Экстракт проантоцианидов виноградной косточки в технологии получения живых кормов

Экстракт проантоцианидов виноградной косточки в технологии получения живых кормов

Автор: Зеленченкова А.А., Мамонова А.С., Шишанов Г.А., Липпо И.Е.

Журнал: Вестник Омского государственного аграрного университета @vestnik-omgau

Рубрика: Ветеринария и зоотехния

Статья в выпуске: 3 (55), 2024 года.

Бесплатный доступ

Обобщены современные фундаментальные и экспериментальные знания об эффективности, возможных механизмах и целесообразности применения экстракта растительного происхождения в качестве кормового компонента. Объектом исследования являлись цисты и науплии Артемии (Artemia salina) алтайской популяции. Цель исследования - изучить влияние экстракта проантоцианидов виноградных косточек (ЭПВК) на инкубационную активность и биоинкапсуляционные свойства науплиусов артемии. Задача эксперимента - исследовать ЭПВК в концентрации 7 и 14 мг/мл в качестве активатора и антиоксиданта. Инкубация цист проводилась стандартным методом в аппаратах «Вейса» без декапсуляции. В результате проведенных опытов установлено увеличение вылупления науплиусов с одновременным повышением антиоксидантного статуса. Процент выклева определяли через 24 ч и 36 ч после начала инкубации, подсчитывая свободноплавающие науплии в поле зрения микроскопа. Выход живых науплиусов артемии составил от 65 до 85%. Полученные образцы живых науплиусов артемии исследованы на суммарную концентрацию водорастворимых антиоксидантов (СКВА) как в нативном виде, так и после высушивания при 60 °C. Уровень антиоксидантов в нативных образцах составлял 0,575-0,661 мг/г, после высушивания - 3,08-3,64 мг/г. Результаты исследования расширяют знания о влиянии методов получения живого корма для аквакультуры путем добавления девяностопятипроцентного экстракта проантоцианидов виноградных косточек (Vitis vinifera L.) в инкубационный раствор. Это позволяет повысить эффективность инкубации и антиоксидантную активность свободно плавующих науплиев артемии, что может повысить питательную ценность стартовых кормов для личинок рыб.

Еще

Экстракт проантоцианидов виноградных косточек, науплиусы артемии, живые корма, антиоксиданты, осетровые рыбы

Короткий адрес: https://sciup.org/142242315

IDR: 142242315

Список литературы Экстракт проантоцианидов виноградной косточки в технологии получения живых кормов

  • The State of World Fisheries and Aquacul-ture 2022. Towards Blue Transformation. Rome: FAO, 2022.
  • Стратегия развития рыбхозяйственного комплекса Российской Федерации на период до 2030 года [Электронный ресурс] // Федеральное агентство по рыболовству: [сайт]. URL: https://fish.gov.ru/otraslevaya-deyatelnost/ekonomika-otrasli/ (дата обращения 15.07.2024).
  • Савкина Л., Броун Е. Отечественные корма для аквакультуры. [Электронный ресурс] // Ценовик: [сайт] [2024]. URL: https://www.tsenovik.ru/articles/obzory-i-prognozy /otechestvennye-korma-dlya-akvakultury/?ysclid= lx8lxa08ci733611408 (дата обращения 19.06.2024).
  • Волошин Г.В., Акимов Е.Б., Артемов Р.В., Гершунская В.В. Состояние и перспективы развития рынка комбикормов для индустриальной аква-культуры в Российской Федерации. Экономика, международное сотрудничество и нормативные правовые основы рыбохозяйственной деятельности // Труды ВНИРО. 2022. Т. 190. С. 163–169.
  • Портная Т.В., Другакова А.Д. Живые корма в стартовом кормлении молоди осетровых // Актуальные проблемы интенсивного развития животноводства. 2018. № 21-1. С. 180–186.
  • Чебанов М.С., Галич Е.В. Руководство по искусственному воспроизводству осетровых рыб // Технические доклады ФАО по рыбному хозяйству и аквакультуре. № 558. Анкара: ФАО. 2011. 297 с.
  • Azra M.N., Noor M.I.M., Burlakovs J. [et al.] Trends and New Developments in Artemia Re-search // Animals (Basel). 2022. № 12(18): 2321.
  • Sorgeloos P., Dhert P., Candreva P. Use of the brine shrimp, Artemia spp., in marine fish larvi-culture. Aquaculture. 2001. Vol. 200. P.147–159.
  • Wang Y., Zhang D., Zhang M. et al. Effects of ingested polystyrene microplastics on brine shrimp, Artemia parthenogenetica // Environ. Pollut. 2019. Vol. 244. P. 715–722.
  • Riisgård H.U., Jeune N., Pleissner D. [et al.] Adaptation of the brine shrimp Artemia salina (bran-chiopoda: Anostraca) to filter-feeding: Effects of body size and temperature on filtration and respiration rate // J. Crustac. Biol. 2015. Vol. 35. P. 650–658.
  • Henry J., Bai Y., Williams D. et al. Impact of test chamber design on spontaneous behavioral re-sponses of model crustacean zooplankton Artemia franciscana // Lab. Anim. 2022. Vol. 51 P. 81–88.
  • Aragão C., Conceição L.E., Dinis M.T., Fyhn H.-J. Amino acid pools of rotifers and Artemia under different conditions: Nutritional implications for fish larvae // Aquaculture. 2004. Vol. 234. P. 429–445.
  • Кряхова, Н.В., Ковачева Н.П., Глазунов А.А. Влияние пероксида водорода на выклев науплиев артемии Artemia sp. // Рыбное хозяйство. 2023. № 3. С. 81–87.
  • Dey C.J., Tan Q.J., O’Connor C.M. [et al.] Dominance network structure across reproductive contexts in the cooperatively breeding cichlid fish Neolamprologus pulcher // Curr. Zool. 2015. Vol. 61. P. 45–54.
  • Hire J. Effect of probiotic, Bacillus spp. enriched artemia on growth of gold fish, Carassius auratus (Linnaeus, 1758) larvae. // J. Exp. Zool. 2020. Vol. 23. P. 741–745.
  • Hafezieh, M., Kamarudin, M.S., Saad, C.R.B. et al. Effect of enriched Artemia urmiana on growth, survival and composition of larval Persian sturgeon // Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 2009. № 9. P. 201–207.
  • Azimirad M., Meshkini S., Ahmadifard N., Hoseinifar S.H. The effects of feeding with synbiotic (Pediococcus acidilactici and Fructooligosa charide) enriched adult Artemia on skin mucus immune re-sponses, stress resistance, intestinal microbiota and performance of angelfish (Pterophyllum scalare) // Fish Shellfish Immunol. 2016. Vol. 54. P. 516–522.
  • Результаты применения биоинкапсули-рованных науплий артемии в качестве стартового корма для личинки и молоди стерляди / А.С. Елизарова, Г.А. Шишанов, И.Е. Липпо [и др.] // Ветеринария и кормление. 2023. №5. С. 31–34
  • Prabakusuma A.S., Wardono B., Fahlevi M. [et al.] A bibliometric approach to understanding the recent development of self-sufficient fish feed produc-tion utilizing agri-food wastes and by-products towards sustainable aquaculture // Heliyon. 2023. № 9. e17573
  • European Platform for the Responsible Use of Medicines in Animals (EPRUMA) 2018 [Элек-тронный ресурс] // EPRUMA Best-Practice Frame-work for the Use of Antibiotics in Food-Producing Animals Reaching for the Next Level. 2018. URL: http://www.epruma.eu/ (дата обращения 11.06.2024)
  • Peng K., Chen B., Wang Y. [et al.] Con-densed tannins protect against aflatoxin B1-induced toxicity in Lateolabrax maculatus by restoring intesti-nal integrity and regulating bacterial microbiota // Aquaculture. 2022. Vol. 555 738255
  • Costa J.R., Xavier M., Amado I.R. [et al.] Polymeric nanoparticles as oral delivery systems for a grape pomace extract towards the improvement of biological activities // Mater. Sci. Eng. C. 2021. Vol. 119:111551.
  • Farha A.K., Yang Q.-Q., Kim G. et al. Tan-nins as an alternative to antibiotics // Foo Biosci. 2020. Vol. 38: 100751.
  • Lavens P., Sorgeloos P. Manual on the pro-duction and use of live food for aquaculture FAO // Tech. Pap. 1996, 361. P. 295
  • Fan X., Ma Y., inventor; Hospira. Method to hatch free swimming nauplii from artemia cysts. China patent. 101081015. 2007 Dec 05 URL: https://patents.google.com/patent/WO2008022569A1/en
  • Gabetta B., Fuzzati N., Griffini A. [et al.] Characterization of proanthocyanidins from grape seeds // Fitoterapia. 2000. Vol. 71. P. 162–175
  • Aysun C., Leylagul K., Ismail K. [et al.] Effect of grape seed extract on radiation-induced oxi-dative stress in rat liver // Turkey J. Gastroenterol. 2008. Vol. 19. P. 92–98
  • Van S.G. Introduction, biology and ecology of Artemia // In: Manual on the production and use of live food for aquaculture. Belgium: Laboratory of Aquaculture and Artemia Reference Center, Univer-sity of Ghent. 1996. P. 79–136.
  • Яшин А.Я. Методология определения антиоксидантной активности пищевых продуктов и биологических жидкостей // Аналитика. 2021. Т 11. № 5. С. 370–371.
  • Navarro J.C., Amat F., Sargent J. R. Lipid composition of cysts of the brine shrimp Artemia sp. from Spanish populations // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1992. Vol. 155. P. 123–131.
  • Yasuda A., Natsume M., Sasaki K. [et al.] Cacao procyanidins reduce plasma cholesterol and increase fecal steroid excretion in rats fed a high-cholesterol diet // Biofactors. 2008. Vol. 33. P. 211–223.
  • Tamura T., Inoue N., Ozawa M. [et al.] Pea-nut-skin polyphenols, procyanidin A1 and epicatechin-(4β→6)-epicatechin-(2β→O→7, 4β→8)-catechin, exert cholesterol micelle-degrading activity in vitro // Biosci Biotechnol Biochem. 2013. Vol. 77:1306–9.
  • Moreno D.A., Poulev A., Brasaemle D.L. et al. Inhibitory effects of grape seed extract on lipases // Nutrition. 2003. Vol. 19. P. 876–879.
  • Киселева Т.Ф. Технология сушки: учеб.-метод. комплекс // Кемеровский технологический инсти-тут пищевой промышленности. Кемерово, 2007. 117 с.
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp