Метаболические изменения при применении амилметакрезола в эксперименте

Автор: Попова Ольга Сергеевна, Алехин Юрий Николаевич, Понамарев Владимир Сергеевич

Журнал: Вестник Красноярского государственного аграрного университета @vestnik-kgau

Рубрика: Ветеринария и зоотехния

Статья в выпуске: 12, 2022 года.

Бесплатный доступ

Болезни органов дыхания входят в число наиболее актуальных проблем ветеринарной и гуманной медицины. Многие авторы предполагают, что на фоне высокой контаминации воздуха в зоне содержания животных своевременное лечение болезней назофарингиальной зоны ограничит аэрогенный путь поражения нижних отделов респираторного тракта. В настоящее время наиболее часто с этой целью применяются антисептики, в частотности амиметакрезол. Цель статьи - экспериментальное изучение влияния амилметакрезола на состояние печени у лабораторных животных. В условиях вивария ФГБОУ ВО «СПбГУВМ» была выполнена научно-исследовательская работа, объектом которой были белые нелинейные крысы в возрасте от 3 до 5 месяцев с массой тела 180-220 г. Из числа клинически здоровых крыс были сформированы две группы по 6 голов в каждой: № 1 (контрольная, интактная) - животным изучаемый препарат не применяли; № 2 (опытная) - амилметакрезол задавали внутрь один раз в день в дозе 30 мг/кг в течение 7 дней. У крыс из опытной группы отмечены достоверные изменения состава крови. Так, на 8-й день опыта в сравнении в исходным состоянием отмечено достоверное увеличение уровня ЩФ на 20,9 %, глюкозы на 10,6, холестерина на 30,9, билирубина на 25,9 % и желчных кислот в 2,3 раза. Изменение активности аминотрансфераз стало причиной дисферментемии, на что указывает снижение коэффициента Де Ритиса. Отмечена тенденция к уменьшению общего белка (на 3,3 %) и выраженное, но недостоверное увеличение холестерина (на 30,9 %, р>0,5). Полученные нами данные указывают на наличие у амилметакрезола гепатотоксического действия и на необходимость его дальнейшего изучения.

Еще

Метаболизм, печень, гепатотоксичность, амилметакрезол, ксенобиотики

Короткий адрес: https://sciup.org/140297485

IDR: 140297485   |   DOI: 10.36718/1819-4036-2022-12-84-90

Текст научной статьи Метаболические изменения при применении амилметакрезола в эксперименте

Введение. Болезни органов дыхания входят в число наиболее актуальных проблем ветеринарной и гуманной медицины [1–3]. Ее решению посвящено большое количество научных публикаций, однако, несмотря на очевидные достижения, уровень распространенности респираторных заболеваний и эффективности мер борьбы с ними многие годы не изменяется и очевидна необходимость поиска принципиально новых подходов к профилактике и терапии патологий респираторного тракта [4, 5].

Ряд авторов отмечают, что наиболее клинически и экономически значимой нозологической единицей является пневмония, но ее возникновению в большинстве случаев предшествуют воспалительные процессы и нарушение локального иммунитета нижних дыхательных путей [6]. Они предполагают, что на фоне высокой контаминации воздуха в зоне содержания животных своевременное лечение болезней назофаринги-альной зоны ограничит аэрогенный путь поражения нижних отделов респираторного тракта. Поэтому очевидна необходимость расширения спектра средств терапии болезней верхних дыхательных путей. В настоящее время наиболее часто с этой целью применяются антисептики [7, 8], в частности амиметакрезол, или 6-пентил-м-крезол, который применяется как монопрепарат, но чаще в комбинации с другими веществами [9, 10]. Данный антисептик относится к группе фенолов, имеющих сравнительно высокий токсический потенциал, но еще в 1931 г. при соединении м-крезола с пентильным радикалом было получено нетоксическое соединение [11]. Дальнейшее изучение амиметакрезола позволило подтвердить и расширить спектр его антибактериального действия [12]. Помимо ранее известной способности нарушать синтез белка в микроорганизмах данный антисептик активно блокирует транспорт натрия внутрь клетки его тока, внутрь клетки слизистой респираторного тракта, что особенно выражено при деполяризованных мембранных потенциалах или в условиях высокочастотных разрядов [13].

Получение новых знаний о фармакокинетике и фармакодинамике амилметакрезола расширило перспективу его клинического применения. Однако предполагаемое при этом изменение показаний, дозы и порядка применения требует уточнения его токсикологических параметров [14]. Известно, что амилметакрезол окисляется до кислоты и выводится через почки в виде глюкуронида. Однако исчерпывающих данных о влиянии данного вещества или его метаболитов на основной орган биотрансформации ксенобиотиков – печень в литературных источниках мы не обнаружили.

Цель исследования – экспериментальное изучение влияния амилметакрезола на состояние печени у лабораторных животных.

Материалы и методы. В условиях вивария ФГБОУ ВО «СПбГУВМ» была выполнена научно-исследовательская работа, объектом которой были белые нелинейные крысы в возрасте от 3 до 5 месяцев с массой тела 180– 220 г, полученные из питомника РАМН «Рапполово» Ленинградской области. Использование животных в эксперименте производилось с соблюдением норм и правил, регламентированных законодательством Российской Федерации и международными рекомендациями Европейской конвенции о защите позвоночных животных, используемых для экспериментов в научных или иных целях [15, 16]. Кормление и содержание крыс соответствовало требованиям, предъявляемым к лабораторным животным [17].

Из числа клинически здоровых крыс были сформированы две группы по 6 голов в каждой: № 1 (контрольная, интактная) – животным изучаемый препарат не применяли, № 2 (опытная) – амилметакрезол задавали внутрь один раз в день в дозе 30 мг/кг в течение 7 дней. Расчет дозы осуществляли в соотвествии с методическими указаниями по оценке дезинфицирующих препаратов и рекомендациями по межвидовому переносу доз [18, 19] с учетом применения лекарственных средств с амилметакрезолом (Стрепсилс, Астрасепт) до 8 таблеток в сутки на человека со средней массой 70 кг.

В течение опыта все животные находились под постоянным клиническим наблюдением, но в 1-й и 8-й день определяли их массу тела и отбирали пробы крови, анализ которой был ориентирован на оценку состояния печени. При этом с помощью коммерческих наборов реактивов в сыворотке крови определяли содержание общего белка, глюкозы, холестерина, общего билирубина и желчных кислот, активность щелочной фосфатазы (ЩФ), аланинамино- и аспартатаминотрансферазы (АЛТ, АСТ), а также рассчитывали соотношение аминотрансфераз (коэффициент де Ритиса) как показателей, характеризующих функциональное состояние печени [20–22].

Математико-статистическую обработку полученных данных проводили с использованием программы Statistica v6.1. Рассчитывали среднюю арифметическую (М) и ошибку средней арифметической (m). Оценку различия между опытными группами оценивали по критерию Стьюдента, с признанием ее достоверным при уровне значимости р < 0,01 [23].

Результаты и их обсуждение. В течение всего периода наблюдения у всех задействованных в эксперименте животных сохранялись адекватная двигательная активность и аппетит, отсутствовали явные клинические симптомы патологии. Результаты исследования крови в первый день опыта не выявили достоверных межгрупповых различий, и они соответствовали параметрам здоровых крыс [24]. У животных из группы контроля в течение опыта не произошло существенных изменений биохимического профиля, о чем свидетельствуют результаты обследования на 8-й день эксперимента (табл.).

У крыс из опытной группы отмечены достоверные изменения состава крови. Так, на 8-й день опыта в сравнении в исходным состоянием отмечено достоверное увеличение уровня ЩФ на 20,9 %; глюкозы – на 10,6; холестерина – на 30,9; билирубина – на 25,9 % и желчных кислот – в 2,3 раза.

Модельные биохимические показатели сыворотки крови крыс (M ± m, n = 6)

Показатель

Интактная группа до начала эксперимента

Опытная группа до начала эксперимента

Интактная группа в конце эксперимента

Опытная группа в конце эксперимента

1

2

3

4

5

Общий белок, г/л

62,0±2,01

61,0±3,00

63,0±2,00

59±1,03

Глюкоза, ммоль/л

4,8±0,310

4,7 ±0,200

4,6±0,303

5,2±0,200*

Холестерин, ммоль/л

1,69±0,430

1,62 ± 0,250

1,64±0,511

2,12±0,070*

Билирубин общий, мкмоль/л

2,8±0,21

2.7±0,10

2,9±0,22

3,4±0,10***

Общие желчные кислоты, мкмоль/л

3,42±0,110

2,32±0,160

3,21±0,122

5,32±0,110***

Щелочная фосфатаза, МЕ/л

0,59±0,061

0,67±0,050

0,62±0,0233

0,81±0,030**

АСТ, ЕД/л

54,71±0,12

54,46±0,04

51,04±0,08

83,68±0,12*

Окончание табл.

1

2

3

4

5

АЛТ, ЕД/л

58,12±0,07

61,05±0,13

59,21±0,11

72,81±0,07*

Коэффициент де Ритиса (АСТ/АЛТ)

1,06

1,12

1,16

0,87

Примечание . Различие с данными животных из группы контроля статистически достоверно: * – Р ≤ 0,05;

** – Р ≤ 0,01; *** – Р ≤ 0,001.

Изменение активности аминотрансфераз стало причиной дисферментемии, на что указывает снижение коэффициента де Ритиса. Отмечена тенденция к уменьшению общего белка (на 3,3 %) и выраженное, но недостоверное увеличение холестерина (на 30,9 %, р > 0,5).

Полученные результаты показали, что амилметакрезол оказывает выраженное влияние на функции печени. В частности, увеличение содержания в крови желчных кислот, холестерина, билирубина указывает на наличие холестатического синдрома [25]. Снижение белка может быть обусловлено депрессией белоксин-тезирующей функции печени по причине дисбаланса участвующих в ней ферментов (АсАТ, АлАТ). Увеличение концентрации в крови глюкозы, вероятно, вызвано стрессом во время манипуляций с животными, но не исключается токсическое поражение щитовидной железы и поджелудочной желез [26], поэтому необходимы дополнительные исследования.

Заключение. Результаты, полученные в рамках проведенного эксперимента, показали, что амилметакрезол в дозе 30 мг/кг оказывает выраженное влияние на функции гепатобилиарной системы, которое проявляется в нарушении механизмов секреции и экскреции желчи, а также в депрессии белоксинтетической функции печени. И хотя выявленные патофизиологические явления проявлялись сравнительно умеренным изменением показателей крови, полученные нами данные указывают на наличие у амилметакрезола гепатотоксичекого действия и на необходимость его дальнейшего изучения.

Список литературы Метаболические изменения при применении амилметакрезола в эксперименте

