Эффективность применения пробиотика при выращивании утят

17. Evropejskaya konvenciya o zashchite po-zvonochnyh zhivotnyh, ispol’zuemyh dlya eksperi-mentov ili v inyh nauchnyh celyah (ETS № 123), Ru-kovodstvo po razmeshcheniyu i zabote o zhivotnyh, Statisticheskie tablicy i poyasnitel’nye zapisi (g. Strasburg, 18.03.1986) (s izm. ot 22.06.1998). – URL: (data obrashcheniya: 21.01.2019).

Организация полноценного, сбалансированного кормления является основой выращивания хорошо развитой высокопродуктивной птицы. Для производства экологически чистой продукции птица должна получать достаточное количество энергии и комплекс питательных веществ [1–3].

Известно, что нормальная микрофлора способствует улучшению пищеварения, обмена веществ, формированию резистентности, обеспечивает высокий иммунитет [4]. Представители нормофлоры (бифидо- и лактобактерии) составляют большую часть микроорганизмов в микробиоценозе кишечника птиц [5]. Так, бифидобактерии, адгезируясь на эпителии слизистой оболочки, блокируют рецепторы ко многим энтеробактериям, снижают возможность инфицирования птицы патогенами, повышают устойчивость к гельминтозам, кокцидиозу [6]. Лактобактерии активно продуцируют органические кислоты, которые препятствуют размножению патогенной микрофлоры [7–8]. Также исследованиями авторов доказано положительное влияние пробиотических добавок на продуктивные показатели птицы [9].

С учетом современных тенденций перспективности использования в технологическом процессе в птицеводстве пробиотиков мы поставили цель – изучить влияние пробиотика на динамику живой массы, конверсию корма и микрофлору кишечника в конце откорма уток.

Материалы и методы

Объектом исследования служили утки породы агидель с момента вывода до конца откормочного периода (50–55 сут).

Для проведения эксперимента было сформировано две группы утят суточного возраста. В рацион птиц опытной группы введен пробиотик «Олин» согласно инструкции 0,4 кг/т – в первые 15 сут и 1 кг/т – до конца откорма. Пробиотическая кормовая добавка «Олин» представляет сухую биомассу антагонистически активных штаммов Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135 с содержанием в 1 г препарата не менее 2×109 бацилл. Утят контрольной группы содержали на основном рационе со свободным доступом к воде.

В течение всего эксперимента наблюдали за клиническим состоянием (внешний вид, аппетит и подвижность) уток. По завершении откорма проведены бактериологические исследования различных биотопов пищеварительного тракта. Пробы для данного исследования отбирали после утреннего кормления не позднее 2 ч после диагностического убоя, проведенного согласно Европейской конвенции о защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в иных научных целях [10].

Содержимое каждого отдела пищеварительного тракта разводили физиологическим раствором в соотношении 1 : 10, готовили ряд последовательных десятикратных разведений от 10–1 до 10–10. Бактериологические исследования проводили, используя диагностически значимые разведения, на питательные среды. Количество лактобактерий определяли на лактоагаре, бифидобактерий – на бифидумсреде, энтеробактерий – на среде Эндо, энтерококков – на энтерококкагаре, стафилококков – на стафилококка-гаре, гемолитических форм микроорганизмов – на кровяном агаре, сальмонелл – на висмутсульфит агаре. После культивирования проводили количественный учет характерных колоний.

Результаты исследований

Наиболее многочисленный состав микрофлоры зарегистрирован в кишечном просвете. В тонком кишечнике выделены – Escherichia coli (3,1×103 КОЕ/г); Enterococcus faecalis (4×103 КОЕ/г); Staphylococcus epidermidis (3×103 КОЕ/г); Citrobacter diversus (2,3×102 КОЕ/г); Bifidobacterium spp. (1010 КОЕ/г); Lactobacillus spp. (108 КОЕ/г). В толстом кишечнике – Escherichia coli (4×107 КОЕ/г), Enterococcus faecalis (9×103 КОЕ/г), Enterococcus faecium (5×103 КОЕ/г), Staphylococcus epidermidis (4×103 КОЕ/г), Citro-bacter diversus (1,7×102 КОЕ/г), Enterobacter spp. (1,2×106 КОЕ/г), Bifidobacterium spp. (1010 КОЕ/г), Lactobacillus spp. (108КОЕ/г). Микрофлора слепых отростков представлена Escherichia coli – 3×107 КОЕ/г, Enterococcus faecalis – 6,2×103 КОЕ/г, Enterococcus fae-cium – 3×103 КОЕ/г, Staphylococcus epidermidis – 1,7×102 КОЕ/г, Citrobacter diversus – 1,3×102 КОЕ/г, Bifidobacterium spp. – 1010 КОЕ/г, Lactobacillus spp. – 108 КОЕ/г. В клоаке зарегистрированы Escherichia coli – 3,7×107 КОЕ/г, Enterococcus faecalis – 5,3×105 КОЕ/г, Enterococcus faecium – 2,7×103 КОЕ/г, Staphylococcus epidermidis – 1,3×103 КОЕ/г, Citro-bacter diversus – 7,6×102 КОЕ/г, Enterobacter spp. – 2×106 КОЕ/г, Bifidobacterium spp. – 1010 КОЕ/г, Lactobacillus spp. – 108 КОЕ/г (табл. 1).

Таблица 1

Микрофлора биотопов желудочно-кишечного тракта уток при введении в рацион пробиотического препарата «Олин», КОЕ/г

Состав микрофлоры	Ротовая полость	Пищевод	Железистый желудок	Мышечный желудок	Тонкий кишечник	Толстый кишечник	Слепые отростки	Клоака
Escherichia coli	2×105	1,2×104	–	–	3,1×103	4×107	3×107	3,7×107
Enterococcus faecalis	5×103	7×103	6×103	4×103	4×103	9×103	6,2×103	5,3×105
Enterococcus faecium	–	–	–	–	–	5×103	3×103	2,7×103
Staphylococcus epidermidis	6×105	2×103	2,1×102	7×102	3×103	4×103	1,7×102	1,3×103
Citrobacter diversus	3×105	–	–	–	2,3×102	1,7×102	1,3×102	7,6×102
Enterobacter spp.	–	–	–	–	–	1,2×106	–	2×106
Candida albicans	1,2×103	4×103	–	–	–	–	–	–
Bifidobacterium spp.	1010	1010	1010	1010	1010	1010	1010	1010
Lactobacillus spp.	108	108	108	108	108	108	108	108

Примечание . «–» отсутствие роста.

В тонком кишечнике птицы контрольной группы отмечено увеличение количества Escherichia coli, Staphylococcus epidermidis, Citrobacter diversus в 13,5 раз, в 7,7 раз и 1,6 раза соответственно в сравнении с показателями уток, в рацион которых был введен пробиотический препарат (табл. 2).

Таблица 2

Микрофлора желудочно-кишечного тракта уток (основной рацион), КОЕ/г

Состав микрофлоры	Ротовая полость	Пищевод	Железистый желудок	Мышечный желудок	Тонкий кишечник	Толстый кишечник	Слепые отростки	Клоака
Escherichia coli	3×105	1,2×105	–	–	4,2×104	1,2×107	2×105	2×106
Enterococcus faecalis	7×103	6×103	8×103	7×103	4×103	9×104	3,1×104	6×105
Enterococcus faecium	3×103	–	–	–	–	7×103	3×104	3,3×103
Staphylococcus epidermidis	3,2×106	3×103	3×102	9×102	2,3×104	3,7×103	2×104	7×103
Citrobacter diversus	2×106	–	2×10	–	3,6×102	2×103	2×103	4×103
Enterobacter spp	–	–	–	–	–	2,5×107	–	2×106
Candida albicans	7×103	5×103	–	–	–	–	1,5×104	2×105
Bifidobacteriu m spp.	1010	1010	1010	1010	1010	1010	1010	1010
Lactobacillus spp.	108	108	108	107	107	108	108	108

Примечание . «–» отсутствие роста.

В толстом кишечнике, слепых отростках и клоаке уток, находящихся на основном рационе, по сравнению с птицей опытной группы существенно снижено количество Escherichia coli – в 3,3 раза, 15 раз и 18,5 раз соответственно. Одновременно с этим в данных отделах наблюдается повышение количества таких культур микроорганизмов, как Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium, Staphylococcus epidermidis, Citrobacter diversus, Enterobacter spp. В толстом кишечнике выделены 9×104 КОЕ/г Enterococcus faecalis, 7×103 КОЕ/г Enterococcus faecium, 2×103 КОЕ/г Citrobacter diversus, 2,5×107 КОЕ/г Enterobacter spp. В слепых отростках и клоаке также выделяли Candida albicans (1,5×104 и 2×105 КОЕ/г соответственно).

Применение пробиотика с первых суток способствовало у утят более высоким показателям живой массы по сравнению с контролем (табл. 3).

Таблица 3

Динамика живой массы утят с применением пробиотика

Группа	Возраст и живая масса (г)			Контрольное взвешивание
	7 сут	14 сут	35 сут
Опыт	159,5 ± 4,25	513,6 ± 14,07	1934,4 ± 40,35	3007,1 ± 35,23
Контроль	158,2 ± 4,92	474,5 ± 10,09	1887,9 ± 46,08	2771,4 ± 55,48

Так, на протяжении эксперимента отмечали увеличение живой массы уток опытной группы, к 8 неделям она была выше контроля на 8,5%. На 1 кг прироста живой массы в контрольной группе затрачено 3,35 кг корма, а в опытной – 2,85 кг (на 15% меньше).

Заключение

Использование пробиотика «Олин» сопровождается формированием колонизационной резистентности кишечника, заселением желудочно-кишечного тракта утят нор-мофлорой с первых дней жизни, обеспечивающей профилактику кишечных инфекций. Наличие в составе пробиотика штаммов с сильными ферментативными свойствами (Bacillus subtilis ВКПМ 10172 и Bacillus licheniformis ВКПМ 10135) увеличивает биодоступность и положительно сказывается на конверсии корма. Отмечено выраженное повышение продуктивности уток с использование пробиотика.

N.S. Zolotova, V.I. Pleshakova, N.A. Leshchëva, A.R. Ostashenko Omsk State Agrarian University named after P.A. Stolypin, Omsk

Efficacy of Probiotics in Duck Farming