Изучение механизмов противомикробного действия соединения (+)-erogorgiane
Автор: Нестерова Л.Ю., Ткаченко А.Г., Писцова О.Н.
Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio
Рубрика: Микробиология
Статья в выпуске: 4, 2016 года.
Бесплатный доступ
Исследованы антибактериальная активность и возможные механизмы действия химически синтезированного соединения (+)-erogorgiane, аналога природного антибиотика, выделенного из морских кораллов Pseudopterogorgia elisabethae. Показано, что оно обладает бактерицидной активностью по отношению к Mycobacterium smegmatis как в логарифмической фазе роста культуры, так и в стационарной. С увеличением времени воздействия снижается концентрация, вызывающая полную гибель клеток в культуре. Эффект (+)-erogorgiane проявляется также по отношению к нерас-тущим клеткам M. smegmatis, которые являются более устойчивыми к действию антибиотиков ри-фампицина, изониазида и левофлоксацина, традиционно используемых для лечения туберкулеза. В то же время грамотрицательный микроорганизм Escherichia coli показал высокую устойчивость к данному препарату. Обнаружено концентрационно-зависимое подавление биопленкообразования М. smegmatis в присутствии (+)-erogorgiane. Ингибирующее действие оказывали как сублетальные, так и субингибиторные концентрации препарата, которые не оказывали влияние на рост культуры и не вызывали гибели клеток. С помощью атомно-силовой микроскопии установлено влияние (+)-erogorgiane на поверхностные структуры клетки: под действием сублетальных концентраций антибиотика увеличивается шероховатость клеточной поверхности. Получить мутантов, устойчивых к действию антибиотика высевом на твердую среду, содержащую препарат в высокой концентрации, не удалось.
Антибиотик, биопленки
Короткий адрес: https://sciup.org/147204794
IDR: 147204794
Список литературы Изучение механизмов противомикробного действия соединения (+)-erogorgiane
- Aguayo S., Bozec L. Mechanics of bacterial bells and initial iurface colonisation//Advances in Experimental Medicine and Biology. 2016. Vol. 915. P. 245-260
- Arai M., Niikawa H., Kobayashi M. Marine-derived fungal sesterterpenes, ophiobolins, inhibit biofilm formation of Mycobacterium species//Journal of Natural Medicines. 2013. Vol. 67, № 2. P. 271-275
- De Souza M. V.N. Marine natural products against tuberculosis//The Scientific World Journal. 2006. Vol. 21, № 6. P. 847-861
- Kern W.V., Oethinger M., Jellen-Ritter A.S., Levy S.B. Non-target gene mutations in the development of fluoroquinolone resistance in Escherichia coli//Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2000. Vol. 44, № 4. P. 814-820
- Leisner J.J., Jorgensen N.O., Middelboe M. Predation and selection for antibiotic resistance in natural environments//Evolutionary Applications Journal. 2016. Vol. 9, № 3. P. 427-434
- McMurry L.M., McDermott P.F., Levy S.B. Genetic evidence that InhA of Mycobacterium smegmatis is a target for triclosan//Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 1999. Vol. 43, № 3. P. 711-713
- Migliori G.B., Sotgiu G., Gandhi N.R. et al. Drug resistance beyond extensively drug-resistant tuberculosis: individual patient data meta-analysis//European Respiratory Journal. 2013. Vol. 42, № 1. P. 169-179
- Sharma I.M., Petchiappan A., Chatterji D. Quorum sensing and biofilm formation in mycobacteria: role of c-di-GMP and methods to study this second messenger//International Union of Biochemistry and Molecular Biology Life. 2014. Vol. 66, № 12. P. 823-834.
- Syal K., Maiti K., Naresh K. et al. Synthetic arabino-mannan glycolipids impede mycobacterial growth, sliding motility and biofilm structure//Glycoconju-gate Journal. 2016. № 4
- Telenti A., Honore N., Bernasconi C. et al. Genotypic assessment of isoniazid and rifampin resistance in Mycobacterium tuberculosis: a blind study at reference laboratory level//Journal of Clinical Microbiology. 1997. Vol. 35, № 3. P. 719-723
- World Health Organisation. Global Tuberculosis report 2015. France, 2015. 192 p