Изучение антигенности, иммуногенности и протективности ДНК-конструкций, содержащих фрагменты генов CP204L, E183l и EP402R вируса африканской чумы свиней

Изучение антигенности, иммуногенности и протективности ДНК-конструкций, содержащих фрагменты генов CP204L, E183l и EP402R вируса африканской чумы свиней

Автор: Иматдинов А.Р., Дубровская О.А., Морозова Д.Ю., Лыска В.М., Середа А.Д.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Ветеринарная вирусология, иммунология

Статья в выпуске: 4 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

Африканская чума свиней (АЧС, ASF) - вирусная контагиозная септическая болезнь, поражающая диких и домашних свиней всех пород и возрастов. У домашних свиней и диких европейских кабанов отмечают сверхострое или острое течение заболевания с лихорадкой, признаками токсикоза, геморрагическим диатезом и смертностью до 100 %. В эндемичных регионах (некоторые страны Восточной Африки) описана подострая форма болезни со смертностью от 30 до 70 %, а также хроническая - с очень низкой смертностью (S. Blome с соавт., 2013; C. Gabriel с соавт., 2011; J.M. Sánchez-Vizcaíno с соавт., 2015). Против АЧС вакцин нет. Исследования по разработке живых, инактивированных, субъединичных вакцин пока не принесли желаемых результатов (P.J. Sánchez-Cordón с соавт., 2017; V. O’Donnell с соавт., 2016; S. Blome с соавт., 2014). В ряде лабораторий мира в качестве перспективы рассматривается возможность получения ДНК-вакцины на основе генов потенциально протективных белков вируса АЧС (ASFV) - р30, р54 и CD2v...

Еще

Африканская чума свиней, рекомбинантные плазмиды, белки asfv р30, asfv proteins р30, р54 и cd2v, антигенность, иммуногенность, р54 and cd2v

Короткий адрес: https://sciup.org/142216585

IDR: 142216585   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2018.4.860rus

Список литературы Изучение антигенности, иммуногенности и протективности ДНК-конструкций, содержащих фрагменты генов CP204L, E183l и EP402R вируса африканской чумы свиней

  • Blome S., Gabriel C., Beer M. Pathogenesis of African swine fever in domestic pigs and European wild boar. Virus Res., 2013, 173(1): 122-130 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2012.10.026
  • Gabriel C., Blome S., Malogolovkin A., Parilov S., Kolbasov D., Teifke J.P., Beer M. Characterization of African swine fever virus Caucasus isolate in European wild boars. Emerg. Infect. Dis., 2011, 17(12): 2342-2345 ( ) DOI: 10.3201/eid1712.110430
  • Sánchez-Vizcaíno J.M., Mur L., Gomez-Villamandos J.C., Carrasco L. An update on the epidemiology and pathology of African swine fever. J. Comp. Pathol., 2015, 152(1): 9-21 ( ) DOI: 10.1016/j.jcpa.2014.09.003
  • Sánchez-Cordón P.J., Chapman D., Jabbar T., Reis A.L., Goatley L., Netherton C.L., Taylor G., Montoya M., Dixon L. Different routes and doses influence protection in pigs immunised with the naturally attenuated African swine fever virus isolate OURT88/3. Antiviral Res., 2017, 138: 1-8 ( ) DOI: 10.1016/j.antiviral.2016.11.021
  • O’Donnell V., Holinka L.G., Sanford B., Krug P.W., Carlson J., Pacheco J.M., Reese B., Risatti G.R., Gladue D.P., Borca M.V. African swine fever virus Georgia isolate harboring deletions of 9GL and MGF360/505 genes is highly attenuated in swine but does not confer protection against parental virus challenge. Virus Res., 2016, 221: 8-14 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2016.05.014
  • Blome S., Gabriel C., Beer M. Modern adjuvants do not enhance the efficacy of an inactivated African swine fever virus Vaccine preparation. Vaccine, 2014, 32(31): 3879-3882 ( ) DOI: 10.1016/j.vaccine.2014.05.051
  • Lacasta A., Ballester M., Monteagudo P.L., Rodríguez J.M., Salas M.L., Accensi F., Pina-Pedrero S., Bensaid A., Argilaguet J., López-Soria S., Hutet E., Le Potier M.F., Rodríguez F. Expression library immunization can confer protection against lethal challenge with African swine fever virus. J. Virol., 2014, 88(22): 13322-13332 ( ) DOI: 10.1128/JVI.01893-14
  • Argilaguet J.M., Pérez-Martín E., Nofrarías M., Gallardo C., Accensi F., Lacasta A., Mora M., Ballester M., Galindo-Cardiel I., López-Soria S., Escribano J.M., Reche P.A., Rodríguez F. DNA vaccination partially protects against African swine fever virus lethal challenge in the absence of antibodies. PLoS ONE, 2012, 7(9): e40942 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0040942
  • Середа А.Д., Казакова А.С., Иматдинов А.Р., Колбасов Д.В. Гуморальные и клеточно-опосредованные механизмы иммунитета при африканской чуме свиней. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(6): 709-718 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2015.6.709rus
  • Lacasta A., Monteagudo P.L., Jiménez-Marín Á., Accensi F., Ballester M., Argilaguet J., Galindo-Cardiel I., Segalés J., Salas M.L., Domínguez J., Moreno Á., Garrido J.J., Rodríguez F. Live attenuated African swine fever viruses as ideal tools to dissect the mechanisms involved in viral pathogenesis and immune protection. Vet. Res., 2015, 46: 135 ( ) DOI: 10.1186/s13567-015-0275-z
  • Takamatsu H.H., Denyer M.S., Lacasta A., Stirling C.M., Argilaguet J.M., Netherton C.L., Oura C.A., Martins C., Rodríguez F. Cellular immunity in ASFV responses. Virus Res., 2013, 173(1): 110-121 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2012.11.009
  • Kollnberger S.D., Gutierrez-Castañeda B., Foster-Cuevas M., Corteyn A., Parkhouses R.M.E. Identification of the principal serological immunodeterminants of African swine fever virus by screening a virus cDNA library with antibody. J. Gen. Virol., 2002, 83: 1331-1342 ( ) DOI: 10.1099/0022-1317-83-6-1331
  • Barderas M.G., Rodriguez F., Gomez-Puertas P., Aviles M., Beitia F., Alonso C., Escribano J.M. Antigenic and immunogenic properties of a chimera of two immunodominant African swine fever virus proteins. Arch. Virol., 2001, 146: 1681-1691 ( ) DOI: 10.1007/s007050170056
  • Neilan J.G., Zsak L., Lu Z., Burrage T.G., Kutish G.F., Rock D.L. Neutralizing antibodies to African swine fever virus proteins p30, p54, and p72 are not sufficient for antibody-mediated protection. Virology, 2004, 319: 337-342 ( ) DOI: 10.1016/j.virol.2003.11.011
  • Ruiz-Gonzalvo F., Rodríguez F., Escribano J.M. Functional and immunological properties of the baculovirus-expressed hemagglutinin of African swine fever virus. Virology, 1996, 218: 285-289 ( ) DOI: 10.1006/viro.1996.0193
  • Takamatsu H.H., Denyer M.S., Lacasta A., Stirling C.M., Argilaguet J.M., Netherton C.L., Oura C.A., Martins C., Rodríguez F. Cellular immunity in ASFV responses. Virus Res., 2013, 173(1): 110-121 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2012.11.009
  • Argilaguet J.M., Pérez-Martín E., López S., Goethe M., Escribano J.M., Giesow K., Keil G.M., Rodríguez F. BacMam immunization partially protects pigs against sublethal challenge with African swine fever virus. Antiviral Res., 2013, 98(1): 61-65 ( ) DOI: 10.1016/j.antiviral.2013.02.005
  • Иматдинов А.Р., Середа А.Д., Иматдинов И.Р., Казакова А.С., Дубровская О.А., Колбасов Д.В. Экспрессия в эукариотических клетках рекомбинантных генов, кодирующих фрагменты протективно значимых белков вируса африканской чумы свиней. Сельскохозяйственная биология, 2016, 51(6): 837-844 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2016.6.837rus
  • Gómez-Puertas P., Rodriguez F., Oviedo J.M., Brun A., Alonso C., Escribano J.M. The African swine fever virus proteins p54 and p30 are involved in two distinct steps of virus attachment and both contribute to the antibody-mediated protective immune response. Virology, 1998, 243: 461-471 ( ) DOI: 10.1006/viro.1998.9068
  • Rodriguez F., Alcaraz С., Yanez R.J., Rodriguez J.M., Alonso C., Rodriguez J.F., Escribano J.M. Characterization and molecular basis of heterogeneity of the African swine fever virus envelope protein p54. J. Virol., 1994, 68(11): 7244-7252.
  • Goatley L.C., Dixon L.K. Processing and Localization of the African swine fever virus CD2v transmembrane protein. J. Virol., 2011, 85(7): 3294-3305 ( ) DOI: 10.1128/jvi.01994-10
  • Malogolovkin A., Burmakina G., Titov I., Sereda А., Gogin А., Baryshnikova Е., Kolbasov D. Comparative analysis of African swine fever virus genotypes and serogroups. Emerg. Infect. Dis., 2015, 21(2): 312-315 ( ) DOI: 10.3201/eid2102.140649
  • Стрижакова О.М., Лыска В.М., Малоголовкин А.С., Новикова М.Б., Сидлик М.В., Ногина И.В., Шкаев А.Э., Балашова Е.А., Куриннов В.В., Васильев А.П. Валидация ИФА-набора для обнаружения антител к вирусу африканской чумы свиней в крови и селезенке домашних свиней и диких кабанов. Сельскохозяйственная биология, 2016, 51(6): 845-852 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2016.6.845rus
  • Immunoblotting OIE for serological diagnosis of African swine fever (SOP/CISA/ASF/IB/1/2008). Режим доступа: http://asf-referencelab.info/asf/images/files/SOPs/SOP-AFSIB12008.pdf. Без даты.
  • Рыжова Е.В., Белянин С.А., Колбасов Д.В., Балышев В.М., Куриннов В.В., Пронин В.В., Корнева Г.В. Патоморфологические изменения у домашних свиней при остром и подостром течении африканской чумы свиней. Российский ветеринарный журнал, 2012, 1: 10-14.
  • Jancovich J.K., Chapman D., Hansen D.T., Robida M.D., Loskutov A., Craciunescu F., Borovkov A., Kibler K., Goatley L., King K., Netherton C,L., Taylor G., Jacobs B., Sykes K., Dixon L.K. Immunization of pigs by DNA prime and recombinant vaccinia virus boost to identify and rank African swine fever virus immunogenic and protective proteins. J. Virol., 2018, 92(8): e02219-17 ( ) DOI: 10.1128/JVI.02219-17
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp