Метаболомное исследование гликоалкалоидов методом тандемной масс-спектрометрии в восьми сортах цветного картофеля Solanum tuberosum L

Автор: Разгонова Майя Петровна, Куликова Валентина Ивановна, Ходаева Вера Петровна, Захаренко Александр Михайлович, Голохваст Кирилл Сергеевич

Журнал: Вестник Красноярского государственного аграрного университета @vestnik-kgau

Рубрика: Агрономия

Статья в выпуске: 2, 2023 года.

Бесплатный доступ

Цель - метаболомное исследование гликоалкалоидов методом тандемной масс-спектрометрии в восьми сортах цветного картофеля. В данной работе исследуются экстракты цветного картофеля, селекционные образцы которого получены из Сибирского федерального научного центра агробиотехнологий РАН, на предмет присутствия разнообразия гликоалкалоидов. Использовано восемь сортообразцов: Тулеевский, Кузнечанка, Памяти Антошкиной, Томичка, Гибрид 15/F-2-13, Гибрид 22103-10, Гибрид 17-5/6-11, Синильга. Гликоалкалоиды представляют собой растительные метаболиты, содержащие олигосахарид, стероид С27 и гетероциклический компонент азота. Первоначальный скрининг методом ВЭЖХ-МС показал, что среди сотен соединений, обнаруженных в клубнях, состав гликоалкалоидов был особенно разнообразным. Картофельные гликоалкалоиды можно разделить на два основных класса: соланидановые или спиросолановые агликоны. Считается, что соланин и чаконин составляют более 90 % от общего количества гликоалкалоидов одомашненного картофеля, при этом чаконина часто больше, чем соланина. Методом тандемной масс-спектрометрии (высокоэффективная жидкостная экстракция и ионная ловушка BRUKER DALTONIKS) проанализированы экстракты данных сортообразцов на присутствие в них соединений из семейства гликоалкалоидов. Результаты исследования показали присутствие 22 гликоалкалоидов в предложенных сортообразцах, некоторые из выявленных гликоалкалоидов пока не описаны в мировой научной литературе.

Еще

Вэжх-mс/mс, тандемная масс-спектрометрия, картофель, гликоалкалоиды

Короткий адрес: https://sciup.org/140297966

IDR: 140297966 | DOI: 10.36718/1819-4036-2023-2-81-87

Текст научной статьи Метаболомное исследование гликоалкалоидов методом тандемной масс-спектрометрии в восьми сортах цветного картофеля Solanum tuberosum L

Acknowledgments : the work has been carried out according to the research plan of the FSBRI Federal Research Center N.I. Vavilov All-Russian Institute of Plant Genetic Resources according to R&D (RK) Collection of vegetatively propagated crops (potatoes, fruits, berries, grapes) and their wild relatives VIR – study and rational use No. 0662-2019-0004".

Введение. Зародышевая плазма картофеля характеризуется обширным генетическим разнообразием, включающим около 200 диких видов, обитающих в чрезвычайно разнообразных местообитаниях по всей Америке [1]. Однако лишь небольшая часть этого генетического разнообразия была включена в выведение современных сортов картофеля, что привело к очень узкому генетическому коридору. Следовательно, дикие виды представляют собой в значительной степени неиспользованный ресурс, который, вероятно, содержит много новых генов, полезных для улучшения свойств одомашненного картофеля. Относительно мало известно о степени разнообразия метаболитов, присутствующих в зародышевой плазме картофеля. Методы метаболомного исследования дают возможность понять изобилие и разнообразие по-лифенольного состава и соединений других классов в растениях. Было показано, что методы метаболомного исследования нескольких сортов картофеля с помощью ГХ-МС и ВЭЖХ-МС/МС являются эффективным инструментом исследования [2, 3].

Предварительный анализ семи генотипов в исследовании [4] показал, что гликоалкалоиды являются большим источником разнообразия метаболитов. Гликоалкалоиды представляют собой растительные метаболиты, содержащие олигосахарид, стероид С27 и гетероциклический компонент азота. Считается, что соланин и чако-нин составляют более 90 % от общего количества гликоалкалоидов одомашненного картофеля, при этом чаконина часто больше, чем соланина.

Пути биосинтеза гликоалкалоидов не полностью очерчены, даже для основных гликоалкалоидов картофеля, соланина и чаконина. Гликоалкалоиды, полученные из мевалонатного пути через холестерин, встречаются по всему клубню, но в основном синтезируются в феллодерме [5]. На удивление мало известно о генах и энзимологии, участвующих в превращении холестерина в различные гликоалкалоиды. Идентификация генов биосинтеза гликоалкалоидов позволила использовать трансгенные подходы к снижению содержания гликоалкалоидов в картофеле, поскольку гликоалкалоиды обычно считаются антипитательными соединениями [6]. Карто- фель со сверхэкспрессией стеролметилтранс-феразы сои показал снижение количества как холестерина, так и гликоалкалоидов [7].

Первоначальный скрининг методом ВЭЖХ-МС показал, что среди сотен соединений, обнаруженных в клубнях, состав гликоалкалоидов был особенно разнообразным. Картофельные гликоалкалоиды можно разделить на два основных класса: соланидановые или спиросола-новые агликоны, в связи с этим исследование [8] было сосредоточено на соланидиновых или соланиданоподобных гликоалкалоидах.

В данном исследовании был использован метод тандемной масс-спектрометрии для определения метаболомного профиля присутствующих гликоалкалоидов в восьми сортах цветного картофеля, выращенного Сибирским федеральным научным центром агробиотехнологий (Краснообск Новосибирской области) Российской академии наук. Внешний вид сортов цветного картофеля Гибрид 15/F-2-13 и Синиль-га из Сибирского федерального научного центра агробиотехнологий представлен на рисунке 1.

А B

Рис.1. Внешний вид сортов цветного картофеля: A – Гибрид 15/F-2-13; B – Синильга

Цель исследования – метаболомное исследование гликоалкалоидов методом тандемной масс-спектрометрии в восьми сортах цветного картофеля Solanum Tuberosum L.

Объекты и методы. Объектом исследования являлись восемь сортов сибирского цветного картофеля S. tuberosum, полученные методом селекционного отбора из Сибирского федерального научного центра агробиотехнологий Россий- ской академии наук. Это сорта: Тулеевский, Куз-нечанка, Памяти Антошкиной, Томичка, Гибрид 15/F-2-13, Гибрид 22103-10, Гибрид 17-5/6-11, Синильга. Картофель был собран на полях Сибирского федерального научного центра агробиотехнологий РАН в конце сентября 2020 г.

Для получения высококонцентрированных экстрактов применяли фракционную мацерацию. При этом общее количество экстрагента (спирт метиловый ХЧ) делили на 3 части и последовательно настаивали на картофеле первую часть, затем вторую и третью. Время настаивания каждой части экстрагента составило 7 сут.

Для выполнения разделения многокомпонентных смесей использовался жидкостный хроматограф высокого давления Shimadzu LC-20 Prominence HPLC (Shimadzu, Япония), оборудованный UV-детектором и обратнофазной колонкой Shodex ODP-40 4E. Программа элюции градиента следующая: 0,0 – 4 мин, 100 % CH 3 CN; 4 – 60 мин, 100 % – 25 % CH 3 CN; 60 – 75 мин, 25 % – 0 % CH 3 CN; контрольная промывка 75– 120 мин 0 % CH 3 CN. Весь ВЭЖХ-анализ сделан с UV-VIS-детектором SPD-20A (Kanda-Nishikicho 1-chrome, Shimadzu, Chiyoda-ku, Токио, Япония) при длинах волн 230 и 330 r/м ; температура 17 °С. Объем впрыска составлял 1 мл.

Масс-спектрометрические данные получены с помощью ионной ловушки amaZon SL (производство фирмы «BRUKER DALTONIKS», Германия), оснащенной источником ионизации электрораспылением ESI в режимах отрицательных и положительных ионов. Оптимизированные параметры получены следующим образом: температура источника ионизации – 70 °С, поток газа – 4 л/мин, газ-небилайзер (распылитель) – 7,3 psi; капиллярное напряжение – 4500 V; напряжение на изгибе торцевой пластины – 1500 V; фрагментатор – 280 V; энергия столкновения – 60 eV. Масс-спектрометр использовался в диапазоне сканирования m/z 100 – 1,700 для MС и МС/МС.

Результаты и их обсуждение. Для экспериментальных исследований были отобраны восемь наиболее эффективных сортов, полученных методом селекционного отбора из Сибирского федерального научного центра агробиотехнологий Российской академии наук. Это сорта: Тулеевский, Кузнечанка, Памяти Антошкиной, Томичка, Гибрид 15/F-2-13, Гибрид 22103-10, Гибрид 17-5/6-11, Синильга. Картофель был собран на полях в конце сентября 2020 г.

Данные масс-спектрометрии высокой точности регистрировали на ионной ловушке amaZon SL BRUKER DALTONIKS, оснащенной источником ESI в режиме отрицательных и положительных ионов. Реализован четырехступенчатый режим разделения ионов (режим МС/МС). Все химические профили образцов были получены методом ВЭЖХ – ESI – MS/MS. Сочетание обоих режимов ионизации (положительного и отрицательного) в режиме полного сканирования МС дает дополнительную достоверность определения молекулярной массы (рис. 2.). Данное сочетание режимов ионизации обеспечивает самую высокую чувствительность и приводит к ограниченной фрагментации, что делает этот метод наиболее подходящим для определения молекулярной массы разделяемых гликоалкалоидов, особенно в случаях, когда концентрация низкая. Идентификация производилась путем сравнения значений m/z, RT и моделей фрагментации со спектральными данными MS2, взятыми из научной литературы, или путем поиска в базах данных (MS2T, MassBank, HMDB).

Полученные масс-спектрометрические данные позволяют составить подробную таблицу присутствия и относительной скорости ионизации идентифицированных соединений у разных сортов сибирского картофеля S. tuberosum (табл.). Примененный в жидкостной хроматографии градиент замещения ацетонитрила водой позволил расщепить все стероидные алка-лоиды-гликозиды за достаточно короткое время.

I $2

1—

О co 05 OO О LO CO OO т—

OO о CXI LO

OO 3 LO CO

CXI

CXI 05 LO CD

05 CD

CXI CXI LO 05 CD CO т—

CD CD CD CXI

KO 1_______

CXI LO 05

CD CO CO OO

LO 05 CO 05 CXI т—

CD CD CD 05 CD т—

CXI CXI

Cl x

KO x

1_______

LO СО CXI LO CO о co

СХ| т—

СО LO

СО со

т— CXI о

CO 05 CO LO CO

3 co

T- 3 OO т— LO т—

OO co CD CD

т—

OO co CD CD

т—

OO co CD CD

т—

CD т— CO 05 LO

05 CXI CO OO

т—

CO 05

CO LO CO

Cl x

о о о

Т- со LO

О О О СО СХ| ОО

co 05 О CXI CXI co

CXI

co LO CXI co

т—

CO 05

LO CO

LO CXI

LO CO

LO CXI

CD CD CD CD

q x

LO со со СХ| 3

о co о о

T-

CXI

CO LO CO OO о

CXI

LO CD CXI

CO LO LO

LO CD т— 05 CD CO

co 05 CXI т—

CO LO CXI

CO 05 CXI т—

CO LO CXI

CO 05 CXI т—

CO LO CXI

OO co

co CXI

CXI 3 co CXI LO

cxi 05 co 05

T-

2 (U CD X co ^

со LO о о ОО о LO

Т-

со

05 05

СО LO т—

CXI LO CXI LO OO LO О CXI

CXI LO LO OO

05 LO CO

OO CXI 05 CD CXI CD

N т—

LO CO

CXI co co

OO CXI 05 CD CXI CD

N т—

CD CD CD

CXI т—

CD CD CD

О X X £ s

со LO о LO 05

о о CXI 05 О CO

05 OO

05 CXI CD 05 CO

OO CXI LO CO OO co

3 LO CD

т—

CXI OO co CD CXI LO

CD CD CD

т—

CXI CD

co CD CO CD CO CXI

CD CD

со 05 о

Т-

СО ОО

со

CO LO OO LO о co

T- CXI

T-

3 LO

т— О о CXI о

CO LO

CXI

CO LO CD т— 3 3

T-

CO LO CD т— 3 3

T-

CO co co CXI co OO co

О 5. ¥ s s Э

(XI о

о Z

см о

ОО о Z £ см о

co ZE

СП

co ZE

о z

co cJ

LO о z

LO cJ

О z

LO cJ

О z

LO cJ

LO о

co о z

LO cJ

co о

co о z

LO cJ

co о z

LO cJ

co о z

CO cJ

о z

LO cJ

OO о z

CO cJ

Cl CD О О

05 5

CD С Ъ

с 05

О О

"о

"со Е о

1—

СЕ X О

05 g

>х

X 1— CD CD m CO X CD

CD C

c о CD 05

-2 о

СП

Cl X О

05 2

X 1— CD CD m CO X CD

CD C

c о CD 05

CD 2

X CD

CD C

c о CD 05

X CD

05 X

CD. <

CD CD О

"о

CD 05 xz

2 TD

C 05

О GO

CD CD О

О CD

2 Ъ

C 05

О GO

CD CD О

"о

CD 05

CD C О

c 05

О GO

CD C

c 05

О CD

05 xz

CD C

Q CD _l

CD CD О

"о

CD 05 xz

"o cz CD

'cz 05 О CD

CD CD О

О CD

CD CZ 2 Ъ 05

'cz 05

О CD

CD CD О

"о

CZ 2 Ъ

'cz 05

О CD

CD C

CD _l

CD CD О

"о CZ CD

'cz 05

О CD

СЕ s о

05 g s E

X 1— CD CD m CO s CD

er s о

05 2 s E

X 1— CD CD m CO s CD

d s о

05 2 s E

X 1— CD CD m CO s CD

CE s о

05 2 s E

X 1— CD CD m CO s CD

CE s о

05 2 s E

X 1— CD CD m CO s CD

Разрешение отдельных пиков стероидных алкалоидных гликозидов в применяемом градиенте жидкостной хроматографии было удовлетворительным, и идентификация соединений на основе зарегистрированных масс-спектров была од- нозначной. В экстрактах в качестве основных гликоалкалоидных компонентов идентифицированы α-чаконин и α-соланин, их пики легко распознавались в суммарном ионном токе (рис. 2, 3).

