Метаболический статус коров при задержке внутриутробного развития эмбриона и плода

Автор: Нежданов А.Г., Михалв В.И., Чусова Г.Г., Папин Н.Е., Черницкий А.Е., Лозовая Е.Г.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Продуктивные животные: проблемы репродукции и адаптация

Статья в выпуске: 2 т.51, 2016 года.

Бесплатный доступ

Внутриутробная задержка развития эмбриона и плода (ВЗРП) у коров - это полифакторный синдром, который определяется как несоответствие размеров формирующегося эмбриона и плода срокам их гестации. Принято считать, что процессы роста и развития эмбриона и плода у коров обусловлены морфофункциональной полноценностью половых клеток, участвующих в оплодотворении, и в основном регулируются характером материнского питания, состоянием метаболического гомеостаза и половых органов матери. В 2013 году в условиях крупного молочного комплекса (ООО «Агротех-Гарант» Нащекино, Аннинский р-н, Воронежская обл.) у 53 коров красно-пестрой породы со среднегодовой молочной продуктивностью 6,0-6,5 тыс кг мы исследовали показатели обмена белков (содержание общего белка, белковых фракций, мочевины в сыворотке крови), углеводов (концентрация глюкозы, молочной и пировиноградной кислот в крови), витаминов (А, Е, С), гормонального гомеостаза (содержание прогестерона, дегидроэпиандростерон-сульфата, тестостерона, эстрадиола, кортизола, трийодтиронина в сыворотке крови), эндогенной интоксикации (концентрация среднемолекулярных пептидов, мочевины, креатинина, активность трансаминаз в сыворотке крови) и системы оксида азота на 38-40-е, 60-65-е, 110-115-е и 230-240-е сут гестации, а также влияние этих показателей на развитие эмбриона и плода. Забор крови осуществляли в утренние часы до кормления из яремной вены. Состояние половых органов и метрических показателей эмбриона и плода оценивали методом трансректальной пальпации и эхографии с использованием ультразвукового сканера «Easi-Scan-3» с линейным датчиком 4,5-8,5 МГц («BCF Technology Ltd», Великобритания). Определяли диаметр рога-плодо-вместилища, размер плацентом, диаметр корпуса и копчико-теменной размер зародыша. Критерием задержки его развития в возрасте 38-40 сут служил копчико-теменной размер 12-16 мм и диаметр корпуса 7-9 мм, 60-65 сут - соответственно 25-45 мм и 12-16 мм, 110-115 сут - диаметр рога-плодовместилища 9-15 см и плацентом 10-17 мм. На 230-240-е сут гестации в опыт включали тех животных, у которых ВЗРП была диагностирована в период 38-40 сут беременности. Установлено, что на ранних этапах формирования зародыша (38-40-е сут) задержка его развития была связана с гипопрогестеронемией, обусловленной гипоплазией желтого тела. Помимо гипопрогестеронемии, у коров с ВЗРП наблюдали снижение содержания в сыворотке крови кортизола на 36,9 % (p 2- + NO3-) в сыворотке крови на 23,9 % (p

Еще

Коровы, беременность, задержка развития эмбриона и плода, метаболизм, гормоны, оксид азота, витамин с, среднемолекулярные пептиды, γ-глутамилтрансфераза

Короткий адрес: https://sciup.org/142213933

IDR: 142213933   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2016.2.230rus

Список литературы Метаболический статус коров при задержке внутриутробного развития эмбриона и плода

  • Алёхин Ю.Н. Перинатальная патология у крупного рогатого скота и фармакологические аспекты ее профилактики и лечения. Автореф. докт. дис. Воронеж, 2013.
  • Нежданов А.Г., Михалёв В.Н., Климов Н.Т., Смирнова Е.В. Внутриутробная задержка развития эмбриона и плода у коров. Ветеринария, 2014, 3: 36-39.
  • Wu G., Bazer F.W., Wallace J.M., Spencer T.E. Board-invited review: Intrauterine growth retardation: implications for the animal sciences. J. Anim. Sci., 2006, 84: 2316-2337 ( ) DOI: 10.2527/jas.2006-156
  • Barker D.J.P., Clark P.M. Fetal undernutrition and disease in later life. Rev. Reprod., 1997, 2: 105-112 ( ) DOI: 10.1530/ror.0.0020105
  • Gallo L.A., Tran M., Moritz K.M., Wlodek M.E. Developmental programming: variations in early growth and adult disease. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol., 2013, 40(11): 795-802 ( ) DOI: 10.1111/1440-1681.12092
  • Mestan K.K., Steinhorn R.H. Fetal origins of neonatal lung disease: understanding the pathogenesis of bronchopulmonary dysplasia. Am. J. Physiol. Lung. Cell. Mol. Physiol., 2011, 301(6): L858-L859 ( ) DOI: 10.1152/ajplung.00314.2011
  • Da Silva P., Aitken R.P., Rhind S.M., Racey P.A., Wallace J.M. Influence of placentally mediated fetal growth restriction on the onset of puberty in male and female lambs. Reproduction, 2001, 122: 375-383 ( ) DOI: 10.1530/rep.0.1220375
  • Nardozza L.M., Araujo Júnior E., Barbosa M.M., Caetano A.C., Lee D.J., Moron A.F. Fetal growth restriction: current knowledge to the general Obs/Gyn. Arch. Gynecol. Obstet., 2012, 286: 1-13 ( ) DOI: 10.1007/s00404-012-2330-6
  • O'Dowd R., Kent J.C., Moseley J.M., Wlodek M.E. Effects of uteroplacental insufficiency and reducing litter size on maternal mammary function and postnatal offspring growth. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol., 2008, 294: R539-R548 ( ) DOI: 10.1152/ajpregu.00628.2007
  • Нежданов А.Г., Дашукаева К.Г. Динамика содержания стероидных гормонов в крови коров в период беременности. Сельскохозяйственная биология, 1998, 6: 62-66.
  • Safonov V.A. Hormonal status of pregnant and infertile high producing cows. Russian Agricultural Sciences, 2008, 34(4): 273-275 ( ) DOI: 10.3103/S1068367408040198
  • Сафонов В.А. О метаболическом профиле высокопродуктивных коров при беременности и бесплодии. Сельскохозяйственная биология, 2008, 4: 64-67.
  • Рецкий М.И., Шахов А.Г., Шушлебин В.И. и др. Методические рекомендации по диагностике, терапии и профилактике нарушений обмена веществ у продуктивных животных. Воронеж, 2005.
  • Miranda K.M., Espey M.G., Wink D.A. A rapid, simple spectrophotometric method for simultaneous detection of nitrate and nitrite. Nitric Oxide, 2001, 5: 62-71 ( ) DOI: 10.1006/niox.2000.0319
  • Черницкий А.Е., Сидельникова В.И., Рецкий М.И. Модифицированный метод определения среднемолекулярных пептидов в биологических жидкостях. Ветеринария, 2014, 4: 56-58.
  • Несяева Е.В. Неразвивающаяся беременность: этиология, патогенез, клиника, диагностика. Акушерство и гинекология, 2005, 2: 3-7.
  • Wiltbank M.C., Souza A.H., Carvalho P.D., Cunha A.P., Giordano J.O., Fricke P.M., Baez G.M., Diskin M.G. Physiological and practical effects of progesterone on reproduction in dairy cattle. Animal, 2014, 8(1): 70-81 ( ) DOI: 10.1017/S1751731114000585
  • Miyamoto A., Shirasuna K., Shimizu T., Matsui M. Impact of angiogenic and innate immune systems on the corpus luteum function during its formation and maintenance in ruminants. Reprod. Biol., 2013, 13(4): 272-278 ( ) DOI: 10.1016/j.repbio.2013.09.006
  • Нежданов А.Г., Турков В.Г. Эндокринные взаимоотношения в организме коров в ранний период формирования беременности. Доклады РАСХН, 1998, 6: 41-43.
  • Sidel'nikova V.I., Chernitskiy A.E., Retsky M.I. Endogenous intoxication and inflammation: reaction sequence and informativity of the markers (review). Agricultural Biology, 2015, 50(2): 152-161 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2015.2.152eng
  • Рослый И.М., Водолажская М.Г. Сравнительные подходы в оценке состояния человека и животных: 4. Субстраты эндотоксикоза и биоэнергетика организма. Вестник ветеринарии, 2008, 3(46): 57-66.
  • Qanungo S., Mukherjea M. Ontogenic profile of some antioxidants and lipid peroxidation in human placental and fetal tissues. Mol. Cell. Biochem., 2000, 215(1-2): 11-19 ( ) DOI: 10.1023/A:1026511420505
  • Whitson S.W., Harrison W., Dunlap M.K., Bowers D.E., Fisher L.W., Robey P.G., Termine J.D. Fetal bovine bone cells synthesize bone-specific matrix proteins. J. Cell. Biol., 1984, 99: 607-614.
  • Mekala N.K., Baadhe R.R., Rao Parcha S., Prameela Devi Y. Enhanced proliferation and osteogenic differentiation of human umbilical cord blood stem cells by L-ascorbic acid, in vitro. Curr. Stem. Cell. Res. Ther., 2013, 8(2): 156-162 ( ) DOI: 10.2174/1574888X11308020006
  • Bird I.M., Zhang L., Magness R.R. Possible mechanisms underlying pregnancy-induced changes in uterine artery endothelial function. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol., 2003, 284: R245-R258 ( ) DOI: 10.1152/ajpregu.00108.2002
  • Reynolds L.P., Redmer D.A. Angiogenesis in the placenta. Biol. Reprod., 2001, 64(4): 1033-1040 ( ) DOI: 10.1095/biolreprod64.4.1033
  • Zheng J., Wen Y.X., Austin J.L., Chen D.B. Exogenous nitric oxides stimulates cell proliferation via activation of a mitogenactivated protein kinase pathway in ovine fetoplacental artery endothelial cells. Biol. Reprod., 2006, 74: 375-382 ( 10.1095/biolreprod.105.043190) DOI: 10.1095/?biolreprod.105.043190
Еще
Статья научная