Изучение устойчивости к антибиотикам бактерий рода Bacillus методом серийных разведений

Автор: Донкова Н.В., Донков С.А., Кадетова М.Ю.

Журнал: Вестник Красноярского государственного аграрного университета @vestnik-kgau

Рубрика: Ветеринария и зоотехния

Статья в выпуске: 5, 2019 года.

Бесплатный доступ

Цель исследований - изучение устойчивости к антибиотикам бактерий рода Bacillus методом серийных разведений. Представлены результаты исследований по изучению чувствительности пробиотических микроорганизмов Bacillus subtilis, Bacillus cereus и Bacillus licheniformis к антибиотикам. Чувствительность микроорганизмов определяли к левометицину, тетрациклину и гентамицину. Активность антибиотика устанавливали по величине его минимальной подавляющей концентрации, вызвавшей полную ингибицию прорастания спор. В качестве питательной среды использовали стерильный отвар пшеничных отрубей. Готовили основной раствор антибиотика в концентрации 160,0 мкг/мл, а рабочие растворы - с 2-кратным уменьшениемконцентрации антибиотика в каждом последующем разведении. Установлено, что наибольшей устойчивостью к антибиотикам обладает Bacillus subtilis, а наименьшей - Bacillus licheniformis. Минимальная подавляющая концентрация левомицетина для всех исследованных видов микроорганизмов составила 20 мкг/мл, у тетрациклина она составила 40 мкг/мл, а у гентамицина - 80 мкг/мл...

Еще

Пробиотик, чувствительность пробиотических микроорганизмов, антибиотик

Короткий адрес: https://sciup.org/140243462

IDR: 140243462

Текст научной статьи Изучение устойчивости к антибиотикам бактерий рода Bacillus методом серийных разведений

Введение . Основным этиологическим фактором в возникновении желудочно-кишечных заболеваний у сельскохозяйственных животных является группа энтеропатогенных бактерий. К этой группе относятся такие микроорганизмы, как кишечная палочка, сальмонелла, синегнойная палочка, клебсиелла, шигелла, протей и другие. С целью подавления их роста применяют антибиотики, но при этом от антибиотиков в желудочно-кишечном тракте гибнут не только патогенные, но и полезные микроорганизмы, которые заселяют желудочно-кишечный тракт в норме и участвуют в процессах пищеварения. Поэтому нередко после применения антибиотиков у животных наблюдается дисбактериоз – расстройство пищеварения, связанное с гибелью в желудочно-кишечном тракте полезных микроорганизмов.

Для преодоления этой проблемы для лечения животных в последние годы одновременно с антибиотиками внутрь стали применять препараты, содержащие в своем составе полезные микроорганизмы. Эти микроорганизмы заселяют желудочно-кишечный тракт и тем самым восстанавливают его нормальную микрофлору и пищеварение. Такие микроорганизмы получили название «пробиотики» (pro – для, bios – жизнь). Кроме участия в пищеварительных процессах, пробиотики являются антагонистами по отношению к энтеропатогенным бактериям, чем обусловлен их лечебно-профилактический эффект. Совместное применение антибиотиков с пробиотиками позволяет наряду с уничтожением патогенных микроорганизмов сохранить микробиоценоз в кишечнике, не нарушая его функционирования. Поэтому одним из критериев отбора штаммов микроорганизмов с целью использования их в пробиотических препаратах является определение их устойчивости к антибиотикам.

Применяемые в настоящее время в ветеринарии пробиотические препараты содержат в своем составе живые микроорганизмы из семейства Lactobacillus или Bifidobacterium [1], но в последние годы в пробиотические препараты стали вводить спорообразующие микроорганизмы из рода Bacillus, такие как Bac. subtilis, Bac. cereus, Bac. licheniformis [2].

Особенностью пищеварения у жвачных животных является то, что поедаемый растительный корм накапливается в рубце, а вместе с кормом в рубец в большом количестве попадают микроорганизмы, которые становятся его постоянными обитателями. Стенка рубца не выделяет пищеварительных ферментов, ферменты продуцируют микроорганизмы рубца. Для жвачных животных особенно актуальны спорообразующие микроорганизмы из рода Bacillus . Споры в рубце прорастают и при этом они выделяют амилолитические и целлюлозолитические ферменты, которые расщепляют крахмал и целлюлозу растений до глюкозы.

Основное предназначение пробиотических микроорганизмов – это восстановление нормальной микрофлоры желудочно-кишечного тракта после перенесенного заболевания. В опытах на сельскохозяйственных животных и птице было установлено, что скармливание пробиотиков увеличивает у них молочную продуктивность и приросты живой массы [3–6]. В связи с этим для животноводства актуальным является вопрос о способах применения пробиотиков – либо совместно с кормовыми антибиотиками, либо в составе кормовых добавок как с лечебно-профилактической целью, так и с целью увеличения у них продуктивности.

На сегодняшний день активность антибиотиков в отношении бацилл, применяемых в пробиотических препаратах, изучена недостаточно, между тем как оценка чувствительности бацилл к антибиотикам позволяет получить необходимую информацию для обоснования рационального применения антибиотиков совместно с пробиотиками при сохранении жизнеспособности последних. Об эффективности совместного применения антибиотиков с пробиотиками сообщают авторы [7].

Цель исследований : изучение устойчивости к антибиотикам бактерий рода Bacillus методом серийных разведений.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи: 1) изучить устойчивость к антибиотикам микроорганизмов рода Bacillus; 2) определить минимальные подавляющие концентрации антибиотиков (МПК) к различным видам микроорганизмов рода Bacillus; 3) установить оптимальные сочетания антибиотиков с пробиотиками (in vitro) для их совместного эффективного использования.

Материал и методы исследований . Объектом исследований являлись споры микроорганизмов Bacillus subtilis , Bacillus cereus и Bacillus licheniformis . Микроорганизмы выделены и идентифицированы из предоставленного нами материала в ГосНИИ генетика (г. Москва). Микроорганизмы используются нами для производства кормовой патоки посредством гидролиза крахмала. Одновременно эти микроорганизмы, входящие в состав патоки, проявляют свойства пробиотиков [8].

Изучение чувствительности микроорганизмов к антибиотикам проводили методом серийных разведений. За основу были взяты методические указания [9]. Чувствительность микроорганизмов определяли к следующим антибиотикам – левомицетину, тетрациклину и гентамицину.

Активность антибиотика устанавливали по величине его минимальной подавляющей концентрации, вызвавшей полную ингибицию прорастания спор.

Метод серийных разведений осуществляли в пробирках объемом по 10 мл. В качестве питательной среды использовали стерильный отвар пшеничных отрубей. Готовили основной раствор антибиотика в концентрации 160,0 мкг/мл, из него готовили рабочие растворы с 2-кратным уменьшением концентрации антибиотика в каждом последующем разведении. В каждую пробирку вносили споры определенного микроорганизма в количестве 100 тыс. спор/мл. Для каждого микроорганизма готовили по 5 серий разведений одного из антибиотиков.

Заключение об устойчивости микроорганизмов к антибиотикам делали на основании подсчета разницы между количеством спор испытуемого микроорганизма, внесенных в начале эксперимента, и количеством проросших спор по окончании культивирования в присутствии заданной концентрации антибиотика. Подсчет микроорганизмов проводили согласно методике, описанной в [10], с использованием микроскопа МИКМЕД-5 и камеры Горяева. Параллельно ставили контрольную пробу со спорами, но без антибиотика. Пробирки инкубировали в термостате при t = 39 °С в течение одних суток.

Для получения статистически достоверных результатов все исследования проводили с 3-кратной повторяемостью.

Статистическую обработку полученных результатов проводили с использованием t-критерия Стьюдента в программном пакете MS Excel 2010. Различия считали достоверными при p < 0,05.

Результаты исследований . В контрольных пробирках без антибиотика наблюдали 100 %-е прорастание спор каждого изучаемого вида микроорганизма.

Из данных, представленных в таблице 1, следует, что прорастание спор всех исследуемых видов бацилл начиналось при содержании левомицетина в пробирке в концентрации, равной 10 мкг/мл.

Таблица 1

Содержание левомицетина в пробирке, мкг/мл

Количество проросших спор/мл

Bac. subtilis

Bac. cereus

Bac. licheniformis

80

-

-

-

40

-

-

-

20

-

-

-

10

50000±12,3

40000±9,1

25000±7,2

5

85000±16,7

70000±14,5

55000±11,8

Количество проросших спор бацилл в среде с левомицетином

На графике, представленном на рисунке 1, видно, что с увеличением в пробирке концентрации левомицетина количество проросших спор в среде уменьшалось, при содержании левомицетина в концентрации 20 мкг/мл споры не прорастали.

§■ 70

§ 60

X к a 50 о

40 о

С 30

? 20 о W 10

«

5            10           15           20

Кол-во левомицитина, мкг/мл

••"••■• Bac.subtilis

Рис. 1. Динамика прорастания спор бацилл при левомицетине

Из данных, представленных в таблице 2, рациклина в пробирке в концентрации, равной видно, что прорастание спор всех исследуемых 20 мкг/мл.

видов бацилл начиналось при содержании тет-

Количество проросших спор в среде с тетрациклином

Таблица 2

Содержание тетрациклина в пробирке, мкг/мл

Количество проросших спор/мл

Bac. subtilis

Bac. cereus

Bac. licheniformis

80

-

-

-

40

-

-

-

20

25000±11,5

15000±12,4

5000±8,7

10

60000±14,8

45000±13,8

25000±14,1

5

90000±15,7

80000±16,7

65000±15,9

На графике, представленном на рисунке 2, видно, что с увеличением в пробирке концентрации тетрациклина количество проросших спор в среде уменьшалось, при содержании тетрациклина в концентрации 40 мкг/мл споры не прорастали.

0х 80

§70

s 60

g 50

м 30

£20

•—•••• Bac.subtilis

Рис. 2. Динамика прорастания спор бацилл при тетрациклине

Из данных, представленных в таблице 3, видно, что прорастание спор всех исследуемых видов бацилл начиналось при содержании гентамицина в пробирке в концентрации, равной 40 мкг/мл.

На графике рисунка 3 видно, что с увеличением в пробирке концентрации гентамицина количество проросших спор в среде уменьшалось, при содержании левомицетина в концентрации 80 мкг/мл споры не прорастали.

Количество проросших спор бацилл в среде с гентамицином

Таблица 3

Содержание гентамицина в пробирке, мкг/мл

Количество проросших спор/мл

Bac. subtilis

Bac. cereus

Bac. licheniformis

80

-

-

-

40

40000±16,8

30000±14,7

10000±8,6

20

65000±18,4

50000±17,6

25000±12,4

10

85000±21,4

70000±19,4

50000±16,8

5

100000±22,5

90000±21,6

70000±20,5

X s a

И I

■■•■••■■ Bac.subtilis

Рис. 3. Динамика прорастания спор бацилл при гентамицине

Выводы . На основании результатов проведенных исследований по изучению устойчивости к антибиотикам пробиотических микроорганизмов можно заключить следующее: по устойчивости к антибиотикам микроорганизмы располагались в следующем убывающем порядке – Bac. subtilis , Bac. cereus , Bac. licheniformis .

Минимальная подавляющая концентрация левомицетина для всех исследованных видов микроорганизмов составила 20 мкг/мл, у тетрациклина – 40 мкг/мл, а у гентамицина – 80 мкг/мл. При этом наиболее устойчивым к изучаемым антибиотикам оказался микроорганизм Bacillus subtilis , его споры прорастали лучше, чем споры других видов бацилл при наличии в среде одного и того же антибиотика в одинаковых концентрациях. Хуже всего в присутствии антибиотиков прорастали споры микроорганизма Bacillus licheniformis .

Наибольшая устойчивость у всех испытуемых микроорганизмов оказалась к гентамицину, а наименьшая – к левомицетину.

Данные по устойчивости пробиотиков к антибиотикам необходимо учитывать при отборе штаммов микроорганизмов для применения их совместно с антибиотиками.

Для повышения эффективности пробиотического препарата, содержащего в своем составе споры микроорганизма Bacillus subtilis , его целесообразно применять совместно с гентамицином, так как при таком сочетании прорастает наибольшее количество спор этого пробиотического микроорганизма.

Наименьшая устойчивость ко всем антибиотикам была установлена у Bac. licheniformis , поэтому применять данный микроорганизм в качестве пробиотика следует после завершения ан-тибиотикотерапии.

Список литературы Изучение устойчивости к антибиотикам бактерий рода Bacillus методом серийных разведений

  • Смирнов В.В., Коваленко Н.К., Подгорский В.С. и др. Пробиотики на основе живых культур микроорганизмов // Микробиологический журнал. - 2002. - Т. 64, № 4. - С. 62-78.
  • Похиленко В.Д., Перелыгин В.В. Пробиотики на основе спорообразующих бактерий и их безопасность // Химическая и биологическая безопасность. - 2007. - № 2. - С. 32-33.
  • Андреева А.В., Кадырова Д.В. Влияние пробиотика «Споровит комплекс» на динамику роста и развития телят // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2010. - № 4. - С. 125-128.
  • Белик С.Н., Чистяков В.А., Крючкова В.В. и др. Эффективность использования пробиотического препарата на основе Bacillus subtilis при выращивании цыплят-бройлеров // Изв. Нижневолжского агроуниверситетского комплекса. - 2014. - № 4 (36). - С. 151-156.
  • Мурленков Н.В., Абрамкова Н.В. Эффективность применения биопрепаратов на основе бактерий рода Bacillus в технологии выращивания молочных телят // Вестн. аграр. науки. - 2018. - № 3 (72). - С. 92-100.
  • Смирнова Е.А. Технология производства пробиотика КД-5 и его использование в свиноводстве: автореф. дис. … канд. биол. наук. - М., 2009. -23 с.
  • Володченко В.Ф., Садуллоева Т.И. Оценка перспектив комплексного применения антибиотиков и пробиотиков при лечении инфекционных заболеваний // Российский иммунологический журнал. - 2017. - Т. 11 (20), № 2. - С. 269-270.
  • Донкова Н.В., Донков С.А. Антагонистическая активность амилолитических штаммов бактерии Bacillus subtilis // Вестн. КрасГАУ. - 2016. - № 7. - С. 173-179.
  • Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам: метод. указания / Федер. центр госсанэпиднадзора Минздрава России. - М., 2004. - 91 с.
  • ОФС.1.7.2.0008.15. Определение концентрации микробных клеток [Электрон. ресурс]. - URL: http://docs.cntd.ru/document/420339016 (дата обращения: 01.02.2019).
Еще
Статья научная