  • Жуков М.С. Причины выбытия молодняка крупного рогатого скота на предприятиях молочного и мясного направления // Актуальные проблемы лечения и профилактики болезней молодняка: мат-лы Междунар. науч.-практ. конф. (Витебск, 28–31 октября 2018 г.) / Витеб. ордена «Знак Почета» гос. акад. ветеринар. медицины, Всерос. науч.-исслед. ветеринар. ин-т патологии, фармакологии и терапии. Витебск, 2018. С. 17–21.
  • Статистический анализ и клинико-патофи-зиологическая характеристика внебольничных пневмоний / Ю.А. Миляева [и др.] // Студенческий научный форум – 2022: мат-лы Междунар. студ. науч. конф. 2020. № 2. С. 26–29.
  • Технологическая схема профилактики респираторных болезней новорожденных телят / С.С. Дикунина [и др.] // Вестник Крас-ГАУ. 2015. № 12 (111). С. 198–202. EDN VCGVSL.
  • Smith R.A., Step D.L., Woolums A.R. Bovine respiratory disease: looking back and looking forward, what do we see? Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 2020; 36 (2): 239–251. DOI: 10.1016/j.cvfa.2020.03. 009.22.
  • Booker C.W., Lubbers B.V. Bovine respiratory disease treatment failure: impact and potential causes. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 2020; 36 (2): 487–496. DOI: 10.1016/j.cvfa.2020.03.007.16.
  • Formation of local protection of the respiratory tract in holstein calves / Yu. Alekhin [et al.] // Turkish Journal of Veterinary and Animal Sci-ences, 2019; 43 (5): 656–661. DOI: 10.3906/ vet-1903-73.
  • Лунегов А.М. Фармакологическая характеристика антисептического препарата фураргент // Международный вестник ветери-нарии. 2008. № 1. С. 33–37.
  • Изучение антибактериальной и антимикотической активности препарата аргумистин / В.А. Кузьмин [и др.] / Международный вестник ветеринарии. 2015. № 2. С. 36–39.
  • Полякова Т.С., Гуров А.В., Поливода А.М. Современный взгляд на проблему терапии тонзиллофарингитов // РМЖ. 2007. Т. 15, № 2. С. 146–150.
  • Косенко И.М. О рациональном использовании антибиотиков при инфекциях ЛОР-органов // Фарматека. 2011. № 1. С. 40–46.
  • Coulthard C.E. The Disinfectant and Antiseptic Properties of Amyl-meta-cresol // Br J Exp Pathol. 1931;12 (5):331–336.
  • Matthews D. et al. Spectrum of bactericidal ac-tion of amylmetacresol/2,4-dichlorobenzyl alco-hol lozenges against oropharyngeal organisms implicated in pharyngitis // Int J Gen Med. 2018;11:451–6. DOI: 10.2147/IJGM.S184406.
  • Topical antiseptics for the treatment of sore throat block voltage-gated neuronal sodium channels in a local anaesthetic-like manner / V. Buchholz [et al.] // Naunyn Schmiedebergs Archiv Pharmacol 2009, 380:161–168.
  • Исследование острой ингаляционной токсичности озоно-воздушной смеси / В.С. Никулин [и др.] // Вестник КрасГАУ. 2019. № 8 (149). С. 111–116.
  • Об утверждении правил лабораторной практики: Приказ Минздравсоцразвития России от 23.08.2010 г. № 708н. М., 2010.
  • Директива 2010/63/eu Европейского парламента и Совета Европейского союза. URL: https://ruslasa.ru/wp-content/uploads/2017/06/ Directive_201063_rus.pdf (дата обращения: 15.07.2021).
  • Лабораторные животные / А.А. Стекольни-ков [и др.]. СПб.: Лань, 2017. 316 с.
  • Р 4.2643. Методы лабораторных исследований и испытаний дезинфекционных средств для оценки их эффективности и безопасности. М., 2011. С. 523–525.
  • Выбор дозы препарата для доклинического исследования: межвидовой перенос доз / Е.В. Шекунова [и др.] // Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. 2020. № 10 (1). С. 19–28 . DOI: 10.30895/1991-2919-2020-10-1-19-28.
  • Якшибаева Л.А., Князева О.А. Влияние антимикотической терапии на биохимические показатели крови – маркеры гепатотоксич-ности // Инновационные научные исследования. 2021. № 12-2 (14). С. 69–76. DOI: 10.5281/zenodo.5846875. EDN BLLGQS.
  • Механизмы гепатотоксичности и гепатопро-текции: дисфункция митохондрий при остром и хроническом поражении печени и ее коррекция / В.Т. Чещевик [и др.] // Молекулярные, мембранные и клеточные основы функционирования биосистем: сб. ст. Десятого съезда белорусского общественного объединения фотобиологов и биофизиков (Минск, 19–21 июня 2012 г.). Минск: Белорус. гос. ун-т, 2012. С. 399–401.
  • Александрова А.В., Пулькова Н.В., Сахаров Д.А. Комплексный подход к изучению гепатотоксичности ксенобиотиков в условиях микроциркуляции // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2016. Т. 161, № 1. С. 60–63.
  • Серпик В.Г., Ягудина Р.И. Аналитическая биостатистика. Теоретическое обоснование статистических тестов // Фармакоэкономи-ка. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология. 2010. Т. 3, № 3. С. 5–10.
  • Физиологические, биохимические и биометрические показатели нормы экспериментальных животных: доклинические исследования: справочник / Т.В. Абрашова [и др.]. СПб.: ЛЕМА, 2013. 116 с.
  • Камышников В.С. Клинико-лабораторная диагностика заболеваний печени. М.: МЕД-пресс-информ, 2013. 96 с.
  • Гарднер Д., Шобек Д. Базисная и клиническая эндокринология: пер. с англ. М.: БИ-НОМ, 2010. Кн. 1. 464 с.
Еще
Статья научная