Микробиологический фактор при остеоартритах

Микробиологический фактор при остеоартритах

Автор: Перецманас Е. О., Зар В. В., Рукин Я. А., Казюлина А. А., Пахлавонова А. Д.

Журнал: Гений ортопедии @geniy-ortopedii

Рубрика: Обзор литературы

Статья в выпуске: 1 т.31, 2025 года.

Бесплатный доступ

Введение. Остеоартрит (ОА) - распространенное полиэтиологическое заболевание опорно-двигательного аппарата, приводящее к инвалидности, утрате трудоспособности, ухудшению психического здоровья, повышению смертности и представляющее собой серьезную проблему для систем здравоохранения во всем мире, как сегодня, так и в будущем. В последнее время в качестве одного из значимых этиологических аспектов ОА, ранее считавшегося асептическим заболеванием, рассматривается микробиологический фактор.Цель работы - обобщение литературных данных о результатах исследований, посвященных роли микроорганизмов в этиологии и патогенезе остеоартрита, в том числе при сопутствующей ВИЧ-инфекции.Материалы и методы. Поиск проведен в электронных базах PubMed и научной библиотеке eLIBRARY по ключевым словам: остеоартрит, микробиота, остеонекроз, ВИЧ, асептический некроз (osteoarthritis, microbiome, osteonecrosis, HIV, aseptic necrosis). Отобраны публикации на русском и английском языках, касающиеся влияния микробиологического фактора на развитие артропатии. Глубина поиска - с 2010 по 2023 год.Результаты и обсуждение. В последнее время применяют новые, более совершенные микробиологические методики диагностики. В исследованиях суставных образований при отсутствии как клинических, так и лучевых признаков артрита имеются данные о наличии достаточно широкого спектра микроорганизмов, в том числе патогенных и условно патогенных. Это меняет представления об этиологии и патогенезе дистрофических процессов суставного хряща и обусловливает необходимость пересмотра протоколов лечения целого ряда заболеваний суставов. Необходимы многоцентровые комплексные исследования микробиома суставных образований, крови и кишечника.Заключение. Несомненным является наличие в суставных образованиях патогенной микрофлоры в значительном числе наблюдений, имеются доказательства развития местного инфекционного процесса в локальных клеточных элементах костно-хрящевой ткани у пациентов с ранее диагностированным асептическим остеоартритом. Наиболее вероятные источники инфицирования - микробиомы кишечника и урогенитальный тракт. У больных ВИЧ-инфекцией возможно локальное влияние вируса иммунодефицита на развитие остеонекротических процессов суставных образований.

Еще

Остеоартрит, микробиота, остеонекроз, вич, асептический некроз

Короткий адрес: https://sciup.org/142243888

IDR: 142243888   |   DOI: 10.18019/1028-4427-2025-31-1-129-136

Список литературы Микробиологический фактор при остеоартритах

  • Hunter DJ, Bierma-Zeinstra S. Osteoarthritis. Lancet. 2019;393(10182):1745-1759. doi: 10.1016/S0140-6736(19)30417-9.
  • Arendt-Nielsen L, Nie H, Laursen MB, et al. Sensitization in patients with painful knee osteoarthritis. Pain. 2010;149(3):573-581. doi: 10.1016/j.pain.2010.04.003.
  • McAlindon TE, Cooper C, Kirwan JR, Dieppe PA. Determinants of disability in osteoarthritis of the knee. Ann Rheum Dis. 1993;52(4):258-262. doi: 10.1136/ard.52.4.258.
  • Sharif B, Garner R, Sanmartin C, et al. Risk of work loss due to illness or disability in patients with osteoarthritis: a population-based cohort study. Rheumatology (Oxford). 2016;55(5):861-868. doi: 10.1093/rheumatology/kev428.
  • Gleicher Y, Croxford R, Hochman J, Hawker G. A prospective study of mental health care for comorbid depressed mood in older adults with painful osteoarthritis. BMC Psychiatry. 2011;11:147. doi: 10.1186/1471-244X-11-147.
  • Veronese N, Cereda E, Maggi S, et al. Osteoarthritis and mortality: A prospective cohort study and systematic review with metaanalysis. Semin Arthritis Rheum. 2016;46(2):160-167. doi: 10.1016/j.semarthrit.2016.04.002.
  • McDonough CM, Jette AM. The contribution of osteoarthritis to functional limitations and disability. Clin Geriatr Med. 2010;26(3):387-399. doi: 10.1016/j.cger.2010.04.001.
  • Балабанова Р.М., Дубинина Т.В. Динамика пятилетней заболеваемости болезнями костно-мышечной системы и их распространенности среди взрослого населения России за 2013-2017 гг. Современная ревматология. 2019;13(4):11-17. doi: 10.14412/1996-7012-2019-4-11-17.
  • Галушко Е.А., Большакова Т.В., Виноградова И.Б. и др. Структура ревматических заболеваний среди взрослого населения России по данным эпидемиологического исследования (предварительные результаты). Научно-практическая ревматология. 2009;47(1):11-17. doi: 10.14412/1995-4484-2009-136.
  • Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Prevalence of doctor-diagnosed arthritis and arthritis-attributable activity limitation - United States, 2007-2009. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2010;59(39):1261-1265.
  • Arthritis-related statistics. Available from: https://stacks.cdc.gov/view/cdc/150479.
  • Vos T, Flaxman AD, Naghavi M, et al. Years lived with disability (YLDs) for 1160 sequelae of 289 diseases and injuries 1990-2010: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2010. Lancet. 2012;380(9859):2163-96. doi: 10.1016/S0140-6736(12)61729-2.
  • Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Prevalence of doctor-diagnosed arthritis and arthritis-attributable activity limitation-United States, 2010-2012. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2013;62(44):869-73.
  • Yelin E, Murphy L, Cisternas MG, et al. Medical care expenditures and earnings losses among persons with arthritis and other rheumatic conditions in 2003, and comparisons with 1997. Arthritis Rheum. 2007;56(5):1397-1407. doi: 10.1002/art.22565.
  • Losina E, Thornhill TS, Rome BN, et al. The dramatic increase in total knee replacement utilization rates in the United States cannot be fully explained by growth in population size and the obesity epidemic. J Bone Joint Surg Am. 2012;94(3):201-207. doi: 10.2106/JBJS.J.01958.
  • Wallace IJ, Worthington S, Felson DT, et al. Knee osteoarthritis has doubled in prevalence since the mid-20th century. Proc Natl Acad Sci U SA. 2017;114(35):9332-9336. doi: 10.1073/pnas.1703856114.
  • Singh JA, Saag KG, Bridges SL Jr, et al. 2015 American College of Rheumatology Guideline for the Treatment of Rheumatoid Arthritis. Arthritis Rheumatol. 2016;68(1):1-26. doi: 10.1002/art.39480.
  • Sandell LJ. Etiology of osteoarthritis: genetics and synovial joint development. Nat Rev Rheumatol. 2012;8(2):77-89. doi: 10.1038/ nrrheum.2011.199.
  • Magnusson K, Scurrah K, Ystrom E, et al. Genetic factors contribute more to hip than knee surgery due to osteoarthritis - a population-based twin registry study of joint arthroplasty. Osteoarthritis Cartilage. 2017;25(6):878-884. doi: 10.1016/j.joca.2016.12.015.
  • Reddy R, Daftary MN, Delapenha R, et al. Avascular necrosis and protease inhibitors. J Natl Med Assoc. 2005;97(11):1543-1546.
  • Pisanu F, Fiore V, Corradi M, et al. Joint replacement for avascular necrosis in people living with HIV. Acta Biomed. 2022;92(S3):e2021560. doi: 10.23750/abm.v92iS3.12551.
  • Turkiewicz A, Petersson IF, Björk J, et al. Current and future impact of osteoarthritis on health care: a population-based study with projections to year 2032. Osteoarthritis Cartilage. 2014;22(11):1826-1832. doi: 10.1016/j.joca.2014.07.015.
  • Алексеева Л.И. Медикаментозное лечение остеоартроза. РМЖ. 2002;22:996.
  • Liu Z, Huang J, Wang X, et al. Dapagliflozin suppress endoplasmic reticulum stress mediated apoptosis of chondrocytes by activating Sirt1. Chem Biol Interact. 2023;384:110724. doi: 10.1016/j.cbi.2023.110724.
  • Clarke J. Bone stresses out cartilage in OA. Nat Rev Rheumatol. 2021;17(5):250. doi: 10.1038/s41584-021-00612-3.
  • Yasuda T, Poole AR. A fibronectin fragment induces type II collagen degradation by collagenase through an interleukin-1-mediated pathway. Arthritis Rheum. 2002;46(1):138-148. doi: 10.1002/1529-0131(200201)46:1<138::AID-ART10051-3.0.C0;2-K.
  • Aigner T, Kurz B, Fukui N, Sandell L. Roles of chondrocytes in the pathogenesis of osteoarthritis. Curr Opin Rheumatol. 2002;14(5):578-584. doi: 10.1097/00002281-200209000-00018.
  • Simecka JW, Davis JK, Davidson MK, et al. Mycoplasma diseases of animals. In: Maniloff J, McElhaney RN, Finch LR, Baseman JB. (eds.) Mycoplasmas: molecular biology and pathogenesis. Washington, D.C: American Society for Microbiology; 1992:391-415.
  • Davis C.P., Cochran S., Lisse J. et al. Isolation of Mycoplasma pneumoniae from synovial fluid samples in a patient with pneumonia and polyarthritis. Arch Intern Med. 1988;148(4):969-70.
  • Johnson SM, Bruckner FE, Collins DA. Mycoplasmal RNA and 5'-nucleotidase in synovial fluid from arthritis patients. IOM letters, vol. 4. In: Program Abstr. 11th Congr. Int. Organ. Mycoplasmol. International Organization for Mycoplasmology, Ames, Iowa. 1996:140.
  • Johnson SM, Bruckner F, Collins D. Distribution of Mycoplasma pneumoniae and Mycoplasma salivarium in the synovial fluid of arthritis patients. J Clin Microbiol. 2007;45(3):953-957. doi: 10.1128/JCM.01973-06.
  • Oen K, Fast M, Postl B. Epidemiology of juvenile rheumatoid arthritis in Manitoba, Canada, 1975-92: cycles in incidence. J Rheumatol. 1995;22(4):745-750.
  • Tully JG, Rose DL, Baseman JB, et al. Mycoplasma pneumoniae and Mycoplasma genitalium mixture in synovial fluid isolate. J Clin Microbiol. 1995;33(7):1851-1855. doi: 10.1128/jcm.33.7.1851-1855.1995.
  • Furr PM, Taylor-Robinson D, Webster AD. Mycoplasmas and ureaplasmas in patients with hypogammaglobulinaemia and their role in arthritis: microbiological observations over twenty years. Ann Rheum Dis. 1994;53(3):183-187. doi: 10.1136/ard.53.3.183.
  • Johnston CL, Webster AD, Taylor-Robinson D, et al. Primary late-onset hypogammaglobulinaemia associated with inflammatory polyarthritis and septic arthritis due to Mycoplasma pneumoniae. Ann Rheum Dis. 1983;42(1):108-110. doi: 10.1136/ard.42.1.108.
  • So AK, Furr PM, Taylor-Robinson D, Webster AD. Arthritis caused by Mycoplasma salivarium in hypogammaglobulinaemia. Br Med J (Clin Res Ed). 1983;286(6367):762-763. doi: 10.1136/bmj.286.6367.762.
  • Watanabe T, Shibata K, Yoshikawa T, et al. Detection of Mycoplasma salivarium and Mycoplasma fermentans in synovial fluids of temporomandibular joints of patients with disorders in the joints. FEMS Immunol Med Microbiol. 1998;22(3):241-246. doi: 10.1111/j.1574-695X.1998.tb01212.x.
  • Rozin A. Is osteoarthritis an infection-associated disease and a target for chemotherapy? Chemotherapy. 2007;53(1):1-9. doi: 10.1159/000098243.
  • Stirling A, Worthington T, Rafiq M, et al. Association between sciatica and Propionibacterium acnes. Lancet. 2001;357(9273):2024-2025. doi: 10.1016/S0140-6736(00)05109-6.
  • Рубаник Л.В., Полещук Н.Н., Асташонок А.Н. и др. Является ли аваскулярный некроз головки бедренной кости всегда асептическим? Санитарно-эпидемиологическая служба Республики Беларусь: история, актуальные проблемы на современном этапе и перспективы развития: Сборник научных трудов Международной научно-практической конференции «Здоровье и окружающая среда», посвященной 90-летию санитарно-эпидемиологической службы Республики Беларусь (Минск, 28 октября 2016 г.) Т. 2. Минск: Белорусский государственный медицинский университет; 2016:293-297.
  • Dunn CM, Velasco C, Rivas A, et al. Identification of Cartilage Microbial DNA Signatures and Associations With Knee and Hip Osteoarthritis. Arthritis Rheumatol. 2020;72(7):1111-1122. doi: 10.1002/art.41210.
  • Boer CG, Radjabzadeh D, Medina-Gomez C, et al. Intestinal microbiome composition and its relation to joint pain and inflammation. Nat Commun. 2019;10(1):4881. doi: 10.1038/s41467-019-12873-4.
  • Dunn CM, Jeffries MA. The Microbiome in Osteoarthritis: a Narrative Review of Recent Human and Animal Model Literature. Curr Rheumatol Rep. 2022;24(5):139-148. doi: 10.1007/s11926-022-01066-6.
  • Boer CG, Radjabzadeh D, Uitterlinden AG, et al. The role of the gut microbiome in osteoarthritis and joint pain. Osteoarthritis Cartilage. 2017;25:S10. doi: 10.1016/j.joca.2017.02.033.
  • Chen B, Zhao Y, Li S, et al. Variations in oral microbiome profiles in rheumatoid arthritis and osteoarthritis with potential biomarkers for arthritis screening. SciRep. 2018;8(1):17126. doi: 10.1038/s41598-018-35473-6.
  • Torchia MT, Amakiri I, Werth P, Moschetti W. Characterization of native knee microorganisms using next-generation sequencing in patients undergoing primary total knee arthroplasty. Knee. 2020;27(3):1113-1119. doi: 10.1016/j.knee.2019.12.013.
  • Tsai JC, Casteneda G, Lee A, et al. Identification and Characterization of the Intra-Articular Microbiome in the Osteoarthritic Knee. Int J Mol Sci. 2020;21(22):8618. doi: 10.3390/ijms21228618.
  • Collins KH, Paul HA, Reimer RA, et al. Relationship between inflammation, the gut microbiota, and metabolic osteoarthritis development: studies in a rat model. Osteoarthritis Cartilage. 2015;23(11):1989-1998. doi: 10.1016/j.joca.2015.03.014.
  • Ulici V, Kelley KL, Azcarate-Peril MA, et al. Osteoarthritis induced by destabilization of the medial meniscus is reduced in germ-free mice. Osteoarthritis Cartilage. 2018;26(8):1098-1109. doi: 10.1016/j.joca.2018.05.016.
  • Berthelot JM, Sellam J, Maugars Y, Berenbaum F. Cartilage-gut-microbiome axis: a new paradigm for novel therapeutic opportunities in osteoarthritis. RMD Open. 2019;5(2):e001037. doi: 10.1136/rmdopen-2019-001037.
  • Hammad DBM, Liyanapathirana V, Tonge DP. Molecular characterisation of the synovial fluid microbiome in rheumatoid arthritis patients and healthy control subjects. PLoS One. 2019;14(11):e0225110. doi: 10.1371/journal.pone.0225110.
  • Zhao Y, Chen B, Li S, et al. Detection and characterization of bacterial nucleic acids in culture-negative synovial tissue and fluid samples from rheumatoid arthritis or osteoarthritis patients. Sci Rep. 2018;8(1):14305. doi: 10.1038/s41598-018-32675-w.
  • Goswami K, Clarkson S, Tipton C, et al., The Microbiome of Osteoarthritic Hip and Knee Joints: A Prospective Multicenter Investigation. J Bone Joint Surg Am. 2023. doi: 10.2106/JBJS.22.00594.
  • Withrington RH, Cornes P, Harris JR, et al. Isolation of human immunodeficiency virus from synovial fluid of a patient with reactive arthritis. Br Med J (Clin Res Ed). 1987;294(6570):484. doi: 10.1136/bmj.294.6570.484.
  • Lamers SL, Rose R, Maidji E, et al. HIV DNA Is Frequently Present within Pathologic Tissues Evaluated at Autopsy from Combined Antiretroviral Therapy-Treated Patients with Undetectable Viral Loads. J Virol. 2016;90(20):8968-8983. doi: 10.1128/JVI.00674-16.
  • Adizie T, Moots RJ, Hodkinson B, et al. Inflammatory arthritis in HIV positive patients: A practical guide. BMC Infect Dis. 2016;16:100. doi: 10.1186/s12879-016-1389-2.
  • Raynaud-Messina B, Bracq L, Dupont M, et al. Bone degradation machinery of osteoclasts: An HIV-1 target that contributes to bone loss. Proc Natl Acad Sci U S A. 2018;115(11):E2556-E2565. doi: 10.1073/pnas.1713370115.
  • Перецманас Е.О., Тюлькова Т.Е., Зубиков В.С. и др. Вирус иммунодефицита человека в очаге деструкции костной ткани при асептическом некрозе головки бедренной кости: клинические наблюдения. Травматология и ортопедия России. 2023;29(3):94-101. doi: 10.17816/2311-2905-7989.
Еще
Статья обзорная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp