Каллусообразование в культуре пыльников момордики (Momordica charantia L.) в зависимости от стадии развития микроспор и состава питательной среды

Каллусообразование в культуре пыльников момордики (Momordica charantia L.) в зависимости от стадии развития микроспор и состава питательной среды

Автор: Нгуен М.Л., Та Ч.Х.Т., Хуен Т.Н.В.Т., Воронина А.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Культуры in vitro

Статья в выпуске: 1 т.54, 2019 года.

Бесплатный доступ

Культура пыльников - один из эффективных методов создания чистых линий за короткое время. С его помощью можно ускорить процесс получения F1 гибридов момордики ( Momordica charantia L., сем. Cucurbitaceae ) - экономически важной сельскохозяйственной культуры, которую возделывают в тропических и субтропических странах Южной Америки, Азии и Африки. Достаточно эффективная технология культивирования пыльников момордики пока что не разработана. В настоящем исследовании мы показали, что размер бутонов достоверно (p ≤ 0,05) влияет на способность формирования каллусов момордики. Выявлено, что частота каллусообразования, морфология каллусов и время начала их формирования в культуре пыльников in vitro существенно зависят от состава и концентрации регуляторов роста в питательной среде. Кроме того, впервые исследована динамика каллусообразования в процессе культирования пыльников момордики. Целью работы было изучение влияния стадии развития микроспор и состава питательных среды на способность каллусообразования в культуре пыльников in vitro...

Еще

Момордика, каллусообразование, удвоенные гаплоиды, культура пыльников

Короткий адрес: https://sciup.org/142220082

IDR: 142220082   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2019.1.140rus

Список литературы Каллусообразование в культуре пыльников момордики (Momordica charantia L.) в зависимости от стадии развития микроспор и состава питательной среды

  • Gupta M., Sharma S., Gautam A.K., Bhadauria R. Momordica charantia Linn. (Karala): nature’s silent healer. International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research, 2011, 11(1): 32-37.
  • Ahmad N., Hasan N., Ahmad Z., Zishan M., Zohrameena S. Momordica Charantia: For traditional uses and Pharmacological actions. Journal of Drug Delivery & Therapeutics, 2016, 6(2): 40-44 ( ) DOI: 10.22270/jddt.v6i2.1202
  • Le M.L., Trieu P.T., Huynh L.A.N. Shoot regeneration from cotyledonary sections of Momordica charantia L. in vitro. Science Journal of Can Tho University, 37(2): 47-54.
  • Reyes R.M. Current status of bitter gourd production and marketing in Asia and market potential of bitter gourd as a functional vegetable. International Bitter Gourd Conference. Hyderadad, India, 2014. Режим доступа: https://docplayer.net/36306338-Current-status-of-bitter-gourd-production-and-marketing-in-asia-and-market-potential-of-bitter-gourd-as-a-functional-vegetable.html. Дата обращения 28.02.2019.
  • Arafat S.Y., Nayeem M., Jahan S., Karim Z., Reza H.M., Hossain M.H., Shohel M., Alam M.A. Ellagic acid rich Momordica charantia fruit pulp supplementation prevented oxidative stress, fibrosis and inflammation in liver of alloxan induced diabetic rats. Orient. Pharm. Exp. Med., 2016, 16(4): 267-278 ( ) DOI: 10.1007/s13596-016-0242-x
  • Joseph B., Jini D. Antidiabetic effects of Momordica charantia (bitter melon) and its medicinal potency. Asian Pac. J. Trop. Dis., 2013, 3(2): 93-102 ( )
  • DOI: 10.1016/S2222-1808(13)60052-3
  • Poolperm S., Jiraungkoorskul W. An update review on the anthelmintic activity of bitter gourd, Momordica charantia. Phcog. Rev., 2017, 11(21): 31-34 ( )
  • DOI: 10.4103/phrev.phrev_52_16
  • Behera T.K., Behera S., Bharathi L.K., John K.J., Simon P.W., Staub J.E. Bitter gourd: botany, horticulture breeding. Horticultural Reviews, 2010, 37: 101-141 ( )
  • DOI: 10.1002/9780470543672.ch2
  • Bal U., Shariatpanahi M.E., Castro A.J., Emery D., Clemente C., Dehestani-Ardakani M., Mozaffari K., Touraev A. Pseudo-embryogenic structures in anther and isolated microspore cultures in vitro: a cautionary guide. Czech J. Genet. Plant Breed., 2012 48(2): 51-60 ( )
  • DOI: 10.17221/176/2011-CJGPB
  • Монахос С.Г., Нгуен М.Л., Безбожная А.В., Монахос Г.Ф. Связь плоидности с числом хлоропластов в замыкающих клетках устьиц у диплоидных и амфидиплоидных видов Brassica. Сельскохозяйственная биология, 2014, 5: 44-54 ( )
  • DOI: 10.15389/agrobiology.2014.5.44rus
  • Usman M., Bakhsh K., Fatima B., Zaman Q., Shah M.H. Exploring embryogenic competence in anthers of Bitter gourd (Momordica charantia L.) cultivar Faisalabad long. The Journal of Animal & Plant Sciences, 2015, 25(1): 181-188.
  • Kumar H.G.A., Murthy H.N., Paek K.Y. Embryogenesis and plant regeneration from anther cultures of Cucumis sativus L. Scientia Horticulturae, 2003, 98: 213-222 ( )
  • DOI: 10.1016/S0304-4238(03)00003-7
  • Ren J., Wu P., Trampe B., Tian X., Lubberstedt T., Chen S. Novel technologies in doubled haploid line development. Plant Biotechnol. J., 2017, 15(11): 1361-1370 ( )
  • DOI: 10.1111/pbi.12805
  • Forster B.P., Heberle-Bors E., Kasha K.J., Touraev A. The resurgence of haploids in higher plants. Trends Plant Sci., 2007, 12(8): 368-375 ( )
  • DOI: 10.1016/j.tplants.2007.06.007
  • Dwivedi S.L., Britt A.B., Tripathi L., Sharma S., Upadhyaya H.D., Ortiz R. Haploids: constraints and opportunities in plant breeding. Biotechnol. Adv., 2015, 33(6): 812-829 ( )
  • DOI: 10.1016/j.biotechadv.2015.07.001
  • Qiao G., Li H., Liu M., Jiang J., Yin Y., Zhang L., Zhuo R. Callus induction and plant regeneration from anthers of Dendrocalamus latiflorus Munro. In Vitro Cell. Dev. -Pl., 2013, 49(4): 375-385 ( )
  • DOI: 10.1007/s11627-013-9498-8
  • Пивоваров В.Ф., Бондарева Л.Л., Шмыкова Н.А., Шумилина Д.В., Минейкина А.И. Создание гибридов капусты белокочанной (Brassica oleracea L. convar. capitata var. alba DC) нового поколения с использованием линий удвоенных гаплоидов. Сельскохозяйственная биология, 2017, 52(1): 143-151 ( )
  • DOI: 10.15389/agrobiology.2017.1.143rus
  • Tang Y., Li H., Liu J., Liu B., Lio H.P. Callus formation from anther culture in Balsam Pear (Momordica charantia L.). American-Eurasian J. Agric. & Environ. Sci., 2009, 6(3): 308-312.
  • Tang Y., Liu J., Liu B., Li J., Li X.M., Li H.X. Effect of different treatment on anther callus formation and browning in Balsam pear (Momordica charantia L.). J. Agric. Sci. Technol., 2010, 4(6): 53-56.
  • Tang Y., Liu J., Liu B., Li X.M., Li J., Li H.X. Endogenous hormone concentrations in explant and calluses of Bitter Melon (Momordica charantia L.). Interciencia, 2010, 35(9): 680-683.
  • Пухальский В.А., Соловьев А.А., Бадаева Е.Д., Юрцев В.Н. Практикум по цитологии и цитогенетике растений. М., 2007.
  • Blackmore S., Wortley A.H., Skvarla J.J., Rowley J.R. Pollen wall development in flowering plants. New Phytol., 2017, 174(3): 483-498 ( )
  • DOI: 10.1111/j.1469-8137.2007.02060.x
  • Dunwell M.J. Haploids in flowering plant: origins and exploitation. Plant Biotechnol. J., 2010, 8: 377-424 ( )
  • DOI: 10.1111/j.1467-7652.2009.00498.x
  • Germana M.A. Anther culture for haploid and doubled haploid production. Plant Cell Tiss. Org., 2011, 104(3): 283-300 ( )
  • DOI: 10.1007/s11240-010-9852-z
  • Adhikari P.B., Kang W.H. Association of floral bud and anther size with microspore developmental stage in Campari tomato. Wonye kwahak kisulchi = Korean journal of horticultural science and technology, 2017, 35(5): 608-617 (doi 10.12972/kjhst.20170065)
  • DOI: :10.12972/kjhst.20170065
  • Zhang C., Tsukuni T., Ikeda M., Sato M., Okada H., Ohashi Y., Matsuno H., Yamamoto T., Wada M., Yoshikawa N., Matsumoto S., Li J., Mimida N., Watanabe M., Suzuki A., Komori S. Effects of the microspore development stage and cold pre-treatment of flower buds on embryo induction in apple (Malus ½ domestica Borkh.) anther culture. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science, 2013, 82(2): 114-124 ( )
  • DOI: 10.2503/jjshs1.82.114
  • Ibrahim A.M., Kayat F.B., Hussin Z.E.S.M., Susanto D., Ariffulah M. Determination of suitable microspore stage and callus induction from anthers of kenaf (Hibiscus cannabinus L.). The Scientifc World Journal, 2014, 2014: Article ID 284342 ( )
  • DOI: 10.1155/2014/284342
  • Shmykova N.A., Shumilina D.V., Suprunova T.P. Doubled haploid production in Brassica L. species. Russian Journal of Genetics: Applied Research, 2016, 6(1): 68-77 ( )
  • DOI: 10.1134/S2079059716010123
  • Gałązka J., Niemirowicz-Szczytt K. Review of research in haploid production in cucumber and other curcubits. Folia Horticulturae, 2013, 25(1): 67-78 ( )
  • DOI: 10.2478/fhort-2013-0008
  • Kumar H.G.A., Murthy H.N. Effect of sugars and amino acids on androgenesis of Cucumis sativus. Plant Cell Tiss. Org., 2004, 78(3): 201-208 ( )
  • DOI: 10.1023/B:TICU.0000025637.56693.68
  • Song H., Lou Q., Luo X., Wolukau J.N., Diao W., Qian C., Chen J. Regeneration of doubled haploid plants by androgenesis of cucumber (Cucumis sativus L.). Plant Cell Tiss. Org., 2007, 90: 245-254 ( )
  • DOI: 10.1007/s11240-007-9263-y
  • Assani A., Bakry F., Kerbellec F., Haicour R., Wenzel G., Foroughi-Wehr B. Production of haploids from anther culture of banana Plant Cell Rep., 2003, 21: 511-516 ( )
  • DOI: 10.1007/s00299-002-0557-6
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp