Микрофлора влагалища, плаценты и околоплодных вод у женщин при антенатальной гибели плода
Автор: Рымашевский Александр Николаевич, Уелина Га, Набока Ю.Л., Брагина Л.Е., Борщева А.А.
Журнал: Вестник Национального медико-хирургического центра им. Н.И. Пирогова @vestnik-pirogov-center
Рубрика: Оригинальные статьи
Статья в выпуске: 2 т.7, 2012 года.
Бесплатный доступ
С целью изучение микробного пейзажа заднего свода влагалища, околоплодных вод и последа у женщин с антенатальной гибелью плода (АГП), в сроке от 28 до 35 недель проспективно обследованы 16 женщин, с диагнозом, подтвержденным ультразвуковым методом. В результате бактериологического исследования в амниотической жидкости и/или плаценте, выделены условно- патогенные бактерии сходные с микрофлорой заднего свода влагалища.
Плод, антенатальная гибель, микрофлора
Короткий адрес: https://sciup.org/140188071
IDR: 140188071
Текст научной статьи Микрофлора влагалища, плаценты и околоплодных вод у женщин при антенатальной гибели плода
Одной из актуальных проблем современного акушерства является антенатальная гибель плода (АГП). На сегодняшний день не существует единого мнения об этиологических факторах и патогенезе АГП, что и определяет интерес к всестороннему изучению данной темы. [1]. Некоторые исследователи считают, что околоплодные воды и плацента стерильны [2]. В работах других авторов описаны выделенные микроорганизмы из вышеуказанных биоптатов, как в норме, так и при патологии. [3, 4]. Внутриутробное инфицирование (ВУИ) может быть обусловлено как условно-патогенной микрофлорой влагалища, вирусно- бактериальными ассоциациями при дисбиозах, так и облигатно- патогенными бактериями [5]. Ряд исследователей считает, что наличие сифилиса в анамнезе приводит к АГП в 17,8% случаев, а, перенесенный во время беременности трихомониаз – в 9,3% [6, 7]. В отечественной литературе указывается, что важную роль в возникновении ВУИ играет наличие у беременной острой или хронической экстрагенитальной патологии [3, 4].
Материалы и методы
С целью изучения микробного пейзажа заднего свода влагалища, околоплодных вод и последа при АГП, проведено обследование 16 первобеременных, в гестационном сроке 28–35 недель. Средний возраст женщин составил 26,2 ± 1,9 лет. Обследуемым проводили общеклиническое, ультразвуковое, микробиологическое и морфологическое исследования.
Всем обследуемым, с целью профилактики восходящего пути инфицирования, для индукции родовой деятельности был произведен трансабдоминальный амниоцентез с эвакуацией околоплодных вод и интра-амниальным введением гипертонического раствора хлорида натрия 20% из расчета 10 мл на неделю гестации. В 100% случаев беременность завершалась естественным родоразрешением.
Для микробиологического исследования отделяемое заднего свода влагалища (до родоразрешения) забирали стерильным ватным тампоном фирмы «COPAN» (Италия) с транспортной средой для сохранения анаэробных микроорганизмов. Бактериологическое исследование проводили по методике В.В. Меньшикова (2009) [8] с определением аэробных и неклостридиальных анаэробных (НА) бактерий.
Амниотическую жидкость в объеме 10 мл собирали во время трансабдоминального амниоцентеза, после соответствующей обработки кожных покровов, для предотвращения транскутантного обсеменения в соответствии с МУ 4.2.2039 – 05 (2006) [9]. Посев материала производили на жидкие аэробные и анаэробные обогащенные питательные среды (Спб, НИЦФ) методом разведений и расширенный набор плотных питательных сред для аэробных (Эндо, ЖСА, Сабуро, кровяной агар, приготовленный на основе агара Мюллер – Хинтон, Хай Хром селективный агар для энтерококков) и анаэробных бактерий (КАБ, MRS, Блаурокк, агар Шадлера).
В соответствии с приказом № 82 МЗ РФ от 29.04.94 [7], после рождения и осмотра последа, осуществлялся забор материала по методу А. П. Милованова (1999) [10]. При микробиологическом исследовании, факт контаминации микрофлорой кожи был сведен к минимуму, так как проводили посевы мазков- отпечатков, которые предварительно опускали в спирт, обжигали, стерильными ножницами разрезали участок плаценты и делали посевы необработанной внутренней частью среза на плотные питательные среды для аэробных и анаэробных бактерий.

Идентификацию выделенных штаммов микроорганизмов проводили по морфологическим, тинктори-альным, культуральным и биохимическим свойствам LaChema тест-систем (Чехия), согласно определителю Берджи (1997). Статистический анализ осуществляли с помощью пакета программ Statistica 6.0 и Excel-2003. Достоверность различий определяли по критерию Стьюдента. Для сравнения некоторых показателей использовали непараметрический метод определения коэффициента корреляции Спирмена.
Результаты и обсуждение
Гинекологический анамнез беременных был отягощен: неспецифическим кольпитом (56,3%), воспалительными заболеваниями шейки матки (25,0%), хроническим воспалением придатков (18,7%). Сочетанная экстрагенитальная патология отмечена в 56,3% случаев: хронический гастрит – (55,6%), вегето-сосудистая дистония и хронический пиелонефрит по (22,2%). Течение настоящей беременности у женщин с АГП осложнялось в I триместре- ОРВИ (75,0%), во II – фетоплацентарной недостаточностью (50,0%) и угрозой прерывания беременности (25,0%). В III – нарушением объема околоплодных вод в 25,0% (многоводие).
При бактериологическом исследовании микрофлоры влагалища (таблица №1) во всех случаях обнаружены дис-биотические изменения, характеризующиеся отсутствием (50,0 %) или снижением (50,0%) Lactobacillus sp. (50 ± 1,8; lg 4,3 КОЕ/мл), (p < 0,05). Частота обнаружения Bifidobacterium sp., Eubacterium sp., Propionibacterium sp., Bacteroides sp., Peptostreptococcus sp., дрожжеподобных грибов рода
Табл. 1. Количественное содержание и частота встречаемости выделенных микроорганизмов в заднем своде влагалища в норме и при АГП
Название микроорганизмов |
Частота обнаружения в норме (%)** |
Средний десятичный логарифм обнаружения (lg КОЕ/мл) в норме** |
Частота обнаружения при АГП(%) |
Средний десятичный логарифм обнаружения (lg КОЕ/мл) при АГП |
Lactobacillus sp. |
71–100 |
8,0 |
50±1,8 |
4,3* |
Bifidobacterium sp. |
12 |
5,0 |
25±1,5* |
4,0 |
Eubacterium sp. |
10–25 |
9,5 |
100±0* |
7,0 |
Propionibacterium sp. |
25 |
4,0 |
37,5±1,8* |
4,3 |
Bacteroides sp. |
9-13 |
3,5 |
37,5±1,8* |
3,0 |
Peptococcus sp. |
30–90 |
3,5 |
12,5±1,2 |
4,0 |
Peptostreptococcus sp. |
80–88 |
3,5 |
50±1,8* |
3,5 |
S.epidermidis КОС |
62 |
3,5 |
87,5±1,2* |
2,4* |
Streptococcus sp. |
30–40 |
4,5 |
37,5±1,8 |
3,3 |
Corynebacterium sp. |
30–40 |
4,5 |
75±1,5* |
2,8* |
Дрожжеподобные грибы рода Candida |
15–20 |
4,0 |
25±1,5* |
2,0 |
E.coli |
2–10 |
7,5 |
12,5±1,2 |
7,0 |
S. aureus |
3–4 |
3,0 |
25±1,5* |
3,5 |
Примечание : * – p<0,05 – достоверность различий установлена;
** – нормативные показатели приведены по Кудрявцевой Л. В., 2001 [11].
Candida, S. aureus была достоверно выше (p < 0,05) по сравнению с нормой. Для аэробных бактерий прослеживалась аналогичная тенденция достоверного увеличения частоты обнаружения (p < 0,05) S.epidermidis и Coryne-bacterium sp., однако их количественные показатели не превышали формально-нормативных.
При бактериологическом исследовании плаценты во всех случаях обнаружены различные виды микроорганизмов. В результате бактериологического исследования плаценты в 25% случаев обнаружены моноварианты (Eubacterium sp., E. faecalis.), в 75% – бактериальные ассоциации. Среди аэробных бактерий доминировали коагулазоотрицательные стафилококки (КОС) (62,5%) и энтерококки (50,0%). Реже регистрировали Coryneba-cterium sp. (25,0%), Bacillus sp., E.coli по 12,5%. Для E.coli, выделенной из плаценты и влагалища обнаружена сильная теснота коррелятивной связи по Спирмену (r=0,91, p < 0,001). Таксономическая характеристика НА бактерий была представлена Bifidobacterium sp.: (25,0%), Eubacte-rium sp. (50,0%), Peptostreptococcus sp., Bacteroides sp. по 25,0%. Таким образом, в плаценте женщин с АГП среди аэробов доминировали КОС, среди анаэробов – Eubacte-rium sp. Необходимо отметить, что во влагалище Eubact-erium sp. обнаружены во всех случаях, а КОС – 87,5%.
При бактериологическом исследовании околоплодных вод в 37,5% микрофлоры не обнаружено. В 25% случаев выделены моноварианты (S. epidermidis, K. rosea), в 37,5% определялись аэробно – анаэробные ассоциации. Среди аэробов доминировали КОС (37,5%) и Corynebacterium sp. (25,0%). Видовой спектр НА бактерий представлен: Peptostreptococcus sp., Eubacterium sp., Propionibacterium sp. (по 12,5%).
Проведенное исследование позволяет предположить, что глубокие изменения в микробиоценозе влагалища, характеризующиеся отсутствием или снижением Lactobacillus sp., увеличением частоты обнаружения различных видов анаэробных бактерий, могут явиться источником ВУИ условно – патогенными бактериями околоплодных вод и плаценты у женщин с АГП. Наши данные корреспондируют с работами О.В. Макарова (2007), Е.В. Чайки (2006) [5, 6]. Для условно- патогенных бактерий, выделенных у обследуемых, можно проследить общую тенденцию: при статистически достоверном увеличении частоты обнаружения во влагалище КОС, Corynebacterium sp., Propioni-bacterium sp., Eubacterium sp. данные виды регистрируют и превалируют в околоплодных водах и плаценте. Интересным, на наш взгляд, является то обстоятельство, что в подавляющем большинстве из исследуемых биотопов выделены аэробно – анаэробные ассоциации. Признаки ВУИ обнаружены так же при гистологическом исследовании последов обследуемых: серозный и гнойный хориоамнио-нит (37,5% и 62,5% соответственно), серозный и гнойный децидуит (25,0% и 12,5% соответственно), интервиллузит (25,0%). Признаки патологической незрелости плаценты: промежуточные ворсины (37,5%). Неспецифические изменения: фиброз стромы (12,5%).
Заключение и выводы
При микробиологическом исследовании отделяемого заднего свода влагалища у всех женщин с АГП выявлены дисбиотические изменения, характеризующиеся отсутствием или снижением основного ассоцианта- Lactobacillus sp. В плаценте среди аэробов доминировали КОС и Enterococcus sp., а среди анаэробов Eubacterium sp. При микробиологическом исследовании околоплодных вод в 12,5% проб выделены аэробно- анаэробные ассоциации, в 25,0% – монокультура (St.epidermidis, K. rosea). Среди аэробных бактерий превалировали КОС и Corynebacterium sp., среди анаэробов – Eubacterium sp., Propionibacterium sp., Peptostreptococcus sp. (по 12,5%). Необходимо отметить, что частота обнаружения данных видов аэробных (КОС, Corynebacterium sp.) и анаэробных бактерий (Propionibacterium sp.) достоверно превышали формально- нормативные показатели во влагалище (p < 0,05). При анализе гистологических изменений последов обследуемых обнаружены характерны признаки ВУИ.
Результаты проведенного исследования подтверждают, что дисбиоз влагалища влияет на эволюционно сложившуюся микроэкологию околоплодных вод и плаценты и является звеном патогенеза ВУИ, особенно при наличии у женщин отягощенного гинекологического анамнеза и/или экстрагенитальной патологии, которые являются благоприятным фоном для развития патологических процессов, вызванных условно- патогенной флорой.
Список литературы Микрофлора влагалища, плаценты и околоплодных вод у женщин при антенатальной гибели плода
- Денисова Т.Г. Пути совершенствования управления процессом профилактики антенатальных и интранатальных потерь на региональном уровне (по материалам Чувашской Республики): автореф. дис. д-ра. мед. наук/Т. Г. Денисова.-Казань., 2009. -44 с.
- Сидорова И.С., Кулаков В.И., Марков И.О. Руководство по акушерству. -М.: Медицина, 2006. -841 с.
- Макаров О.В., Алешкин В.А, Савченко Т.Н. Инфекции в акушерстве и гинекологии.-М.: МЕДпресс-информ, 2007. -464 с.
- Чайка В.К. Инфекции в акушерстве и гинекологии: Практическое руководство. -Донецк: ООО Альматео, 2006. -640 с.
- Анкирская А.С, Ермоленко Н.И., Мамедалиева Н.М. и др. Роль условнопатогенных микроорганизмов в развитии внутриутробной инфекции плода//Аку-шерство и гинекология. -1982. № 5. -С. 21-24.
- Наджарян И.Г., Костючек Д.Ф. Факторы риска акушерско-гинекологической патологии при беременности и в родах, приводящие к перинатальным потерям//Журнал акушерства и женских болезней. -2004. -T. LI 11, Вып. 1. -C. 49-54.
- Цинзерлинг В. А., Мельникова В. Ф. Перинатальные инфекции. (Вопросы патогенеза, морфологической диагностики и клинико-морфологических сопоставлений). Практическое руководство. СПб.: Элби СПб, -2002. -352 с.
- Методики клинических лабораторных исследований. Справочное пособие/Мельшиков В.В. -М.: Лабора, 2009. Т. 3.-477 с.
- Методические указания МУ 4.2.2039-05 «Техника сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологические лаборатории» (утв. и введены в действие Главным государственным санитарным врачом РФ 23 декабря 2005 г.), Москва, 2006.
- Милованов А.П. Патология системы мать-плацента-плод: руководство для врачей/М.: Медицина, 1999. -448 с.
- Кудрявцева Л.В., Ильина Е.Н., Говорун В.М. и др. Бактериальный вагиноз. Пособие для врачей. М., 2001, -С. 25.