Каннабиноидергическая регуляция функционального состояния сердца (часть I)

Автор: Крылатов А.В., Серебров В.Ю., Ваизова О.Е., Дьякова Е.Ю.

Журнал: Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины @cardiotomsk

Рубрика: Обзоры и лекции

Статья в выпуске: 3 т.32, 2017 года.

Бесплатный доступ

Установлено, что у наркотизированных животных каннабиноиды вызывают продолжительную гипотензию и брадикардию, которые являются следствием стимуляции СВ1-рецепторов. Эндогенные каннабиноиды не участвуют в регуляции частоты сердечных сокращений и артериального давления у интактных животных. Исследования, выполненные на больных ишемической болезнью сердца, показали, что марихуана может провоцировать приступ стенокардии. Установлено, что каннабиноиды вызывают продолжительную гипотензию и брадикардию, которым могут предшествовать транзиторная тахикардия и гипертензия, связанные с активацией ваниллоидных TRPV1 ре-цепторов. Продолжительная гипотензия - результат прямого действия каннабиноидов на артерии.

Еще

Эндогенные каннабиноиды, сердце

Короткий адрес: https://sciup.org/149125173

IDR: 149125173   |   DOI: 10.29001/2073-8552-2017-32-3-7-13

Текст научной статьи Каннабиноидергическая регуляция функционального состояния сердца (часть I)

Эндогенная каннабиноидная система

В 1965 г. два израильских фармаколога выделили действующее начало конопли Cannabis sativa — Δ 9-тетрагидроканнабинол ( Δ 9-ТГК) [1]. Прошло 25 лет, прежде чем был открыт центральный каннабиноидный рецептор (СВ1) и его структура была идентифицирована, а сам рецептор был клонирован [2]. Рецептор CB1 сопряжен с Gi/o-белками и широко представлен в головном мозге [2, 3]. Указанный рецептор обнаружен в миокарде взрослых крыс [4, 5] и мышей [6]. В 1993 г. был идентифицирован и клонирован периферический каннабиноидный рецептор (СВ2) [7]. Названный рецептор также сопряжен с Gi/o-белками и экспрессируется иммуноци-тами в селезенке [8–10]. Этот рецептор также был найден в неонатальных кардиомиоцитах крыс [11] и в левом желудочке (ЛЖ) у взрослых мышей [6]. Активация CB1-и CB2-рецепторов способствует ингибированию адени-латциклазы, потенциал-зависимых Са2+-каналов и обеспечивает стимуляцию митоген-активируемой протеин-киназы и фосфолипазы С [3, 8]. Установлено, что у человека СВ1- и СВ2-рецепторы экспрессируются в ткани ЛЖ сердца примерно в равном количестве [12].

В 1999 г. в некоторых ядрах головного мозга человека был обнаружен орфановый G-белок-сопряженный рецептор, состоящий из 319 аминокислот [13]. Этот рецептор был назван GPR55. Позже было установлено, что GPR55 является рецептором каннабиноидов и экспрессируется в стволе головного мозга, лобной коре головного мозга, стриатуме, гипоталамусе, мозжечке и гиппокампе [14]. Позже GPR55 был обнаружен в периферических органах, таких как надпочечники, селезенка, тощая и подвздошная кишка. Следовые количества мРНК GPR55 были найдены в других органах, в сердце GPR55 не обнаружен [14]. Рецептор GPR55 отличается от других СВ-рецепторов сродством к CB-лигандам. Он обладает высоким сродством к CP55940, анандамиду, Δ 9-ТГК, пальмитоилэтаноламиду и HU-210, но имеет низкую аффинность к антагонисту СВ1-рецепторов SR141716 и не взаимодействует с CB1-, CB2-агонистом WIN55212-2 [14]. Рецептор GPR55 сопряжен с G α 13-белком и не взаимодействует с Gi- и Gq-белками [14].

В 1992 г. W.A. Devane и соавт. открыли первый эндогенный каннабиноид N-arachidonoylethanolamine (анандамид) [15]. Группа профессора R. Mechoulam обнаружила, что 2-арахидоноилглицерол (2-АГ) также является эндогенным каннабиноидом [16], и в 2001 г. эта группа нашла эндоканнабиноид 2-арахидонилглицерил эфир (ноладин-эфир) [17]. Другой эндоканнабиноид, олеамид, был идентифицирован в 2004 г. [18]. Затем последовало открытие N-арахидоноил-L-серина [19] и RVD-гемопрессина [20]. Помимо них следует упомянуть дигомо-γ-линоилэтаноламид, виродгамин, докозагекса-еноилэтаноламид, эйкозапентаеноилэтаноламид, доко-затетраеноилэтаноламид, N-архидоноилдопамин, паль-митоилэтаноламид, N-олеилдопамин [21]. Эндогенные каннабиноиды идентифицированы в миокарде [22–24]. По всей видимости, они синтезируются in situ. Источ- ник циркулирующих в крови каннабиноидов неизвестен. При эндотоксическом шоке таким источником являются тромбоциты и макрофаги [25]. Возможно, что циркулирующие в крови эндоканнабиноиды оказывают влияние на функциональное состояние сердца. Каннабиноиды относятся к аутокоидам, т.е. они действуют на те клетки, которые их синтезируют (аутокринная регуляция), или на соседние клетки (паракринная регуляция) [26].

Большинство из перечисленных эндогенных каннабиноидов взаимодействуют с СВ-рецепторами в на-номолярном диапазоне [21]. Они, видимо, являются физиологическими регуляторами СВ-рецепторов. Оле-амид, N-олеилдопамин, пальмитоилэтаноламид взаимодействуют с СВ1- и СВ2-рецепторами в микромолярном диапазоне [21], поэтому представляется маловероятным, чтобы они регулировали состояние каннабиноидных рецепторов в физиологических условиях. Некоторые исследователи по этой причине называют их каннабино-ид-подобными соединениями [27]. Вместе с тем, как мы отмечали выше, пальмитоилэтаноламид проявляет высокое сродство к GPR55-рецептору. Большинство каннабиноидов взаимодействуют с СВ1- и СВ2-рецепторами, исключением является ноладин-эфир, который проявляет высокое сродство только к СВ1-рецептору, но не к СВ2-рецептору [27]. Ряд эндогенных каннабиноидов проявляют высокое сродство к GPR55-рецептору [21]; так, EC50 (endogenous cannabinoid 50) для анандамида, 2-АГ, ноладин-эфира и виродгамина соответствует 18, 3, 10 и 12 нМ [21]. Некоторые эндоканнабиноиды (анандамид, N-архидоноилдопамин) проявляют высокое сродство к ваниллоидным рецепторам (transient receptor potential vanilloid-1, TRPV1), поэтому их называют эндованил-лоидами [27]. Другие эндоканнабиноиды (анандамид, N-архидоноилдопамин, пальмитоилэтаноламид) взаимодействуют с peroxisome proliferator-activated receptor- α и - γ (PPAR- α , PPAR- γ ) [28]. Следовательно, кардиоваскулярные эффекты эндоканнабиноидов могут быть обусловлены стимуляцией TRPV1, PPAR- α , PPAR- γ .

Неотъемлемыми звеньями эндогенной каннабиноидной системы являются: ферменты, которые синтезируют и гидролизуют каннабиноиды; белки, осуществляющие их обратный захват [27]. В синтезе каннабиноидов участвуют несколько ферментов, для многих каннабиноидов существует несколько альтернативных путей синтеза [27]. Анализ путей синтеза каннабиноидов выходит за рамки данной статьи. Гидролиз большинства каннабиноидов осуществляет фермент fatty acid amide hydrolase (FAAH), исключение составляет 2-АГ, который гидролизуется моноацилглицероллипазой [27]. Белки-переносчики, осуществляющие обратный захват каннабиноидов, пока не идентифицированы. Их наличие в организме подтверждается существованием целой группы «фармакологических инструментов», которые нарушают обратный захват каннабиноидов [27]. Предполагается, что таким переносчиком является fatty acid binding protein 5 (FABP-5) [27].

Все исследования кардиоваскулярных эффектов каннабиноидов можно условно разделить на два этапа:

  • (1 ) до появления селективных антагонистов СВ-рецепторов (70-е и 80-е гг. ХХ в.); (2) после появления селективных антагонистов СВ-рецепторов в 90-е гг. ХХ в. Именно в таком хронологическом порядке будет проводиться анализ данных литературы. Кроме того, будут рассмотрены результаты экспериментов на «нокаутированных» животных с делецией генов, кодирующих СВ-рецепторы. Будут проанализированы данные экспериментов с использованием препаратов, повышающих уровень эндогенных каннабиноидов.

Кардиоваскулярные эффекты Δ9-тетрагидроканнабинола

В 1968 г. в ходе исследования, выполненного на добровольцах, было показано, что внутривенное введение агониста СВ1- и СВ2-рецепторов А9-ТГК вызывает тахикардию [28]. Способность А9-ТГК вызывать тахикардию у человека была подтверждена другими исследователями [29, 30]. В экспериментах на ненаркотизированных собаках было показано, что внутривенное введение А9-ТГК индуцирует умеренную брадикардию, которая при увеличении дозы каннабиноида сменяется выраженной тахикардией [31]. У наркотизированных собак внутривенное введение А9-ТГК способствует снижению сердечного выброса (минутный объем) [32]. Способность А9-ТГК индуцировать тахикардию при внутривенном введении здоровым добровольцам была подтверждена M. Perez-Reyes и соавт. [33, 34]. Между тем у наркотизированных пентобарбиталом собак внутривенное введение А9-ТГК способствовало снижению частоты сердечных сокращений (ЧСС), сердечного выброса, силы сокращений правого желудочка [35]. Перечисленные эффекты носили дозозависимый характер. Способность А9-ТГК индуцировать тахикардию у человека была подтверждена в более позднем исследовании [36]. Таким образом, у ненаркотизированных собак и бодрствующих добровольцев А9-ТГК вызывал тахикардию, а у наркотизированных собак — брадикардию. Однако, согласно данным турецких физиологов, А9-ТГК при подкожном введении ненаркотизированным крысам вызывает брадикардию [37]. По данным M.D. Adams и соавт. [38], у наркотизированных крыс А9-ТГК при внутривенном введении вызывает брадикардию. Результаты исследований B. Hine и соавт. [39] указывают на то, что каннабиноид А8-ТГК (А8-тетрагидроканнабинол, содержащийся в конопле) вызывает снижение ЧСС у ненаркотизированных крыс. Согласно данным E. Friedman и соавт. [44], после внутривенного введения А9-ТГК бодрствующим и наркотизированным собакам отмечается снижение ЧСС. Снижение ЧСС после внутривенного введения названного каннабиноида наркотизированным собакам отмечали и другие исследователи [41]. В 1980 г. P. Stark и P.B. Dews [42] опубликовали результаты своих экспериментов на ненаркотизирован-ных кроликах и макаках-резусах. Внутривенное введение А8-ТГК вызывало снижение ЧСС у кроликов, не влияло на ЧСС у макак, но снижало у них артериальное давление (АД). По данным H. Kawasaki и соавт. [43], у свободно подвижных крыс А9-ТГК при внутривенном введении вызывал брадикардию. Эксперименты по хроническому введению морфина и А9-ТГК показали, что к анальгетическому и брадикардическому действию обоих препаратов у крыс формируется перекрестная толерантность [40]. Поскольку морфин не взаимодействует с СВ-рецепторами, а А9-ТГК не взаимодействует с опиоидными рецепторами, можно предположить, что морфин и А9-ТГК взаимодействуют на уровне внутриклеточных сигнальных путей или же А9-ТГК является либератором эндогенных опиоидов, а морфин либератором эндогенных каннабиноидов. Нельзя исключить взаимную трансактивацию опиоидных и каннабиноидных рецепторов [45]. Названная гипотеза нуждается в экспериментальной проверке.

Выше речь шла главным образом о том, как А 9 -ТГК влияет на ЧСС. I. Cavero и соавт. [46] решили исследовать, как влияет названный каннабиноид на насосную функцию сердца у наркотизированных пентобарбиталом собак в условиях постоянного сердечного ритма, который обеспечивали с помощью электростимуляции предсердий. Оказалось, что в этих условиях внутривенное введение А 9-ТГК способствует уменьшению сердечного выброса, ударного объема, давления, развиваемого ЛЖ, скорости сокращения ЛЖ [46]. Одновременно авторы зафиксировали уменьшение венозного возврата, как они полагают, за счет депонирования крови в селезенке. Снижение сердечного выброса, увеличение сопротивления и давления в легочных артериях после внутривенного введения А 9-ТГК наркотизированным собакам отмечали B.S. Jandhyala и A.T. Hamed [41].

В вышеперечисленных исследованиях участвовали здоровые добровольцы, что не позволяет судить о том, как влияет А 9-ТГК на функциональное состояние сердца у пациентов с сердечно-сосудистыми заболеваниями. В какой-то мере ответить на этот вопрос может исследование, выполненное в США в 1974 г. [47]. На 10 добровольцах, больных ишемической болезнью сердца (ИБС), изучали эффект курения марихуаны и плацебо на толерантность к физическим нагрузкам. Использовали велоэргометр при постоянной нагрузке. Критерием прекращения эксперимента была депрессия сегмента ST или появление загрудинных болей. Об аритмиях авторы ничего не сообщают. Время нагрузки в контроле составляло 244±16 с, в группе плацебо — 220±14 с, в группе марихуаны — 129±13 с (p<0,001). Величина депрессии сегмента ST была идентичной во всех группах. Кроме того, без физической нагрузки марихуана вызывала достоверное увеличение ЧСС на 30% — с 70 до 100 уд./мин (p<0,001), систолическое АД увеличивалось со 119 до 129 мм рт. ст. (p<0,001), диастолическое АД с 81 до 87 мм рт. ст. (p<0,001), произведение систолического АД х ЧСС/1000 — с 8,578 до 2,978 (p<0,001). Авторы полагают [47], что каннабиноиды увеличивают потребность миокарда в кислороде за счет повышения ЧСС и частично за счет увеличения АД, что в конечном итоге приводит к снижению толерантности к физической нагрузке у пациентов с ИБС.

Таким образом, представленные данные свидетельствуют, что А9-ТГК вызывает тахикардию у человека и у ненаркотизированных собак. У наркотизированных собак Δ9-ТГК способствует появлению брадикардии. У наркотизированных и бодрствующих крыс названный каннабиноид способствует снижению ЧСС, брадикардия отмечается и у ненаркотизированных кроликов. Почему реакция сердечно-сосудистой системы на Δ9-ТГК у различных видов существенно разнится, неизвестно. Кроме того, эксперименты in vivo свидетельствуют, что Δ9-ТГК оказывает отрицательный инотропный эффект. Исследования, выполненные на больных ИБС, показали, что марихуана может провоцировать приступ стенокардии. Хотя ни в одной из перечисленных выше работ авторы не использовали антагонисты СВ-рецепторов, есть основания полагать, что эти эффекты связаны с активацией СВ-рецепторов, поскольку нет данных in vivo экспериментов, которые говорили бы о том, что Δ9-ТГК может активировать рецепторы, отличные от СВ-рецепторов.

Кардиоваскулярные эффекты каннабиноидов, отличных от Δ9-тетрагидроканнабинола

Девяностые годы прошлого столетия характеризовались синтезом агонистов, антагонистов СВ-рецепторов и открытием эндогенных каннабиноидов. Однако, несмотря на эти открытия, количество публикаций, посвященных кардиоваскулярным эффектам каннабиноидов, отличных от Δ9-ТГК, сравнительно невелико. У ненаркотизированных макак-резусов было отмечено снижение ЧСС после внутривенного введения Δ9-ТГК и каннабиноида WIN55212, селективный СВ1-антагонист SR141716 устранял эту брадикардию [48]. Инъекция одного SR141716 не влияла на сердечный ритм. В 1996 г. были опубликованы результаты экспериментов с каннабиноидом (-)-11-OH-Δ8-tetrahydrocannabinol-dimethylheptyl (HU-210) [49]. Этот препарат по сродству к СВ1- и СВ2-рецепторам в десятки раз превосходит эндогенные каннабиноиды и в 500 раз превосходит Δ9-ТГК [50]. Выяснилось, что HU-210 вызывает брадикардию и гипотензию у наркотизированных пентобарбиталом и ненаркоти-зированных крыс [49]. Авторы полагают, что в действии HU-210 на сердечно-сосудистую систему следует различать две фазы: раннюю (1 ч) и позднюю (через 1 ч после инъекции). В 1997 г. K.D. Lake и соавт. [51] в опытах на крысах, наркотизированных уретаном, установили, что каннабиноиды (HU-210, Δ9-ТГК, анандамид) вызывают гипотензию и брадикардию. По способности снижать ЧСС и АД каннабиноиды распределяются следующим образом: HU-210 > Δ9-ТГК > анандамид [51]. Уменьшение ЧСС было отмечено после применения агониста СВ1-и СВ2-рецепторов WIN55212 у макак-резусов [48]. Кардиоваскулярные эффекты каннабиноидов не проявлялись в условиях блокады СВ1-рецепторов селективным антагонистом СВ1-рецепторов SR141716. Авторы заключили, что указанные эффекты каннабиноидов связаны с активацией СВ1-рецепторов [48, 51]. Ранее нами было показано, что агонисты СВ-рецепторов при внутривенном введении наркотизированным крысам вызывают брадикардию, которая достигает максимума через 15 мин после инъекции каннабиноидов [52]. В работе мы использовали следующие агонисты СВ1-, СВ2-рецепторов: HU-210 (0,1 мг/кг), анандамид (2,5 мг/кг), метанандамид (2,5 мг/кг, синтетический энзиморезистентный аналог анандамида). Кроме того, мы применяли селективный агонист СВ1-рецепторов arachidonylcyclopropylamide (ACPA, 0,125 мг/кг). Все использованные нами каннабиноиды вызывали снижение ЧСС, наиболее выраженный эффект оказывал HU-210. Селективный антагонист СВ1-рецепторов SR141716 полностью устранял HU-210-индуцированную брадикардию, в то время как селективный антагонист СВ2-рецепторов SR144528 не влиял на снижение ЧСС после инъекции HU-210 [52]. Сами антагонисты СВ-рецепторов не влияли на сердечный ритм. Этот факт говорит о том, что у интактных животных эн-доканнабиноиды не регулируют сердечный ритм.

Установлено, что внутривенное введение наркотизированным крысам анандамида, метанандамида, капсаицина (агонист TRPV1 рецепторов) вызывает кратковременную гипотензию и брадикардию (I фаза), затем следуют кратковременный подъем АД и возвращение ЧСС к норме (II фаза) [53]. После этого анандамид (1 мг/кг) и метанандамид (0,3 мг/кг), но не капсаицин, вызывают долговременную брадикардию и гипотензию (III фаза). Первую фазу связывают с активацией сенсорных нервов n. vagus (рефлекс Bezold–Jarisch) [52]. Первая и вторая фазы не проявляются в условиях блокады TRPV1 рецепторов капсазепином. Антагонист СВ1-рецепторов SR141716 устранял III фазу. Следовательно, кардиоваскулярные эффекты эндогенного каннабиноида анан-дамида могут быть следствием активации ваниллоид-ных и СВ1-рецепторов. Несколько иные данные были получены в экспериментах на ненаркотизированных крысах [54]. Анандамид при внутривенном введении (75 и 750 мкг/кг) вызывал транзиторную (30 с) гипертензию и тахикардию, аналогичную вышеупомянутой II фазе. В дозе 2,5 мг/кг анандамид также вызывал кратковременную гипертензию, но тахикардия сменялась тран-зиторной брадикардией, которая исчезала при блокаде М-холинорецепторов атропином, что говорит об участии n. vagus и барорефлекторной природе брадикардии [54]. Третью фазу авторам не удалось зафиксировать. Гемодинамические эффекты анандамида (3 мг/кг) сохранялись в условиях блокады СВ1-рецепторов препаратом AM 251 [54]. Таким образом, названные эффекты, по всей видимости, были следствием активации TRPV1 рецепторов. Для того чтобы оценить роль TRPV1 рецепторов в гемодинамических эффектах, были выполнены эксперименты на обычных мышах и «нокаутированных» особях с делецией гена, кодирующего TRPV1 рецептор (TRPV1–/–) [55]. Наркотизированным мышам внутривенно вводили анандамид (20 мг/кг). У мышей TRPV1+/+ изменения гемодинамики носили трехфазный характер [41], как и у крыс [53]. У мышей TRPV1–/– отсутствовали I и II фазы. Третья фаза была идентичной в обеих группах, во время этой фазы было зафиксировано не только снижение АД и ЧСС, но и уменьшение сердечного выбро- са [55]. Внутривенная инфузия здоровым добровольцам агониста СВ1-рецепторов Org 28611 вызывала транзи-торное увеличение ЧСС без изменения АД [56], т.е. реакция сердечно-сосудистой системы была аналогична той, какая наблюдалась при применении Δ9-ТГК.

Гипотензия, по всей видимости, является результатом прямого действия каннабиноидов на сосуды, поскольку эксперименты с изолированными артериями свидетельствуют, что каннабиноиды вызывают вазорелаксацию [57, 58].

Таким образом, каннабиноиды вызывают продолжительную гипотензию и брадикардию, которым могут предшествовать транзиторная тахикардия и гипертензия, которые связаны с активацией TRPV1 рецепторов. Гипотензия и брадикардия являются следствием стимуляции СВ1-рецепторов. Эндогенные каннабиноиды не участвуют в регуляции ЧСС и АД у интактных животных.

Заключение

Представленные данные свидетельствуют, что Δ 9-ТГК вызывает тахикардию у человека и у ненаркотизирован-ных собак. У наркотизированных собак Δ 9-ТГК способствует появлению брадикардии. У наркотизированных и бодрствующих крыс этот каннабиноид способствует снижению ЧСС, брадикардия отмечается и у ненаркоти-зированных кроликов. Почему реакция сердечно-сосудистой системы на Δ 9-ТГК у различных видов существенно разнится, неизвестно. Кроме того, эксперименты in vivo свидетельствуют, что Δ 9-ТГК оказывает отрицательный инотропный эффект. Исследования, выполненные на больных ИБС, показали, что марихуана может провоцировать приступ стенокардии. Установлено, что каннабиноиды вызывают продолжительную гипотензию и брадикардию, которым могут предшествовать транзи-торная тахикардия и гипертензия, которые связаны с активацией TRPV1 рецепторов. Гипотензия и брадикардия являются следствием стимуляции СВ1-рецепторов. Эндогенные каннабиноиды не участвуют в регуляции ЧСС и АД у интактных животных.

Список литературы Каннабиноидергическая регуляция функционального состояния сердца (часть I)

  • Mechoulam R., Gaoni Y. Hashish -IV. The isolation and structure of cannabinolic cannabidiolic and cannabigerolic acids//Tetrahedron. -1965. -Vol. 21, No. 5. -P. 1223-1229.
  • Matsuda L.A., Lolait S.J., Brownstein M.J. et al. Structure of a cannabinoid receptor and functional expression of the cloned cDNA//Nature. -1990. -Vol. 346, No. 6284. -P. 561-564.
  • Howlett A.C., Blume L.C., Dalton G.D. CB1 cannabinoid receptors and their associated proteins//Curr. Med. Chem. -2010. -Vol. 17, No. 14. -P. 1382-1393.
  • Bonz A., Laser M., Küllmer S. et al. Cannabinoids acting on CB1 receptors decrease contractile performance in human atrial muscle//J. Cardiovasc. Pharmacol. -2003. -Vol. 41, No. 4. -P. 657-664.
  • Wagner J.A., Hu K., Karcher J. et al. CB1 cannabinoid receptor antagonism promotes remodeling and cannabinoid treatment prevents endothelial dysfunction and hypotension in rats with myocardial infarction//Br. J. Pharmacol. -2003. -Vol. 138, No. 7. -P. 1251-1258.
  • Wang P.F., Jiang L.S., Bu J. et al. Cannabinoid-2 receptor activation protects against infarct and ischemia/reperfusion heart injury//J. Cardiovasc. Pharmacol. 2012. -Vol. 59, No. 4. -P. 301-307.
  • Munro S., Thomas K.L., Abu-Shaar M. Molecular characterization of a peripheral receptor for cannabinoids//Nature. -1993. -Vol. 365, No. 6441. -P. 61-65.
  • Dalton G.D., Bass C.E., Van Horn C.G., Howlett A.C. Signal transduction via cannabinoid receptors//CNS Neurol. Disord. Drug Targets. -2009. -Vol. 8, No. 6. -P. 422-431.
  • Galiegue S., Mary S., Marchand J. et al. Expression of central and peripheral cannabinoid receptors in human immune tissues and leukocyte subpopulations//Eur. J. Biochem. -1995. -Vol. 232, No. 1. -P. 54-61.
  • Onaivi E.S., Ishiguro H., Gong J.P. et al. Endocannabinoids and the cardiovascular system in health and disease. In: Endocannabinoids//Pertwee, Roger G. (Ed.), Handb. Exp. Pharmacol. -2015. -No. 231. -P. 393-422.
  • Shmist Y.A., Goncharov I., Eichler M. et al. Delta-9-tetrahydrocannabinol protects cardiac cells from hypoxia via CB2 receptor activation and nitric oxide production//Mol. Cell. Biochem. -2006. -Vol. 283, No. 1-2. -P. 75-83.
  • Weis F., Beiras-Fernandez A., Sodian R. et al. Substantially altered expression pattern of cannabinoid receptor 2 and activated en-docannabinoid system in patients with severe heart failure//J. Mol. Cell. Cardiol. -2010. -Vol. 48, No. 6. -P. 1187-1193.
  • Sawzdargo M., Nguyen T., Lee D.K. et al. Identification and cloning of three novel human G protein-coupled receptor genes GPR52, ψGPR53 and GPR55: GPR55 is extensively expressed in human brain//Brain Res. Mol. Brain Res. -1999. -Vol. 64, No. 2. -P. 193-198.
  • Ryberg E., Larsson N., Sjögren S. et al. The orphan receptor GPR55 is a novel cannabinoid receptor//Br. J. Pharmacol. -2007. -Vol. 152, No. 7. -P. 1092-1101.
  • Devane W.A., Hanus L., Breuer A. et al. Isolation and structure of a brain constituent that binds to the cannabinoid receptor//Science. -1992. -Vol. 258, No. 5090. -P. 1946-1949.
  • Mechoulam R., Ben-Shabat S., Hanuš L. et al. Identification of an endogenous 2-monoglyceride, present in canine gut, that binds to cannabinoid receptors//Biochem. Pharmacol. -1995. -Vol. 50, No. 1. -P. 83-90.
  • Hanus L., Abu-Lafi S., Fride E. et al. 2-arachidonyl glyceryl ether, an endogenous agonist of the cannabinoid CB1 receptor//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -2001. -Vol. 98, No. 7. -P. 3662-3665.
  • Leggett J.D., Aspley S., Beckett S.R. et al. Oleamide is a selective endogenous agonist of rat and human CB1 cannabinoid receptors//Br. J. Pharmacol. -2004. -Vol. 141, No. 2. -P. 253-262.
  • Milman G., Maor Y., Abu-Lafi S. et al. N-arachidonoyl L-serine, an endocannabinoid-like brain constituent with vasodilatory properties//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. -2006. -Vol. 103, No. 7. -P. 2428-2433.
  • Gomes I., Grushko J.S., Golebiewska U. et al. Novel endogenous peptide agonists of cannabinoid receptors//FASEB J. -2009. -Vol. 23, No. 9. -P. 3020-3029.
  • Pertwee R.G. Endocannabinoids and their pharmacological actions. In: Endocannabinoids//Pertwee Roger G. (Ed.), Handb. Exp. Pharmacol. -2015. -No. 231. -P. 1-37.
  • Holman E.A., Guijarro A., Lim J., Piomelli D. Effects of acute stress on cardiac endocannabinoids, lipogenesis, and inflammation in rats//Psychosom. Med. -2014. -Vol. 76, No. 1. -P. 20-28.
  • Tuma R.F., Steffens S. Targeting the endocannabinod system to limit myocardial and cerebral ischemic and reperfusion injury//Curr. Pharm. Biotechnol. -2012. -Vol. 13, No. 1. -P. 46-58.
  • Wagner J.A., Abesser M., Harvey-White J., Ertl G. 2-Arachidonyl-glycerol acting on CB1 cannabinoid receptors mediates delayed cardioprotection induced by nitric oxide in rat isolated hearts//J. Cardiovasc. Pharmacol. -2006. -Vol. 47, No. 5. -P. 650-655.
  • Varga K., Wagner J.A., Bridgen D.T., Kunos G. Platelet-and macrophage-derived endogenous cannabinoids are involved in endotoxin-induced hypotension//FASEB J. -1998. Vol. 12, No. 11. P. 1035-1044.
  • Cabral G.A., Ferreira G.A., Jamerson M.J. Endocannabinoids and the immune system in health and disease. In: Endocannabinoids//Pertwee Roger G. (Ed.) Handb. Exp. Pharmacol. -2015. -No. 231. -P. 185-211.
  • Cascio M.G., Marini P. Biosynthesis and fate of endocannabinoids. In: Endocannabinoids//Pertwee Roger G. (Ed.), Handb. Exp. Pharmacol. -2015. -No. 231. -P. 39-58.
  • Hollister L.E., Richards R.K., Gillespie H.K. Comparison of tetrahydrocannabinol and synhexl in man//Clin. Pharmacol. Ther. -1968. -Vol. 9, No. 6. -P. 783-791.
  • Domino E.F. Neropsychologic studies of marihuana. Some synthetic and natural THC derivates in animals and man//Ann. N.Y. Acad. Sci. -1971. -No. 191. -P. 166-191.
  • Malit L.A., Johnstone R.E., Bourke D.I. et al. Intravenous Δ9-tetrahydrocannabinol: Effects on ventilatory control and cardiovascular dynamics//Anesthesiology. -1975. -Vol. 42, No. 6. -P. 666-673.
  • Dewey W.L., Jenkins J., O'Rourke T., Harris L.S. The effect of chronic administration of trans-Δ9-tetrahydrocannabinol on behavior and the cardiovascular system of dogs//Arch. Int. Pharmacodyn. Ther. -1972. -Vol. 198, No. 1. -P. 118-131.
  • Cavero I., Ertel R., Buckley J.P., Jandhyala B.S. Effects of (-)-Δ9-trans-tetrahydrocannabinol on regional blood flow in anesthetized dogs//Eur. J. Pharmacol. -1972. -Vol. 20, No. 3. -P. 373-376.
  • Perez-Reyes M., Timmons M.C., Lipton M.A. et al. Intravenous injection in man of Δ9-tetrahydrocannabinol and 11-OH-Δ9-tetrahydrocannabinol//Science -1972. -Vol. 177, No. 49. -P. 633-635.
  • Perez-Riyes M., Timmons M.C., Davis K.H., Wall E.M. A comparison of the pharmacological activity in man of intravenously administered Δ9-tetrahydrocannabinol, cannabinol, and cannabidiol//Experientia. -1973. -Vol. 29, No. 11. -P. 1368-1369.
  • Cavero I., Buckley J.P., Jandhyala B.S. Hemodynamic and myocardial effects of (-)-Δ9-trans-tetrahydrocannabinol in anesthetized dogs//Eur. J. Pharmacol. -1973. -Vol. 24, No. 2. -P. 243-251.
  • Gorelick D.A., Goodwin R.S., Schwilke E. et al. Tolerance to effects of high-dose oral Δ9-tetrahydrocannabinol and plasma cannabinoid concentrations in male daily cannabis smokers//J. Anal. Toxicol. -2013. -Vol. 37, No. 1. -P. 11-16.
  • Kaymakcalan S., Sivil S. Lack of tolerance to the bradycardic effect of D9-trans-tetrahydrocannabinol in rats//Pharmacology. -1974. -Vol. 12, No. 4-5. -P. 290-295.
  • Adams M.D., Chait L.D., Earnhardt J.T. Tolerance to the cardiovascular effects of Δ9-tetrahydrocannabinol in the rat//Br. J. Pharmacol. -1976. -Vol. 56, No. 1. -Р. 43-48.
  • Hine B., Torrelio M., Gershon S. Analgesic, heart rate, and temperature effects of D8-THC during acute and chronic administration to conscious rats//Pharmacology -1977. -Vol. 15, No. 1. -P. 65-72.
  • Hine B. Morphine and D9-tetrahydrocannabinol: two-way cross tolerance for antinociceptive and heart-rate responses in the rat//Psychopharmacology. -1985. -Vol. 87, No. 1. -P. 34-38.
  • Jandhyala B.S., Hamed A.T. Pulmonary and systemic hemodynamic effects of delta9-tetrahydrocannabinol in conscious and morphine-chloralose-anesthetized dogs: anesthetic influence on drug action//Eur. J. Pharmacol. -1978. -Vol. 53, No. 1. -P. 63-68.
  • Stark P., Dews P.B. Cannabinoids. II. Cardiovascular effects//J. Pharmacol. Exp. Ther. -1980. -Vol. 214, No. 1. -P. 131-138.
  • Kawasaki H., Watanabe S., Ueki S. Effects of chronic administration of delta 9-tetrahydrocannabinol on the cardiovascular system, and pressor and behavioral responses to brain stimulation in freely moving rats//Eur. J. Pharmacol. -1980. -Vol. 65, No. 1. -P. 63-69.
  • Friedman E., Gershon S., Hine B., Torrelio M. Cardiovascular effects of D9-tetrahydrocannabinol in conscious and anesthetized dogs//Br. J. Pharmacol. -1977. -Vol. 59, No. 4. -P. 561-563.
  • Маслов Л.Н., Хедрик Дж.П., Мешоулам Р. и др. Роль транс-активации рецепторов в кардиопротекторных эффектах прекондиционирования и посткондиционирования//Рос. физиол. журн. -2012. -Т. 98, № 3. -С. 305-317.
  • Cavero I., Lokhandwala M.F., Buckley J.P., Jandhyala B.S. The effect of (-)-Δ9-trans-tetrahydrocannibinol on myocardial con-tractility and venous return in anesthetized dogs//Eur. J. Pharmacol. -1974. -Vol. 29, No. 1. -P. 74-82.
  • Aronow W.S., Cassidy J. Effect of marihuana and placebo-marihuana smoking on angina pectoris//N. Engl. J. Med. -1974. -Vol. 291, No. 2. -P. 65-67.
  • Vivan J.A., Kishioka S., Butelman E.R. et al. Analgesic, respiratory and heart rate effects of cannabinoid and opioid agonists in rhesus monkeys: antagonist effects of SR 141716A//J. Pharmacol. Exp. Ther. -1998. -Vol. 286, No. 2. -P. 697-703.
  • Vidrio H., Sanchez-Salvatori M.A., Medina M. Cardiovascular effects of (-)-11-OH-D8-tetrahydrocannabinol-dimethylheptyl in rats.//J. Cardiovasc. Pharmacol. -1996. -Vol. 28, No. 2. P. 332-336.
  • Pertwee R.G. Pharmacology of cannabinoid receptor ligands//Curr. Med. Chem. -1999. -Vol. 6, No. 8. -P. 635-664.
  • Lake K.D., Compton D.R., Varga K., Martin B.R., Kunos G. Can-nabinoid-induced hypotension and bradycardia in rats is mediated by CB1-like cannabinoid receptors//J. Pharmacol. Exp. Ther. -1997. -Vol. 81, No. 3. -P. 1030-1037.
  • Krylatov A.V., Maslov L.N., Ermakov S.Yu. et al. Significance of cardiac cannabinoid receptors in regulation of cardiac rhythm, myocardial contractility, and electrophysiologic process in heart//Biol. Bull. -2007. -Vol. 34, No. 1. -P. 28-35.
  • Malinowska B., Kwolek G., Gothert M. Anandamide and methanandamide induce both vanilloid VR1-and cannabinoid CB1 receptor-mediated changes in heart rate and blood pressure in anaesthetized rats//Naunyn-Schmiedeberg's Arch. Pharma-col. 2001. -Vol. 364, No. 6. -P. 562-569.
  • Gardiner S.M., March J.E., Kemp P.A., Bennett T. Complex regional haemodynamic effects of anandamide in conscious rats//Br. J. Pharmacol. -2002. -Vol. 135, No. 8. -P. 1889-1896.
  • Pacher P., Batkai S., Kunos G. Haemodynamic profile and responsiveness to anandamide of TRPV1 receptor knock-out mice//J. Physiol. -2004. -Vol. 558, Pt. 2. -P. 647-657.
  • Zuurman L., Passier P.C., de Kam M. et al. Pharmacodynamic and pharmacokinetic effects of the intravenously administered CB1 receptor agonist Org 28611 in healthy male volunteers//J. Psychopharmacol. -2009. -Vol. 23, No. 6. -P. 633-644.
  • Stanley C.P., Hind W.H., Tufarelli C., O'Sullivan S.E. Cannabidiol causes endothelium-dependent vasorelaxation of human mes-enteric arteries via CB1 activation//Cardiovasc. Res. -2015. -Vol. 107, No. 4. -P. 568-578.
  • AlSuleimani Y.M., Hiley C.R. The GPR55 agonist lysophosphatidylinositol relaxes rat mesenteric resistance artery and induces Ca2+ release in rat mesenteric artery endothelial cells//Br. J. Pharmacol. -2015. -Vol. 172, No. 12. -P. 3043-3057.
  • O'Sullivan S.E. Endocannabinoids and the cardiovascular system in health and disease. In: Endocannabinoids//Pertwee, Roger G. (Ed.), Handb. Exp. Pharmacol. -2015. -Vol. 231. -P. 393-422.
Еще
Статья научная