Инфекционная активность вируса африканской чумы свиней в лабораторных образцах и пищевых продуктах при разных температурных режимах (с экстраполяцией на сохраняемость в природных условиях)

Автор: Синдрякова И.П., Моргунов Ю.П., Чичикин А.Ю., Газаев И.Х., Кудряшов Д.А., Цыбанов С.Ж.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Вирус африканской чумы свиней: персистенция и диагностика

Статья в выпуске: 4 т.51, 2016 года.

Бесплатный доступ

Известно, что вирус африканской чумы свиней (АЧС) может распространяться алиментарно (например, вследствие скармливания животным контаминированных вирусом пищевых и боенских отходов, не подвергнутых термической обработке, комбикормов, не прошедших ветеринарно-санитарную экспертизу и поступивших из неблагополучных районов, и т.п.). Свинина служит сырьем для приготовления солонины, мясных консервов, сала и других пищевых продуктов. Сохраняемость вируса в них окончательно не изучена. Нами впервые выполнены исследования инфекционной активности изолята вируса АЧС, циркулирующего на территории Российской Федерации, в контаминированной продукции свиноводства, кормах, а также в пробах, предназначенных для ветеринарно-санитарного надзора. С этой целью мы экспериментально заражали 3-4-месячных подсвинков с живой массой 20-30 кг, вводя внутримышечно вирусосодержащую кровь. Животных инокулировали изолятом Волгоград-Калач 2012 с исходным инфекционным титром 7,5 lg ГАЕ50/см3 (получен из Государственной коллекции ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии). Через 3 сут после заражения проводили убой, отбирали пробы органов и тканей для выявления вируса, а из мяса изготавливали солонину, мясные консервы и шпик. Кровь, содержащую вирус АЧС, использовали также для искусственной контаминации образцов кормов и питьевой воды. Для изучения влияния температуры хранения образцов на инфекционную активность вируса и на возможность обнаружения фрагментов его генома приготовленные образцы распределили по аликвотам для дальнейшего хранения при различных температурных режимах: 20-25 °С (комнатная температура); 4-6 °С (условия бытового холодильника); -16…-20 °С (температура морозильной камеры). Температуры, выбранные для хранения образцов, соответствовали естественным погодным условиям в разные времена года (20-25 °С летом, -16…-20 °С зимой); температура 4-6 °С, как правило, поддерживается в тамбуре свинарника или кормокухне в зимние месяцы. Через каждые 5 сут отбирали пробы для определения титра вируса АЧС в образцах и выявления его генома. Выделение вируса проводили в первичной культуре клеток костного мозга свиньи в течение 5 сут в двух последовательных пассажах. Результаты учитывали по гемадсорбирующим свойствам вируса (РГАд) и в ПЦР в реальном времени (ПЦР-РВ). Установлено, что вирус АЧС обнаруживается в солонине и шпике, хранившихся при 20-25 °С в течение 16 сут. При температуре хранения 4-6 °С вирус в солонине выявляли в течение срока наблюдения (60 сут). В образцах, хранившихся при отрицательных температурах, вирус АЧС сохранял инфекционную активность на протяжении всего периода исследований (60 сут) и были найдены фрагменты его ДНК. Таким образом, в пробах органов и пищевых продуктах, полученных от свиней убитых в ранние сроки после заражения, инфекционный вирус АЧС сохраняется (в зависимости от условий хранения) длительное время и может представлять серьезную опасность как фактор распространения возбудителя. Полученные данные также позволяют прогнозировать температурные условия, способствующие поддержанию циркуляции вируса в очагах АЧС.

Еще

Африканская чума свиней, ачс, вирус, реакция гемадсорбции, полимеразная цепная реакция в режиме реального времени, ргад, пцр-рв, эпизоотия, ликвидация очага ачс

Короткий адрес: https://sciup.org/142213953

IDR: 142213953   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2016.4.467rus

Список литературы Инфекционная активность вируса африканской чумы свиней в лабораторных образцах и пищевых продуктах при разных температурных режимах (с экстраполяцией на сохраняемость в природных условиях)

  • Mur L., Martinez-Lopez B., Sanchez-Vizcaino J.M. Risk of African swine fever introduction into the European Union through transport-associated routes: returning trucks and waste from international ships and planes. BMC Vet. Res., 2012, 8: 149 ( ) DOI: 10.1186/1746-6148-8-149
  • Beltran-Alcrudo D., Lubroth J., Depner K., De La Rocque S. African swine fever in the Caucasus. EMPRES Watch, 2008, April: 1-8.
  • Данкверт С.А. Эпизоотическая ситуация в Российской Федерации по африканской чуме свиней (по состоянию на 1 октября 2013 года). Режим доступа: http://www.fsvps.ru/fsvps/iac/re-port.html. Без даты.
  • Макаров В.В. Африканская чума свиней. М., 2011.
  • Gogin A., Gerasimov V., Malogolovkin A., Kolbasov D. African swine fever in the North Caucasus region and the Russian Federation in years 2007-2012. Virus Res., 2013, 173: 198-203 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2012.12.007
  • Власов Н.А. О развитии эпизоотической ситуации по АЧС на территории Российской Федерации. Режим доступа: http://www.fsvps.ru/fsvps-docs/ru/iac/2009/files/iac_asf.pdf. Без даты.
  • О реализации мероприятий по ликвидации АЧС на территории Российской Федерации. Режим доступа: http://www.fsvps.ru/fsvps-docs/ru/iac/2011/files/asf_2011-06-29.pdf. Без даты.
  • Morilla A. Las enfermedades virales emergentes de los cerdos. Ciencia veterinaria, 2003, 9: 197-219.
  • Wooldridge M., Hartnett E., Cox A., Seaman M. Quantitative risk assessment case study: smuggled meats as disease vectors. Rev. Sci. Tech., 2006, 25: 105-117 ( ) DOI: 10.20506/rst.25.1.1651
  • Mur L., Martinez-Lopez B., Martinez-Aviles M., Costard S., Wieland B., Pfeiffer D.U., Sanchez-Vizcaino J.M. Quantitative risk assessment for the introduction of African swine fever virus into the European Union by legal import of live pigs. Transbound. Emerg. Dis., 2012, 59: 134-144 ( ) DOI: 10.1111/j.1865-1682.2011.01253.x
  • Carrascosa A.L., Bustos M.J., de Leon P. Methods for growing and titrating African swine fever virus: field and laboratory samples. In: Current Protocols in Cell Biology. Wiley, Hoboken, 2011. Suppl. 53. Unit 26.14: 26.14.1-26.14.25 ( ) DOI: 10.1002/0471143030.cb2614s53
  • Инструкция по применению «Тест-системы для выявления ДНК вируса АЧС методом ПЦР в реальном времени». Покров, 2013.
  • Моргунов Ю.П., Петров Ю.И. Изучение иммунобиологических свойств вируса африканской чумы свиней 5-го типа: выделение, типизация и определение референс-штамма. Проблемы биологии продуктивных животных, 2010, 4: 104-111.
  • EFSA AHAW Panel (EFSA Panel on Animal Health and Welfare). EFSA Journal, 2015, 13(7): 4163 ( ) DOI: 10.2903/j.efsa.2015.4163
  • Spickler A.R., Roth J.A. African swine fever. In: African swine fever. Iowa State University, College of Veterinary Medicine, 2011.
  • Bronsvoort B.M.D., Alban L., Greiner M. Quantitative assessment of the likelihood of the introduction of classical swine fever virus into the Danish swine population. Prev. Vet. Med., 2008, 85: 226-240 ( ) DOI: 10.1016/j.prevetmed.2008.01.013
  • de Vos C.J., Saatkamp H.W., Nielen M., Huirne R.B. Scenario tree modeling to analyze the probability of classical swine fever virus introduction into member states of the European Union. Risk Analysis, 2004, 24: 237-253 ( ) DOI: 10.1111/j.0272-4332.2004.00426.x
  • Adkin A., England T., Hall S., Coburn H., Marooney C.J., Seaman M., Cooper J., Hartnett E. Estimating the risk of exposure of British livestock to foot-and-mouth disease associated with the importation of ship and aircraft waste. Vet. Rec., 2008, 163: 235-240 ( ) DOI: 10.1136/vr.163.8.235
  • Corso B. Likelihood of introducing selected exotic diseases to domestic swine in the continental United States of America through uncooked swill. Rev. Sci. Tech., 1997, 16: 199-206 ( ) DOI: 10.20506/rst.16.1.1005
  • Gale P. Risks to farm animals from pathogens in composted catering waste containing meat. Vet. Rec., 2004, 155: 77-82 ( ) DOI: 10.1136/vr.155.3.77
  • Iglesias I., Muñoz M.J., Montes F., Pérez A., Gogin A., Kolbasov D., de la Torre A. Reproductive ratio for the local spread of African swine fever in wild boars in the Russian Federation. Transbound. Emerg. Dis., 19 FEB 2015 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12337
  • Costard S., Jones B.A., Martínez-López B., Mur L., de la Torre A., Martínez M., Sánchez-Vizcaíno F., Sánchez-Vizcaíno J.M., Pfeiffer D.U., Wieland B. Introduction of African swine fever into the European Union through illegal importation of pork and pork products. PLoS ONE, 2013, 8(4): e61104 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0061104
  • Adkin A., Coburn H., England T., Hall S., Hartnett E., Marooney C., Wooldridge M., Watson E., Cooper J., Cox T., Seaman M. Risk assessment for the illegal import of contaminated meat and meat products into Great Britain and the subsequent exposure of GB livestock (IIRA): foot and mouth disease (FMD), classical swine fever (CSF), African swine fever (ASF), swine vesicular disease (SVD). New Haw, Veterinary Laboratories Agency, 2004.
  • Sánchez-Vizcaíno J.M., Mur L., Martínez-López B. African swine fever (ASF): five years around Europe. Vet. Microbiol., 2013, 165(1-2): 45-50 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2012.11.030
  • Scientific Opinion on African swine fever. EFSA Panel on Animal Health and Welfare (AHAW). EFSA Journal, 2010, 8(3): 1556 ( ) DOI: 10.2903/j.efsa.2010.1556
  • Mebus C., Arias M., Pineda J., Tapiador J., House J., Sánchez-Vizcaíno J.M. Survival of several porcine viruses in different Spanish dry-cured meat products. Food Chem., 1997, 59(4): 555-559 ( ) DOI: 10.1016/S0308-8146(97)00006-X
Еще
Статья научная