concentrations in stationary growing Lactobacillus salivarius cultures in relation to formation of biofilms and cell aggregates. Microbiology, 2017, 86(6): 793-798 (doi: 10.7868/S0026365617060039).
- Das K., Mukherjee A.K. Crude petroleum-oil biodegradation efficiency of Bacillus subtilis and Pseudomonas aeruginosa strains isolated from a petroleum-oil contaminated soil from North-East India. Bioresource Technology, 2007, 98(7): 1339-1345 (doi: 10.1016/j.biortech.2006.05.032).
- Plaza-Diaz J., Ruiz-Ojeda F.J., Gil-Campos M., Gil A. Mechanisms of action of probiotics. Advances in Nutrition, 2019, 10(suppl_1): S49-S66 (doi: 10.1093/advances/nmy063).
- Ahiwe E.U., Abdallh M.E., Chang'a E.P., Omede A.A., Al-Qahtani M, Gausi H. Graham H., Iji P.A. Influence of dietary supplementation of autolyzed whole yeast and yeast cell wall products on broiler chickens. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 2020, 33(4): 579-587 (doi: 10.5713/ajas.19.0220).
- Barnes A.G.C., Cerovic V., Hobson P.S., Klavinskis L.S. Bacillus subtilis spores: a novel microparticle adjuvant which can instruct a balanced Th1 and Th2 immune response to specific antigen. Eur. J. Immunol., 2007, 37(6): 1538-1547 (doi: 10.1002/eji.200636875).
- ОФС.1.7.2.0012.15 Производственные пробиотические штаммы и штаммы для контроля пробиотиков. Режим доступа: http://pharmacopoeia.ru/ofs-1-7-2-0012-15-proizvodstvennye-probioticheskie-shtammy-i-shtammy-dlya-kontrolya-probiotikov/#:~:text=1.7.2.0012.15. Без даты.
- Hassanshahian M. Isolation and characterization of biosurfactant producing bacteria from Persian Gulf (Bushehr provenance). Marine Pollution Bulletin, 2014, 86(1-2): 361-366 (doi: 10.1016/j.marpolbul.2014.06.043).
- Хоменко Ю.С., Нефедова Е.В., Козлова О.С., Афонюшкин А.В., Афонюшкин В.Н. Выявление эпизоотически значимого серотипа сальмонелл с использованием иммунофлуо-ресцентной реакции агглютинации (ИРА). Инновации и продовольственная безопасность, 2022, 3(37): 102-106.
- De Souza R.D., Batista M.T., Luis W.B., Cavalcante R.C.M., Amorim J.H., Bizerra R.S.P., Martins E.G., de Souza Ferreira L.S. Bacillus subtilis spores as vaccine adjuvants: further understanding of the mechanisms of action. PLoS ONE, 2014, 9(1): e87454 (doi: 10.1371/journal.pone.0087454).
- Ermakova L.P., Mench I.K., Scheptulja Ju.S., Barsukova E.N., Nozdrin G.A. Effect of various doses of probiotic Vetom 1 comprised of a Bacillus subtilis strain on relative weights of some internalorgans in Pharaon quails. Bulletin of Environment, Pharmacology and Life Sciences, 2021, 10(4): 102-104.
- Song M., Hong H.A., Huang J.M., Colenatt S., Khan D.D., Nguyen TV, Pak S.M., Shim B.S., Song H.H., Cheong Y.S., Chan J.E., Choi J.A., Choi Y.K., Stadler K., Cutting S.M. Killed Bacillus subtilis spores as a mucosal adjuvant for an H5N1 vaccine. Vaccine, 2012, 30(22): 3266-3277 (doi: 10.1016/j.vaccine.2012.03.016).
- Cox J.C., Coulter A.R. Adjuvants — classification and overview of their modes of action. Vaccine, 1997, 15(3): 248-256 (doi: 10.1016/s0264-410x(96)00183-1).
- Lee B.-J., Kwon H.-i., Kim E.-H., Park S.-J., Lee S.-H., Choi Y.-K., Kim S.-H. Assessment of mOMV adjuvant efficacy in the pathogenic H1N1 influenza virus vaccine. Clin. Exp. Vaccine Res., 2014, 3(2): 194-201 (doi: 10.7774/cevr.2014.3.2.194).
- Paccez J.D., Nguyen H.D., Luiz W.B., Ferreira R.C., Sbrogio-Almeida M.E., Schuman W., Ferreira L.C. Evaluation of different promoter sequences and antigen sorting signals on the immunogenicity of Bacillus subtilis vaccine vehicles. Vaccine, 2007, 25(24): 4671-4680 (doi: 10.1016/j.vaccine.2007.04.021).
- Tarahomjoo S. Recent approaches in vaccine development against Streptococcus pneumoniae. Journal of Molecular Microbiology and Biotechnology, 2014, 24(4): 215-227 (doi: 10.1159/000365052).
- Reed S.G., Bertolet S., Kohler R.N., Friede M. New horizons in adjuvants for vaccine development. Trends in Immunology, 2009, 30(1): 23-32 (doi: 10.1016/j.it.2008.09.006).
- Reid S.G., Orr M.T., Fox C.B. Key roles of adjuvants in modern vaccines. Nature Medicine, 2013, 19(12): 1597-1608 (doi: 10.1038/nm.3409).
- He H., MacKinnon K.M., Genovese K.J., Kogut M.H. CpG oligodeoxynucleotide and double-stranded RNA interact with each other, increasing the production of nitric oxide and the expression of mRNA of inducible nitric oxide synthase, pro-inflammatory cytokines and chemokines in chicken monocytes. Innate Immunity, 2011, 17(2): 137-144 (doi: 10.1177/1753425909356937).
- Lee B.B., Yang T.S., Goo D., Choi H.S., Pitarg F.M., Jung H., Keel D.Y. Effect of dietary β-mannanase supplementation on the additivity of true metabolizable energy values for broiler diets. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 2018, 31(4): 564-568 (doi: 10.5713/ajas.17.0785).
- Ma Y., Wang W., Zhang X., Wang J., Zhang W., Gao J., Wu S., Qi G. Supplemental Bacillus subtilis DSM 32315 manipulates intestinal structure and microbial composition in broiler chickens. Scientific Representative, 2018, 8: 15358 (doi: 10.1038/s41598-018-33762-8).
- Vogel F.R. Immunological adjuvants for modern vaccines. Annals of the New York Academy of Sciences, 1995, 754(1): 153-160 (doi: 10.1111/j.1749-6632.1995.tb44448.x).
- Bettelli E., Carrier Y, Gao W., Korn T., Strom T.B., Oukka M., Weiner H.L., Kuchro V.K. Reciprocal developmental pathways for the generation of pathogenic effector TH17 and regulatory T cells. Nature, 2006, 441: 235-238 (doi: 10.1038/nature04753).
- Pulendran B., Ahmed R. Translating innate immunity into immunological memory: implications for vaccine development. Cell, 2006, 124(4): 849-863 (doi: 10.1016/j.cell.2006.02.019).
- 29Schiffer C., Lalanne A.I., Cassard L., Mancardi D.A., Malbec O., Bruhns P., Dif F., Daeron M. A strain of Lactobacillus casei inhibits the effector phase of immune inflammation. J. Immunol., 2011, 187(5): 2646-2655 (doi: 10.4049/jimmunol.1002415).
- Lee W.-W., Kang S.W., Choi J., Li S.-H., Shah K., Einon E.E., Flavell R.A., Kang I. Regulating human Th17 cells via differential expression of IL-1 receptor (doi: 10.1182/blood-2009-08-236521).
- Stephen-Victor E., Sharma V.K., Das M., Karnam A., Saha C., Lecerf M., Galeotti C., Kaveri S.V., Bayry J. IL-1β but not programmed death-1 pathway and programmed death ligand pathway, has a critical significance for the human Th17 response to Mycobacterium tuberculosis. Front. Immunol., 2016, 7: 465 (doi: 10.3389/fimmu.2016.00465).
- Hamada H., Garcia-Hernandez Mde L., Reome J.B., Misra C.K., Strutt T.M., McKinstry K.K., Cooper A.M., Swain S.L., Dutton R.W. Tc17, a unique subset of CD8 T cells that may protect against deadly influenza infection. J. Immunol., 2009, 182(6): 3469-3481 (doi: 10.4049/jimmunol.0801814).
- Hong J.E., Kee Y.S., Park S.M., Cheon I.S., Choo H., Park B.-C., Park Y.M., Chang J., Cho J.-H., Song M.K., Khan S., Yun S.-N. Alveolar macrophages treated with Bacillus subtilis spores protect mice infected with respiratory syncytial virus A2. Front. Microbiol., 2019, 10: 447 (doi: 10.3389/fmicb.2019.00447).
- Jakava-Viljanen M., Palva A. Isolation of surface (S) layer protein carrying Lactobacillus species from porcine intestine and faeces and characterization of their adhesion properties to different host tissues. Veterinary Microbiology, 2007, 124(3-4): 264-273 (doi: 10.1016/j.vetmic.2007.04.029).
- Ciszek-Lenda M., Nowak B., Śróttek M., Górska-Frączek S., Gamian A., Marcinkiewicz J. Immunosuppressive effect of systemic administration of Lactobacillus rhamnosus KL37C-derived exopolysaccharide on the OVA-specific humoral response. Central European Journal of Immunology, 2012, 37(4): 338-344 (doi: 10.5114/ceji.2012.32722).
- Konstantinov S.R., Smidt H., de Vos W.M., Bruijns S.C., Singh S.K., Valence F., Molle D., Lortal S., Altermann E., Klaenhammer T.R., van Kooyk Y. S layer protein A of Lactobacillus acidophilus NCFM regulates immature dendritic cell and T cell functions. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2008, 105(49): 19474-19479 (doi: 10.1073/pnas.0810305105).