Intens. x10 ⁷

x10 ⁰⁷

x10 ⁰⁵

0.5

0.0

1+ 868.41

PotatoTuleevsky MeOH #2_-1_01_849.d: +MS, 32.1min #1195

1+ 2+

297.40 445.67

1+ 398.26

1+ 706.32

1+ 560.33

1+ 851.39

PotatoTuleevsky MeOH #2_-1_01_849.d: +MS2(868.41), 32.1min #1196

PotatoTuleevsky MeOH #2_-1_01_849.d: +MS3(868.41->398.26), 32.2min #1200

15 ¹ 7 ⁺ .04 1+

253.19

327.22 о

312.27

706.40

PotatoTuleevsky MeOH #2_-1_01_849.d: +MS4(868.41->398.26->327.22), 32.3min #1204

150.13

204.13

1400 1600

1800 m/z

Рис. 2. Масс-спектр α -соланина из экстракта S. Tuberosum (сорт Тулеевский), m/z 868.41

Intens. x108

0.5

x100.07

x1007

1.0

0.5

ОАА

^™

PotatoTuleevsky MeOH #2_-1_01_849.d: +MS, 32.6min #1217

PotatoTuleevsky MeOH #2_-1_01_849.d: +MS2(852.41), 32.7min #1219

PotatoTuleevsky MeOH #2_-1_01_849.d: +MS3(852.41->706.40), 32.8min #1223

PotatoTuleevsky MeOH #2_-1_01_849.d: +MS4(852.41->706.40->560.32), 32.9min #1227

л ДАА

.ААА

Рис. 3. Масс-спектр α -чаконина из экстракта of S. Tuberosum (сорт Тулеевский), m/z 852.41

Заключение. Научные исследования, представленные в данной работе, показали присутствие большой разновариантности гликоалкалоидов в сортах сибирского цветного картофеля S. tuberosum L. Это сорта: Тулеевский, Кузнечан-ка, Памяти Антошкиной, Томичка, Гибрид 15/F-2-13, Гибрид 22103-10, Гибрид 17-5/6-11, Синильга. Все селекционные образцы получены в Сибирском федеральном научном центре агробиотехнологий Российской академии наук. Для идентифицирования целевых аналитов из экстрактов картофеля была использована тандемная масс-спектрометрия (высокоэффективная жидкостная экстракция в соединении с ионной ловушкой BRUKER DALTONIKS). Данный метод позволил идентифицировать 22 соединения, относящихся к группе гликоалкалоидов.

Список литературы Метаболомное исследование гликоалкалоидов методом тандемной масс-спектрометрии в восьми сортах цветного картофеля Solanum tuberosum L

Spooner D.M., Hijmans R.J. Potato systematics and germplasm collecting, 1989-2000 // Am. J. Potato Res. 2001. T. 78. P. 237-268.
Roessner U., Willmitzer L., Fernie A.R. High-resolution metabolic phenotyping of genetically and environmentally diverse potato tuber systems. Identification of phenocopies // Plant Physiol. 2001. T. 127. P. 749-764.
Monitoring changes in anthocyanin and steroid alkaloid glycoside content in lines of transgenic potato plants using liquid chromatography/mass spectrometry / M. Stobiecki [et al.] // Phytochem. 2003. T. 62. P. 959-969.
Griffiths D.W., Bain H., Dale M.F.B. The effect of low-temperature storage on the glycoalkaloid content of potato (Solanum tuberosum) tubers // J. Sci. Food Agric. 1997. T. 74. P. 301-307.
Krits P., Fogelman E., Ginzberg I. Potato steroidal glycoalkaloid levels and the expression of key isoprenoid metabolic genes // Planta. 2007. T. 227. P. 143-150.
Shakya R., Navarre D.A. LC-MS Analysis of Solanidane Glycoalkaloid Diversity among Tubers of Four Wild Potato Species and Three Cultivars (Solanum tuberosum) // J. Agric. Food Chem. 2008. T. 56. P. 6949-6958.
Reduction of cholesterol and glycoalkaloid levels in transgenic potato plants by overexpression of a type 1 sterol methyltransferase cDNA / L. Arnqvist [et al.] // Plant Physiol. 2003. T. 131. P. 1792-1799.
Friedman M., McDonald G.M. Potato glycoalkaloids: chemistry, analysis, safety, and plant physiology. Crit. ReV // Plant Sci. 1997. T. 16. P. 55-132.

Еще

Статья научная