Эндофитные микроорганизмы как промоутеры роста растений в культуре in vitro

Автор: Самарина Л.С., Маляровская В.И., Рогожина Е.В., Малюкова Л.С.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Агросистемы будущего

Статья в выпуске: 5 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Размножение растений in vitro представляет собой развитое направление современных биотехнологий, однако для многих культур, в первую очередь древесных, до сих пор нет эффективных протоколов микроразмножения. Низкий выход стерильных эксплантов на этапе введения в культуру, низкие коэффициенты размножения и укоренения микропобегов в пассажах - основные проблемы микроразмножения сортов многолетних культур. Введение растительных эксплантов в стерильную культуру оказывает стрессовое воздействие, так как сопряжено с повреждением тканей, их обработкой агрессивными стерилизующими веществами, антибиотиками и др. Это может стать причиной внезапного возникновения вирулентных эндофитов в процессе последующего пассирования. Ассоциированные с растением микроорганизмы до недавнего времени считались проблемой в микроразмножении, вызывающей контаминацию эксплантов in vitro. Однако в последние годы было доказано, что колонизация эндофитами часто играет важную роль в увеличении жизнестойкости растений как в условиях in vitro, так и при последующем культивировании in vivo. Положительные результаты отмечали при применении Beauveria bassiana (J. Akello с соавт., 2007), Piriformospora indica и других представителей семейства Sebacinales (P. Sharma с соавт., 2014), Fusarium oxysporum (A.S.Y. Ting с соавт., 2008), Ophistoma- подобных видов грибов (M. Mucciarelli с соавт., 2003), Phialocephala fortinii (M. Vohnik с соавт., 2003), Trichoderma harzianum и других видов рода Trichoderma (P. Franken с соавт., 2012). Из бактерий изучались Acetobacter diazotrophicus (C.O. Azlin с соавт., 2007), Achromobacter xylosoxidans (A. Benson с соавт., 2014), Azospirillum brasilense (E.E. Larraburu с соавт., 2015), Azotobacter chroococcum (E.E. Larraburu с соавт., 2007), Bacillus subtilis (M. Vestberg с соавт., 2004), B. megaterium (P. Trivedi с соавт., 2007), Burkholderia phytofirmans (E.A. Ait Barka с соавт., 2000), B. vietnamiensis (M. Govindarajan с соавт., 2006), Enterobacter sp. (M.S. Mirza с соавт., 2001), Klebsiella variicola (C.-Y. Wei с соавт., 2014), Microbacterium sp. (M. Quambusch с соавт., 2014), Pseudomonas fluorescens (J. Thomas с соавт., 2010) и P. putida (R. Lifshitz с соавт., 1987). При этом остается неясно, какой фактор служит триггером, вызывающим у эндофитов смену мутуализма на патогенез. Единственным способом контроля этого процесса пока что остается выбор оптимального времени пассирования, оптимальных условий культивирования и состава питательной среды. Таким образом, в культуре клеток и тканей растений можно сохранить мутуалистический симбиоз с выгодой для растения-хозяина и для эндофита. Исследования в этой области, проведенные для ряда древесных и травянистых культур, подтвердили высокую эффективность биотизации растительных культур in vitro для решения проблем размножения и укоренения. Для микроразмножения растений исследователи применяли широкий спектр микроорганизмов: арбускулярные микоризные грибы, эктомикоризные грибы, эрикоидные микоризные грибы, а также различные виды бактерий. Было показано, что бактериальные и грибные эндофиты могут стимулировать рост растений через индукцию системной устойчивости к патогенам, синтеза фитогормонов и улучшения транспорта воды и питательных веществ. При этом основными проблемами их широкого применения в микроразмножении растений остаются сложности классификации и получения чистой культуры микроорганизмов.

Еще

Микроразмножение, эндофиты, питательные среды, регуляторы роста растений, фитогормоны

Короткий адрес: https://sciup.org/142213852

IDR: 142213852   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.5.917rus

Список литературы Эндофитные микроорганизмы как промоутеры роста растений в культуре in vitro

  • Prakash J. Micropropagation of ornamental perennials: progress and problems. Acta Horticulturae (ISHS), 2009, 812: 289-294 ( ) DOI: 10.17660/ActaHortic.2009.812.39
  • Tailor J., Harrier L. Beneficial influences of arbuscular micorrhizal fungi on the micropropagation of woody and fruit trees. In: Micropropagation of woody trees and fruits. Forestry sciences. V. 75/S.M. Jain, K. Ishii (eds.). Springer, Dordrecht, 2003: 129-150 ( ) DOI: 10.1007/978-94-010-0125-0_5
  • Kloepper J.W., McInroy J.A., Hu C.-H. Association of plant damage with increased populations of deleterious endophytes following use of Benlate systemic fungicide. Proc. 5th Int. Symp. «Endophytes for plant protection: the state of the art» (Humboldt University, Berlin, 26-29 May, 2013)/C. Schneider, C. Leifert, F. Feldmann (eds.). Berlin-Dahlem, 2013: 56-69.
  • Cassels A.C. Doyle-Prestwich B. Detection and elimination of microbial endophytes and prevention of contamination in plant tissue culture. In: Plant tissue culture, development, and biotechnology. Boca Raton, 2011: 223-238 ( ) DOI: 10.1002/9780470054581.eib241
  • Дунаева С.Е., Оследкин Ю.С. Бактериальные микроорганизмы, ассоциированные с тканями растений в культуре in vitro: идентификация и возможная роль. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(1): 3-15 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2015.1.3rus
  • Коломиец Т.М., Маляровская В.И., Губаз С.Л. Создание и поддержание коллекции субтропических плодовых, цветочно-декоративных культур, редких и исчезающих видов растений западного Кавказа в культуре in vitro. Плодоводство и ягодоводство России, 2015, 43: 99-103.
  • Маляровская В.И. Особенности получения стерильной культуры камелии японской (Сamelia japonica l.). Субтропическое и декоративное садоводство, 2012, 47(2): 161-167.
  • Самарина Л.С. Оптимизация приемов микроразмножения и сохранения лимона in vitro. Канд. дис. Москва, 2013.
  • Friesen M.L., Porter S.S., Stark S.C., von Wetteberg E.J., Sachs J.L., Martinez-Romero E. Microbially mediated plant functional traits. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics, 2011, 42: 23-46 ( ) DOI: 10.1146/annurev-ecolsys-102710-145039
  • Bulgarelli D., Schlaeppi K., Spaeten S., Ver Loren van Themaat E., Schulze-Lefert P. Structure and functions of the bacterial microbiota of plants. Annu. Rev. Plant Biol., 2013, 64: 807-838 ( ) DOI: 10.1146/annurev-arplant-050312-120106
  • Jacobs S., Zechmann B., Molitor A., Trujillo M., Petutschnig E., Lipka V., Kogel K.-H., Schäfer P. Broad-spectrum suppression of innate immunity is required for colonization of Arabidopsis roots by the fungus Piriformospora indica. Plant Physiol., 2011, 156: 726-740 ( ) DOI: 10.1104/pp.111.176446
  • Partida-Martínez L.P., Heil M. The microbe-free plant: fact or artifact? Front. Plant Sci., 2011, 2: 100 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2011.00100
  • Проворов Н.А., Воробьев Н.И. Адаптивная и прогрессивная эволюция растительно-микробного симбиоза. Экологическая генетика, 2013, 11(1): 12-22.
  • Brinkmann N., Marheine M., Heine-Dobbernack E., Verbarg S., Frühling A. Spröer C., Mohr K.I., Schumacher H.M. Investigation of latent bacterial infections in callus cultures reveal new Paenibacillus species. In: Endophytes for plant protection: the state of the art. Proc. 5th Int. Symp. «Endophytes for plant protection: the state of the art» (Humboldt University, Berlin, 26-29 May, 2013)/C. Schneider, C. Leifert, F. Feldmann (eds.). Berlin-Dahlem, 2013: 10-11.
  • Коломиец Т.М., Маляровская В.И., Гвасалия М.В., Самарина Л.С., Соколов Р.Н. Микроразмножение in vitro субтропических, декоративных культур и эндемиков западного Кавказа: оригинальные и оптимизированные протоколы. Сельскохозяйственная биология, 2014, 3: 49-58 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2014.3.49rus
  • Qin S., Xing K., Jiang J.H., Xu L.H., Li W.J. Biodiversity, bioactive natural products and biotechnological potential of plant-associated endophytic actinobacteria. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2011, 89(3): 457-473 ( ) DOI: 10.1007/s00253-010-2923-6
  • Nowak J. Benefits of in vitro «biotization» of plant tissue cultures with microbial inoculants. In Vitro Cell. Dev. Biol. -Plant, 1998, 34: 122-130 ( ) DOI: 10.1007/BF02822776
  • Rai M.K. Current advances in mycorrhization in micropropagation. In Vitro Cell. Dev. Biol. -Plant, 2001, 37:158-167 ( ) DOI: 10.1079/IVP2000163
  • Kapoor R., Sharma D., Bhatnagar A.K. Arbuscular mycorrhizae in micropropagation systems and their potential applications. Science Horticulturae, 2008, 116: 227-239 ( ) DOI: 10.1016/j.scienta.2008.02.002
  • Jansa J., Vosatka M. In vitro and post vitro inoculation of micropropagated Rhododendrons with ericoid mycorrhizaln fungi. Appl. Soil Ecol., 2000, 15: 125-136 ( ) DOI: 10.1016/S0929-1393(00)00088-3
  • Akello J., Dubois T., Gold C.S., Coyne D., Nakavuma J., Paparu P. Beauveria bassiana (Balsamo) Vuillemin as an endophyte in tissue culture banana (Musa spp.). J. Invertebr. Pathol., 2007, 96: 34-42 ( ) DOI: 10.1016/j.jip.2007.02.004
  • Sharma P., Kharkwal A.C., Abdin M.Z., Varma A. Piriformospora indica improves micropropagation, growth and phytochemical content of Aloe vera L. plants. Symbiosis, 2014, 64: 11-23 ( ) DOI: 10.1007/s13199-014-0298-7
  • Ting A.S.Y., Meon S., Kadir J., Radu S., Singh G. Endophytic microorganisms as potential growth promoters of banana. BioControl, 2008, 53: 541-553 ( ) DOI: 10.1007/s10526-007-9093-1
  • Mucciarelli M., Scannerini S., Bertea C., Maffei M. In vitro and in vivo pepper-mint (Mentha piperita) growth promotion by nonmycorrhizal fungal colonization. New Phytologist, 2003, 158: 579-591 ( ) DOI: 10.1046/j.1469-8137.2003.00762.x
  • Vohnik M., Lukančič S., Bahor E., Regvar M., Vosatka M., Vodnik D. Inoculation of Rhododendron cv. Belle-Heller with two strains of Phialocephala fortinii in two different substrates. Folia Geobotanica, 2003, 38: 191-200 ( ) DOI: 10.1007/BF02803151
  • Franken P. The plant strengthening root endophyte Piriformospora indica: potential application and the biology behind. Appl. Microbiol. Biot., 2012, 96: 1455-1464 ( ) DOI: 10.1007/s00253-012-4506-1
  • Mayerhofer M.S., Kernaghan G., Harper K.A. The effects of fungal root endophytes on plant growth: a meta-analysis. Mycorrhiza, 2012, 23: 119-128 ( ) DOI: 10.1007/s00572-012-0456-9
  • Azlin C.O., Amir H.G., ChanLai K., Zamzuri I. Effect of plant growth-promoting rhizobacteria on root formation and growth of tissue cultured oil palm (Elaeis guineensis Jacq.). Biotechnology, 2007, 6: 549-554 ( ) DOI: 10.3923/biotech.2007.549.554
  • Benson A., Joe M.M., Karthikeyan B., Sa T., Rajasekaran C. Role of Achromobacter xylosoxidans AUM54 in micropropagation of endangered medicinal plant Naravelia zeylanica (L.) DC. J. Plant Growth Regul., 2014, 33: 202-213 ( ) DOI: 10.1007/s00344-013-9363-3
  • Larraburu E.E., Llorente B.E. Anatomical changes induced by Azospirillum brasilense in in vitro rooting of pink lapacho. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2015, 122: 175-184 ( ) DOI: 10.1007/s11240-015-0759-6
  • Larraburu E.E., Carletti S.M., Rodriguez Caceres E.A., Llorente B.E. Micropropagation of photinia employing rhizobacteria to promote root development. Plant Cell Rep., 2007, 26: 711-717 ( ) DOI: 10.1007/s00299-006-0279-2
  • Vestberg M., Kukkonen S., Saari K., Parikka P., Huttunen J., Tainio L., Devos N., Weekers F., Kevers C., Thonart P., Lemoine M.C., Cordier C., Alabouvette C., Gianinazzi S. Microbial inoculation for improving the growth and health of micropropagated strawberry. Appl. Soil Ecol., 2004, 27: 243-258 ( ) DOI: 10.1016/j.apsoil.2004.05.006
  • Trivedi P., Pandey A. Biological hardening of micropropagated Picrorhiza kurrooa Royel ex Benth., an endangered species of medical importance. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2007, 23: 877-878 ( ) DOI: 10.1007/s11274-006-9293-3
  • Ait Barka E.A., Belarbi A., Hachet C., Nowak J., Audran J.C. Enhancement of in vitro growth and resistance to gray mould of Vitis vinifera co-cultured with plant growth-promoting rhizobacteria. FEMS Microbiol. Lett., 2000, 186: 91-95 ( ) DOI: 10.1111/j.1574-6968.2000.tb09087
  • Govindarajan M., Balandreau J., Muthukumarasamy R., Revathi G., Lakshmina-Rasimhan C. Improved yield of micropropagated sugarcane following inoculation by endophytic Burkholderia vietnamiensis. Plant Soil, 2006, 280: 239-252 ( ) DOI: 10.1007/s11104-005-3223-2
  • Mirza M.S., Ahmad W., Latif F., Haurat J., Bally R., Normand P., Malik K.A. Isolation, partial characterization and the effect of plant growth-promoting bacteria (PGPB) on micropropagated sugarcane in vitro. Plant Soil, 2001, 237: 47-54 ( ) DOI: 10.1023/A:1013388619231
  • Wei C.-Y., Lin L., Luo L.-J., Xing Y.-X., Hu C.-J., Yang L.-T., Li Y.-R., An Q. Endophytic nitrogen-fixing Klebsiella variicola strain DX120E promotes sugarcane growth. Biol. Fertil. Soils, 2014, 50: 657-666 ( ) DOI: 10.1007/s00374-013-0878-3
  • Quambusch M., Pirttila A.M., Tejesvi M.V., Winkelmann T., Bartsch M. Endophytic bacteria in plant tissue culture: differences between easy-and difficult-to-propagate Prunus avium genotypes. Tree Physiology, 2014, 34(5): 524-533 ( ) DOI: 10.1093/treephys/tpu027
  • Thomas J., Ajay D., Raj Kumar R., Mandal A.K.A. Influence of beneficial microorganisms during in vivo acclimatization of in vitro-derived tea (Camellia sinensis) plants. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2010, 101: 365-370 ( ) DOI: 10.1007/s11240-010-9687-7
  • Lifshitz R., Kloepper J.W., Kozlowski M., Simonson C., Carlson J., Tipping E.M., Zaleska I. Growth promotion of canola (rapeseed) seedlings by a strain of Pseudomonas putida under gnotobiotic conditions. Can. J. Microbiol., 1987, 33: 390-395 ( ) DOI: 10.1139/m87-068
  • Ovando-Medina I., Adriano-Anaya L., Chávez-Aguilar A., Oliva-Llave A., Ayora-Talavera T., Dendooven L., Gutierrez-Miceli F., Salvador-Figueroa M. Ex vitro survival and early growth of Alpinia purpurata plantlets inoculated with Azotobacter and Azospirillum. Pakistan Journal of Biological Sciences, 2007, 10: 3454-3457 ( ) DOI: 10.3923/pjbs.2007.3454.3457
  • Nowak J., Shulaev V. Priming for transplant stress resistance in in vitro propagation. In Vitro Cell. Dev. Biol. -Plant, 2003, 39: 107-124 ( ) DOI: 10.1079/IVP2002403
  • Harish S., Kavino M., Kumar N., Saravanakumar D., Soorianathasun-daram K., Samiyappan R. Biohardening with plant growth promoting rhizosphere and endophytic bacteria induces systemic resistance against Banana bunchy top virus. Appl. Soil Ecol., 2008, 39: 187-200 ( ) DOI: 10.1016/j.apsoil.2007.12.006
  • Zabetakis I. Enhancement of flavour biosynthesis from strawberry (Fragaria ½ ananassa) callus cultures by Methylobacterium species. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 1997, 50: 179-183 ( ) DOI: 10.1023/A:1005968913237
  • Ortiz-Castro R., Contreras-Cornejo H., Macias-Rodriguez L., Lopez-Bucio J. The role of microbial signals in plant growth and development. Plant Signaling & Behavior, 2009, 4: 701-712 ( ) DOI: 10.4161/psb.4.8.9047
  • Compant D., Duffy B., Nowak J., Clément C., Barka E.A. Use of plant growth-promoting bacteria for biocontrol of plant diseases: principles, mechanisms of action, and future prospects. Appl. Environ. Microbiol., 2005, 71: 4951-4959 ( ) DOI: 10.1128/AEM.71.9.4951-4959.2005
  • Sziderics A.H., Rasche F., Trognitz F., Sessitsch A., Wilhelm E. Bacterial endophytes contribute to abiotic stress adaptation in pepper plants (Capsicum annuum L.). Can. J. Microbiol., 2007, 53: 1195-1202 ( ) DOI: 10.1139/W07-082
  • Lin L, Xu X.D. Indole-3-acetic acid production by endophytic Streptomyces sp. En-1 isolated from medicinal plants. Curr. Microbiol., 2013, 67(2): 209-217 ( ) DOI: 10.1007/s00284-013-0348-z
  • Igarashi Y. Screening of novel bioactive compounds from plant-associated actinomycetes. Actinomycetologica, 2004, 18: 63-66 ( ) DOI: 10.3209/saj.18_63
  • Rashad F.M., Fathy H.M., El-Zayat A.S., Elghonaimy A.M. Isolation and characterization of multifunctional Streptomyces species with antimicrobial, nematicidal and phytohormone activеiехties from marine environments in Egypt. Microbiol. Res., 2015, 175: 34-47 ( ) DOI: 10.1016/j.micres.2015.03.002
  • Sousa J., Olivares F.L. Plant growth promotion by streptomycetes: ecophysiology, mechanisms and applications. Chemical and Biological Technologies in Agriculture, 2016, 3: 24 ( ) DOI: 10.1186/s40538-016-0073-5
  • Normand L., Bärtschi H., Debaud J.C., Gay G. Rooting and acclimatization of micropropagated cuttings of Pinus pinaster and Pinus sylvestris are enhanced by the ectomycorrhizal fungus Hebeloma cylindrosporum. Physiologia Plantarum, 1996, 98: 759-766 ( ) DOI: 10.1111/j.1399-3054.1996.tb06682
  • Oliveira P., Barriga J., Cavaleiro C., Peixe A., Potes A.Z. Sustained in vitro root development obtained in Pinus pinea L. inoculated with ectomycorrhizal fungi. Forestry, 2003, 76(5): 579-587 ( ) DOI: 10.1093/forestry/76.5.579
  • Blaha D., Prigent-Combaret C., Mirza M.S., Moenne-Loccoz Y. Phylogeny of the 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid deaminase-encoding gene acdS in phytobeneficial and pathogenic Proteobacteria and relation with strain biogeography. FEMS Microbiol. Ecol., 2005, 56: 455-470 ( ) DOI: 10.1111/j.1574-6941.2006.00082.x
  • Zawadzka M., Trzciński P., Nowak K., Orlikowska T. The impact of three bacteria isolated from contaminated plant cultures on in vitro multiplication and rooting of microshoots of four ornamental plants. Journal of Horticultural Research, 2013, 21(2): 41-51 ( ) DOI: 10.2478/johr-2013-0020
  • Grotkass C., Hutter I., Feldmann F. Use of arbuscular mycorrhizal fungi to reduce weaning stress of micropropagated Baptisia tinctoria (L.) R. BR. Acta Hort. (ISHS), 2000, 530: 305-312.
  • Barka E.A., Gognies S., Nowak J., Audran J.-C., Belarbi A. Inhibitory effect of endophytic bacteria on Botrytis cinerea and its influence to promote the grapevine growth. Biol. Control, 2002, 24: 135-142 ( ) DOI: 10.1016/S1049-9644(02)00034-8
  • Khaosaad T., García-Garrido J.M., Steinkellner S., Vierheilig H. Take-all disease is systemically reduced in roots of mycorrhizal barley plants. Soil Biol. Biochem., 2007, 39: 727-734 ( ) DOI: 10.1016/j.soilbio.2006.09.014
  • Istifadah N., McGee P.A. Endophytic Chaetomium globosum reduces development of tan spot in wheat caused by Pyrenophora triticirepentis. Australasian Plant Pathology, 2006, 35: 411-418 ( ) DOI: 10.1071/AP06038
  • Koczwara K., Pańka D., Jeske M, Musiał N. Effect of Neotyphodium lolii on production of β-1,3-glucanases and chitinases in perennial ryegrass (Lolium perenne L.) infected by Fusarium poae. In: Endophytes for plant protection: the state of the art. Proc. 5th Int. Symp. «Endophytes for plant protection: the state of the art» (Humboldt University, Berlin, 26-29 May, 2013)/C. Schneider, C. Leifert, F. Feldmann (eds.). Berlin-Dahlem, 2013: 123-124.
  • Singh L.P., Gill S.S., Tuteja N. Unraveling the role of fungal symbionts in plant abiotic stress tolerance. Plant Signaling & Behavior, 2011, 6(2): 175-191 ( ) DOI: 10.4161/psb.6.2.14146
  • Mohammad M.J., Malkawi H.I., Shibli R. Effects of arbuscular mycorrhizal fungi and phosphorus fertilization on growth and nutrient uptake of barley grown on soils with different levels of salts. J. Plant Nutr., 2011, 26: 125-137 ( ) DOI: 10.1081/PLN-120016500
  • Evelin H., Kapoor R., Giri B. Arbuscular mycorrhizal fungi in alleviation of salt stress: a review. Annals of Botany, 2009, 104(7): 1263-1280 ( ) DOI: 10.1093/aob/mcp251
  • Hardoim P.R., van Overbeek L.S., Berg G., Pirttilä A.M., Compant S., Campisano A., Döring M., Sessitsch A. The hidden world within plants: ecological and evolutionary considerations for defining functioning of microbial endophytes. Microbiol. Mol. Biol. Rev., 2015, 79: 293-320 ( ) DOI: 10.1128/MMBR.00050-14
  • Abbamondi G.R., Tommonaro G., Weyens N., Thijs S., Sillen W., Gkorezis P., Iodice C., Rangel W.M., Nicolaus B., Vangronsveld J. Plant growth-promoting effects of rhizospheric and endophytic bacteria associated with different tomato cultivars andnew tomato hybrids. Chemical and Biological Technologies in Agriculture, 2016, 3(1): 1-10 ( ) DOI: 10.1186/s40538-015-0051-3
  • Bonaldi M., Chen X., Kunova A., Pizzatti C., Saracchi M., Cortesi P. Colonization of lettuce rhizosphere and roots by tagged Streptomyces. Front. Microbiol., 2015, 6: 25 (doi: doi: 10.3389/fmicb.2015.00025).
  • Francis I., Holsters M., Vereecke D. The Gram-positive side of plantmicrobe interactions. Environ. Microbiol., 2010, 12(1): 1-12 ( ) DOI: 10.1111/j.1462-2920.2009.01989.x
  • Nebbioso A., De Martino A., Eltlbany N., Smalla K., Piccolo A. Phytochemical profiling of tomato roots following treatments with different microbial inoculants as revealed by IT-TOF mass spectrometry. Chemical and Biological Technologies in Agriculture, 2016, 3(1): 1-8 ( ) DOI: 10.1186/s40538-016-0063-7
  • Sessitsch A.1., Hardoim P., Döring J., Weilharter A., Krause A., Woyke T., Mitter B., Hauberg-Lotte L., Friedrich F., Rahalkar M., Hurek T., Sarkar A., Bodrossy L., van Overbeek L., Brar D., van Elsas J.D., Reinhold-Hurek B. Functional characteristics of an endophyte community colonizing rice roots as revealed by metagenomic analysis. Mol. Plant-Microbe Interact., 2012, 25: 28-36 ( ) DOI: 10.1094/MPMI-08-11-0204
  • Bulgari D., Casati P., Crepaldi P., Daffonchio D., Quaglino F, Brusetti L., Bianco P.A. Restructuring of endophytic bacterial communities in grapevine yellows-diseased and recovered Vitis vinifera L. plants. Appl. Environ. Microbiol., 2011, 77: 5018-5022 ( ) DOI: 10.1128/AEM.00051-11
  • Campisano A., Antonielli L., Pancher M., Yousaf S., Pindo M., Pertot I. Bacterial endophytic communities in the grapevine depend on pest management. PLoS ONE, 2014: 9(11): e112763 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0112763
  • Klocke E., Weinzierl K., Abel S. Occurrence of endophytes during Pelargonium protoplast culture. In: Endophytes for plant protection: the state of the art. Proc. 5th Int. Symp. «Endophytes for plant protection: the state of the art» (Humboldt University, Berlin, 26-29 May, 2013)/C. Schneider, C. Leifert, F. Feldmann (eds.). Berlin-Dahlem, 2013: 94-99.
Еще
Статья обзорная