Микроорганизмы - контаминанты вольеров собак служебных пород и оценка эффективности плановых дезинфекционных мероприятий в кинологическом городке

Федерации (ПВИ ВНГ) отводится специальная территория, называемая кинологическим городком . Он имеет здания и сооружения: односторонние павильоны, площадки для чистки собак, специальную кухню, гардеробную-кладовую.

Помещения, где размещаются собаки, должны отвечать определенным зоогигиеническим требованиям в отношении:

• 1)    микроклимата вольера (влага, свет, тепло, газовый состав воздуха);

• 2)    контаминации санитарно-показательными микроорганизмами.

В соответствии с зоогигиеническими и ветеринарно-санитарными нормами проводятся следующие мероприятия по обеспечению надлежащих условий содержания служебных собак [Кинологическое …, 2005]:

• -    профилактическая дезинфекция территории городка служебных собак и его помещений проводится периодически по плану ветеринарно-санитарной службы 2 раза в год с последующей побелкой стен свежегашеной известью. При необходимости проводят борьбу с грызунами, насекомыми и бродячими животными как возможными переносчиками заразных болезней;

• -    вынужденная (текущая и заключительная) дезинфекция – при заразном заболевании или при подозрении на него – проводится по указанию ветеринарно-санитарной службы подразделения.

Таким образом, санитарно-гигиенические параметры поверхностей и воздушной среды вольера, являясь постояннодействующими факторами на состояние служебной собаки, требуют к себе особого внимания. В связи с вышесказанным, цель исследования – проведение анализа микробиоты внутренних поверхностей вольеров служебных собак и инвентаря до и после дезинфекционных мероприятий с оценкой эффективности плановой обработки с использованием дезинфицирующих средств, рекомендованных для объектов ветеринарного надзора.

Материал и методы исследования

Материал

Был произведен отбор бактериологических проб с внутренних поверхностей выгула вольеров и инвентаря десяти вольеров собак пород бельгийская и немецкая овчарка в двух вариантах: до проведения дезинфекции и после проведения механической обработки и аэрозольной дезинфекции препаратом «ЭКОЦИД С», рекомендуемым для объектов ветеринарного надзора, обладающего бактерицидными свойствами, во время проведения плановых санитарно-гигиенических мероприятий на территории кинологического городка ПВИ ВНГ в летний период. В исследовании принимали уча- стие курсанты-кинологи 2-, 3- и 4-х курсов и представители ветеринарно-санитарной службы.

Выделение условно-патогенных изолятов и дифференциация видового состава микроорганизмов проводилась в лаборатории «Бактерицид» химического факультета Пермского государственного национального исследовательского университета.

Методы исследования

Для выделения микроорганизмов использовали следующие элективные питательные среды:

• -    среда Эндо-ГРМ ТУ 9398-027-78095326-2007 – дифференциально-диагностическая питательная среда, предназначенная для выделения энтеробактерий: 40 г сухой питательной среды размешивали в 1 л дистиллированной воды, кипятили до полного расплавления агара 2–3 мин., фильтровали и снова доводили до кипения, остужали до температуры 45–50°C, разливали в стерильные чашки Петри, готовая среда бледно-розового цвета;

• -    среда Олькеницкого ТУ 9229-072-0041978597 – предназначена для дифференциации энтеробактерий по способности сбраживать углеводы в присутствии индикатора и железосульфатного комплекса. Препарат в количестве, необходимом для приготовления конкретной серии питательной среды, размешивали в 1 л дистиллированной воды, стерилизовали автоклавированием при температуре 110°С в течение 15 мин. После стерилизации охлажденную до температуры 40–50°С среду разливали по 7 мл в стерильные пробирки и скашивали, оставляя столбик высотой 25–30 мм. Готовая среда красного цвета, pH 7.1±0.2;

• -    среда № 14 ГРМ (цитратный агар Симмонса) ТУ 9398-014-78095326-2006 – питательная среда предназначена для определения утилизации цитрата натрия энтеробактериями. Препарат в количестве, необходимом для приготовления конкретной серии питательной среды, размешивали в 1 л дистиллированной воды, кипятили 2 мин. до полного расплавления агара, фильтровали через ватномарлевый фильтр, разливали по 7 мл в стеклянные пробирки и стерилизовали автоклавированием при температуре 121°С в течение 15 мин. При охлаждении среду скашивали, оставляя столбик высотой 20–25 мм. Готовая питательная среда прозрачная, зеленого цвета, рН 6.8±0.2.

Исследование микробной обсемененности поверхностей пола и стен выгула вольера и инвентаря осуществляли методом смыва, согласно МУК 4.2.2942-11 «Методы санитарно-бактериологических исследований объектов окружающей среды, воздуха и контроля стерильности в лечебных организациях». Отбор проб с поверхностей производился путем тщательного протирания поверхности 100 см2 стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробку с 5 мл 0.9%-ного физраствора. Увлажненные тампоны, после взятия смыва, помещали в ту же пробирку и термостатировали 18–20 ч. при температуре 37±1°С. Из каждой отобранной пробы для обнаружения бактерий группы кишечной палочки (БГКП) делали высев по 0.2 мл смывной жидкости в чашки Петри со средой Эндо. Выросшие колонии после 18–24часового термостатирования подвергали дальнейшему изучению для установления их возможной принадлежности к патогенным энтеробактериям. Для определения рода микроорганизмов выросшие колонии БГКП на плотной питательной среде Эндо высевались на дифференциальные среды Ольке-ницкого и Симмонса.

Исследование культуральных и биохимических свойств санитарно-показательных бактерий производилось согласно МУК 4.2.2942-11 [2011]. После термостатирования осуществляли количественный подсчет выросших колоний. Качественный анализ условно-патогенных бактерий семейства Enterobacteriaceae , бактерий родов Acinetobacter и Enterococcus проводили визуальным осмотром и микроскопированием на оптическом микроскопе

Olympus BX 51, с программным обеспечением

cellˆB, с применением методики окрашивания микроорганизмов по Граму. Идентификация производилась согласно определителю [Определитель …, 1997].

Дезинфекционную обработку проводили в два этапа: 1) предварительная механическая зачистка поверхностей; 2) заключительная дезинфекция с помощью распылителя низкого давления Stihl SR 420. На первом этапе механической зачистки, уборка производилась с помощью инвентаря согласно требованиям, предъявляемым к уходу за помещениями размещения служебных собак [Кинологическое …, 2005]. Второй этап осуществлялся с использованием 1%-го рабочего раствора препарата «ЭКОЦИД С», предназначенного для дезинфекции объектов ветеринарного надзора и профилактики инфекционных болезней животных. Для приготовления рабочего раствора 50 г препарата растворяли в 5 л воды. Метод обработки – аэрозольное распыление комплексного дезинфицирующего средства «ЭКОЦИД С» с нормой расхода 300 мл/м2 при экспозиции 60 мин. [Инструкция …]. Обработка производилась с применением средств индивидуальной защиты (рисунок)

Дезинфекция аэрозольным методом с применением распылителя низкого давления Stihl SR 420

Полученные данные обработаны с помощью пакета статистических программ «STADIA 6.0». Результаты считались значимыми при P>0.05 для биологических объектов (95%-ный уровень достоверности).

Результаты и их обсуждение

Известно, что микрофлора любого состава, которая имеется у данного организма в норме или при патологии, называется аутомикрофлорой [Кормление …, 2010]. На кожных покровах, сли- зистых, шерсти служебной собаки в составе аутомикрофлоры могут находиться две обширные группы микроорганизмов: случайно попавшая патогенная флора и нормальная, эубиотическая микрофлора. Нормальная микрофлора – это постоянная, резидентная, естественная микрофлора, которая представлена относительно стабильным составом микроорганизмов и транзиторная, временная микрофлора, которая, не обитая постоянно на поверхностях тела попадает на кожу или слизистые оболочки из окружающей среды. Транзиторная микрофлора представлена сапрофитными и потенциально патогенными (условно-патогенными) микроорганизмами, которые обитают на коже или слизистых оболочках в течение нескольких часов, дней или недель и могут вызвать эндогенные инфекции [Крылова, Баландина, Шакиров, 2016].

На основании проведенных исследований с использованием элективных питательных сред с поверхностей инвентаря, пола и стен выгула вольеров выделены следующие представители групп микроорганизмов:

• 1.    Группа грамотрицательных бактерий:

• -    бактерии семейства Enterobacteriaceae из родов Klebsiella, Escherichia, Serratia ;

• -    бактерии рода Acinetobacter.

• 2.    Группа грамположительных бактерий из рода Enterococcus.

Данные по культуральным и биохимическим свойствам изолированных условно-патогенных бактерий представлены в табл. 1. Были выявлены:

• 1.    Розовые слизистые крупные колонии на среде Олькеницкого ферментировали глюкозу до кислоты с газом (О ‾/кг), с большим обилием газа, отмечалось наличие уреазы. Грамотрицательные палочки, толстые, короткие, прямые, имеют капсулу, неподвижные, факультативные анаэробы. Анализ биохимических свойств позволяет отнести микроорганизмы к роду Klebsiella.

• 2.    Мелкие красные колонии на среде Оль-кеницкого расщепляют углеводы с образованием кислоты без газа (О к/к). Окрашиваются по Граму положительно, представляют собой кокки. Данные биохимического теста, а также изучение морфологии позволили сделать вывод о том, что бактерии относятся к роду Enterococcus.

• 3.    Красные с металлическим блеском колонии на среде Олькеницкого ферментируют глюкозу и лактозу до кислоты с газом (О к/кг), образуют индол, восстанавливают нитраты. Не гидролизуют желатину и мочевину. По Граму окрашиваются отрицательно. По результатам изучения биохимических свойств бактерии отнесли к роду Escherichia , вид Escherichia coli. Они подвижны за счет перитрихиальных жгутиков.

• 4.    Розовые плоские колонии по Граму окра-

• шиваются отрицательно. На среде Олькеницкого – отрицательная реакция. Оксидазонегативные, неподвижные. Индол и сероводород не образуют. Жгутиков не имеют. Относятся к роду Acinetobacter – споронеобразующим неферментирующим строгим аэробам.

• 5.    Крупные розовые слизистые ползучие колонии на среде Олькеницкого ферментировали глюкозу до кислоты с газом (О ‾/кг). Гидролизовали желатину, восстанавливали нитрат. Анализ морфологических и биохимических свойств позволил их дифференцировать как бактерии рода Serracia . Подвижны за счет перитрихиальных жгутиков. Имеют яркий розово-красный пигмент колоний при выделении чистой культуры.

Таблица 1

Результаты исследований культуральных и биохимических свойств бактерий

№ п/п	Род/вид бактерий	Морфология, окраска по Граму	Дифференциация на среде Олькеницкого	Биохимические свойства									Описание колоний
				о о к S со о	cd cd S о О	cd О К 2	cd О	8 § cd § & Kt § К U к У Q О и		о о	са о	8 5
1	Klebsiella	Грам¯, палочки	О -/кг	-	-	+	-	+	+	-	+	-	Розовые, сочные слизистые
2	Enterococ cus	Грам+, кокки	О к/к	-	-	+	-	-	-	+	-	-	Мелкие красные с перламутровым блеском
3	Escherichia coli	Грам¯, палочки	О к/кг	+	-	+	+	-	+	-	-	-	Красные с металлическим блеском
4	Acineto-bacter	Грам¯, палочки	О -/-	-	-	+	-	+	-	-	+	-	Розовые плоские НГОБ
5	Serratia	Грам¯, палочки	О -/кг	+	-	+	-	+	-	-	-	+	Розовые, слизистые ползучие

Примечания:* кг – ферментация до кислоты с образованием газа; «+»– положительная реакция; «-»– отрицательная реакция; НГОБ – неферментирующие грамотрицательные бактерии.

Таким образом, качественный анализ биоразнообразия выявил, что микробные изоляты отно- сятся, согласно санитарным правилам [Безопасность …, 2014], к 4-й группе патогенности, что позволяет считать их как условно-патогенные организмы, потенциально-опасными и способными вызывать заболевания человека и животных.

Характеристика микроорганизмов – резидентных представителей нормальной микрофлоры

• 1.    Бактерии рода Enterococcus – бактерии облигатной (постоянной), аутохтонной (коренной), индигенной (местной), резидентной части [Кормление …, 2010], относятся к 17 группе «Грамположительные кокки» [Определитель …, 1997]. Энтерококки являются факультативными анаэробами, грамположительны, высокорезистентны к различным факторам внешней среды и дезинфицирующим средствам. С одной стороны, бактерии рода Enterococcus обеспечивают колонизационную резистентность слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта животных и человека, а с другой – являются возбудителями инфекций мочевыводящих путей, раневых инфекций, способны вызывать гнойно-воспалительные процессы различной локализации, протекающие обычно вяло, хронически. Энтерококки способны активно приспосабливаться к различным неблагоприятным факторам, устойчивы к низким значениям рН среды, передаются горизонтально через руки, поверхности, инвентарь [Медицинская …, 2010].

• 2.    Бактерии рода Acinetobacter - бактерии облигатной, аутохтонной (коренной), индигенной, резидентной части [Кормление …, 2010], относятся к 4-й группе «Грамотрицательные аэробные и микроаэрофильные палочки и кокки» [Определитель …, 1997]. Род Acinetobacter – грамотрица-тельные, не образующие спор, строго аэробные бактерии, повсеместно встречающиеся в природе, обитающие на коже, колонизирующие желудочнокишечный тракт человека и животных. Вместе с тем, бактерии рода Acinetobacter могут являться инфекционным агентом заболеваний дыхательных путей (синусит, пневмония и пр.), мочевыводящих путей, инфекции кожи, нервной системы, опорнодвигательного аппарата [Медицинская …, 2010].

• 3.    Бактерии рода Klebsiella относятся к 5-й группе «Факультативно анаэробные грамотрица-тельные палочки» [Определитель …, 1997]. Клеб-сиеллы – грамотрицательные факультативноанаэробные условно-патогенные, неподвижные, не образующие спор бактерии, устойчивые к воздействию окружающей среды и способные долго со-

  храняться в почве, в воде, на предметах в помещениях, в том числе и при пониженных температурах [Медицинская …, 2010]. Представители рода Klebsiella относят к колиформным, т.е. санитарнопоказательным микроорганизмам, маркерам фекальной контаминации.

• 4.    Бактерии Escherichia coli относятся к 5-й группе «Факультативно анаэробные грамотрица-тельные палочки» [Определитель …, 1997] – вид грамотрицательных палочковидных бактерий, факультативных анаэробов, входящий в состав нормальной микрофлоры желудочно-кишечного тракта человека и животных, условно-патогенны. Кишечные палочки устойчивы во внешней среде, длительное время сохраняются в почве, воде, фекалиях, хорошо переносят высушивание, более устойчивы по сравнению с другими энтеробактериями [Медицинская …, 2010]. Escherichia coli – возбудитель колибактериоза, обладает способностью быстро приобретать устойчивость ко многим антибактериальным препаратам. Санитарнопоказательные «бактерии группы кишечной палочки», свидетельствуют о свежем фекальном загрязнении.

• 5.    Бактерии рода Serratia относятся к 5-й группе «Факультативно анаэробные грамотрица-тельные палочки» [Определитель …, 1997]. Сер-рации распространены повсеместно в окружающей среде – их выделяют из почвы, воды, воздуха, с растений, различных предметов, а также из испражнений насекомых и грызунов [Медицинская …, 2010]. Ранее бактерии рода Serratia считались непатогенными, позднее установлена их способность колонизировать мочевыводящие и воздухоносные пути, желудочно-кишечный тракт. S. marcescens вызывает инфекции мочевыводящих путей, ран и гнойничковых поражений кожи. Важным моментом является способность серраций к горизонтальной передаче, т.е. через руки, поверхности, инвентарь. Для человека бактерии рода Serratia условно-патогенны.

Характеристика микроорганизмов – транзи-торных представителей нормальной микрофлоры – бактерий семейства

Enterobacteriaceae

Количественная динамика содержания санитарно-показательных микроорганизмов при проведении дезинфекционных мероприятий . Количественный анализ содержания микроорга-низмов-контаминантов вольеров проводился в два этапа: до дезинфекционных мероприятий и после заключительной дезинфекции рабочим раствором препарата « ЭКОЦИД С», предназначенного для дезинфекции и профилактики инфекционных болезней животных.

Полученные результаты представлены в табл. 2.

Анализ биоразнообразия микроорганизмов, выделенных с поверхности пола выгула вольеров (табл. 2) показывает, что до дезинфекционных мероприятий количество санитарно-показательных микроорганиз- мов находится в диапазоне от 4450.0 до 45115.2

КОЕ/см², среднее значение: 33545.36± 5430.0 КОЕ/см². После дезобработки количество бактерий снизилось от 1385.0 до 39331.2 КОЕ/см², среднее значение: 18231.46±5344.0 КОЕ/см². Эффективность обработки составила 50.24%. После дезинфекционных мероприятий видовое разнообразие сохранилось на первоначальном уровне, выделены представители семейства Enterobacteriaceae (роды Klebsiella и Ser-ratia; Escherichia coli), бактерии рода Acinetobacter; грамположительные бактерии рода Enterococcus. Частоты встречаемости санитарно-показательных микроорганизмов до и после дезинфекционных мероприятий представлены в табл. 3.

Таблица 2

Среднее содержание санитарно-показательных микроорганизмов на поверхностях выгула вольеров

Поверхность	До обработки, КОЕ/см², (M±m)	После обработки, *КОЕ/см², (M±m)	Эффективность обработки, %
Пол	33545.36±5430.0	18231.46±5344.0	50.24
Стены	12952.76±5098.0	595.0±363.3	93.46
Инвентарь	11888.86±4102.0	945.5±502.5	80.38

Примечания: * КОЕ - колониеобразующая единица; M – среднее арифметическое значение; m – ошибка средней арифметической.

Таблица 3

Частота встречаемости санитарно-показательных микроорганизмов в смывах с поверхностей выгула вольеров до и после дезинфекционных мероприятий

Род/вид бактерий До обработки, % После обработки, % Степень снижения КОЕ бактерий, % пол Klebsiella 50 50 0 Enterococcus 100 80 20 Escherichia coli 70 70 0 Acinetobacter 60 60 0 Serratia 60 40 20 стены Klebsiella 40 30 10 Enterococcus 40 10 30 Escherichia coli 40 30 10 Acinetobacter 40 0 40 Serratia 20 10 10 инвентарь

Klebsiella	50	30	20
Enterococcus	90	50	40
Escherichia coli	40	20	20
Acinetobacter	40	40	0
Serratia	60	10	50

Результаты показывают, что дезинфекционные мероприятия оказались недостаточно эффективными в отношении выделенных таксонов, и лишь представители двух родов бактерий Enterococcus и Serratia показали некоторое снижение частоты встречаемости после обработки пола (по 20%).

Количественный и качественный анализ микробиоты стен выгула вольеров показал (табл. 2), что до дезинфекционных мероприятий количество микроорганизмов находится в диапазоне от 0 до 41644.8 КОЕ/см², среднее значение: 12952.76±5098.0 КОЕ/см². После аэрозольной дезобработки, количество бактерий варьировало от 0 до 3000.0 КОЕ/см², среднее значение: 595.0± 363.3 КОЕ/см². Эффективность обработки стен выгула составила 93.46%. После дезинфекционных мероприятий выделены микроорганизмы семейства Enterobacteriaceae (роды Klebsiella и Serratia, Escherichia coli), грамположительные бактерии рода Enterococcus. Зафиксировано снижение частоты встречаемости представителей двух родов бактерий: Enterococcus и Acinetobacter после обработки (30 и 40% соответственно) (табл. 3).

Анализ микрофлоры с поверхностей инвентаря в вольерах выявил следующие закономерности (табл. 2): до дезинфекционных мероприятий количество микроорганизмов находилось в диапазоне от 135.0 до 34704.0 КОЕ/см², среднее значение: 11888.86±4102.0 КОЕ/см². После аэрозольной дезобработки, количество бактерий варьирует от

20.0 до 4750.0 КОЕ/см², среднее значение: 945.5± 502.5 КОЕ/см². Эффективность обработки составила 80.38%. После дезинфекционных мероприятий выделены представители семейства Entero-bacteriaceae (роды Klebsiella и Serratia , Escherichia coli ), грамположительные бактерии рода Enterococcus . Дезинфекционные мероприятия оказались достаточно эффективными в отношении представителей двух родов бактерий: Enterococcus и Serratia – снижение частоты встречаемости после обработки составило 40 и 50% соответственно.

Рекомендации по применению дезинфицирующих средств при проведении санитарно-гигиенических мероприятий в местах содержания служебных собак

Известно, что дезинфекция или обеззараживание включает в себя мероприятия, направленные на уничтожение возбудителей инфекционных болезней на объектах внешней среды. Дезинфекция контаминированных объектов внешней среды предотвращает передачу возбудителей инфекционных болезней восприимчивым здоровым животным. Поэтому она имеет большое значение в общем комплексе противоэпизоотических мероприятий [Бакулов, Ведерников, Семенихин, 2000].

Дезинфекцию с учетом ее ветеринарносанитарного и эпизоотологического значения делят на профилактическую и вынужденную, в том числе заключительную. Профилактическая дезинфекция направлена на предупреждение накопления возбудителей инфекционных болезней и снижение общей микробной загрязненности [Кинологическое …, 2005].

Важным показателем безопасности любого дезсредства является токсичность. Признаки определения класса опасности вредных веществ установлены ГОСТ 12.1.007-76 [2007], согласно которому химические вещества разделены на четыре класса по уровню токсичности и их воздействию на живые организмы, в частности, на людей и животных. Класс опасности зависит от таких факторов, как: предельно допустимая концентрация (ПДК); средняя смертельная доза при нанесении на кожу или попадании в желудок. Для проведения санитарно-гигиенических мероприятий в кинологическом городке показатель токсичности дезсредств особенно значим, т.к для объектов ветеринарного надзора предъявляются особые требования.

При использовании дезсредств в кинологических городках имеется ряд проблем: для проведения дезинфекции осуществляется перевод животных в другие помещения, что может быть затруднительным, либо животные находятся на территории городка вне помещений; препарат при этом должен быстро выветриваться и высыхать, обладая высокой степенью эффективности обезза- раживания поверхностей в отношении широкого спектра патогенных биологических объектов.

Следующим необходимым показателем является экономичность расходования дезсредства. Показатель экономичности может складываться из: расчета концентрации активно-действующего вещества, т.к. напрямую влияет на приготовление рабочего раствора; способа нанесения препарата (протирание, орошение, аэрозольный и пр.); спектра действия препарата на патогенные биологические объекты; стоимости дезсредства, производителя и пр.

Таким образом, основными показателями, которые на наш взгляд, должны быть приняты во внимание, при выборе средства дезинфекции являются:

• 1.    Степень антимикробной активности в отношении живых и споровых форм патогенной микрофлоры.

• 2.    Экологическая безопасность.

• 3.    Экономичность применения.

• 4.    Метод нанесения и использования дезсредства в местах вольерного содержания собак служебных пород.

«ЭКОЦИД С», используемый для решения проблем микробной контаминации в рамках текущей дезинфекции в кинологическом городке, согласно инструкции, является сильным окислителем и в качестве активного действующего вещества содержит тройную соль пероксомоносульфата калия. Обладает широким спектром антимикробного действия в отношении бактерий, вирусов, включая возбудителя африканской чумы свиней и грибов. По степени воздействия, «ЭКОЦИД С» относится к умеренно опасным веществам [ГОСТ 12.1.00776, 2007; Инструкция …]. Подходит для проведения профилактической и вынужденной (текущей и заключительной) дезинфекции и профилактики инфекционных болезней животных на всех объектах ветеринарного надзора и находящегося внутри них оборудования и инвентаря. Недостатком «ЭКОЦИДА С» можно считать высокую стоимость как концентрата, так и рабочего раствора. Для применения подходят способы орошения, протирания, погружения или аэрозольный, в отсутствии животных.

Во время проведения заключительной дезинфекции в кинологическом городке ПВИ ВНГ использован метод аэрозольной обработки. Использование такого способа нанесения рабочего раствора дезинфицирующего средства в вольерах имеет, по нашему мнению, ряд недостатков, а именно:

• 1.    Слабое проникновение в пористые материалы, такие, как деревянный настил и стены выгула вольера, снос препарата (вольер хорошо продувается ветром), плохое оседание мельчайших аэро-

• зольных частиц, что является достоинством при дезинфекции воздушной среды, но не поверхностей.

• 2.    Некачественная механическая очистка мест содержания служебных собак снижает эффективность применения препарата. Для наибольшей эффективности препарата, а также его максимального взаимодействия с поверхностями необходимо производить качественную механическую очистку помещений перед обработкой. При проведении обработки в выгулах вольеров в углах были заметны комки шерсти, на стенах в некоторых местах корка фекально-мочевой смеси, а на полу под настилом из-за его неровности образовавшийся слой грязи. Все это способствовало худшему взаимодействию препарата с предметами обработки.

• 3.    Отсутствие ротации применения препаратов. Приобретенная устойчивость к лекарственным и антибактериальным средствам легко наследуется у бактерий, что сводит к минимуму результативность последующей обработки.

Заключение

Известно, что любая инфекционная болезнь может существовать в природе только при условии непрерывной передачи возбудителя от больного животного или бактерионосителя во внешнюю среду, а затем в организм нового животного [Баку-лов, Ведерников, Семенихин, 2000]. Непрерывный процесс возникновения и распространения инфекционных болезней в результате передачи соответствующих возбудителей от больного организма к здоровому, называется эпизоотическим процессом, который возникает и развивается в результате взаимодействия трех обязательных звеньев: источника возбудителя инфекции; механизма передачи возбудителя инфекции и восприимчивых животных или человека. Эти составляющие обусловливают не только возникновение, но и дальнейшее развитие эпизоотического процесса, т.е. служат его непосредственными движущими силами.

В исследовании было установлено наличие всех трех звеньев эпизоотической цепи.

Дезинфекция предпринимается с целью разрыва путей передачи возбудителей заболеваний от источников инфекции к восприимчивым людям и заключается в обработке дезинфицирующими препаратами объектов, являющихся фактором передачи болезнетворных микроорганизмов: рук, оборудования, поверхностей помещений, воздуха.

Препарат «ЭКОЦИД С», используемый в настоящее время в целях дезинфекции в кинологическом городке ПВИ ВНГ, обладает всеми необходимыми показателями для применения, но эффективность его использования можно улучшить:

• 1)    выбором наиболее эффективных методов для обработки внутренних поверхностей вольеров:

орошение, протирание, проливание, как обеспечивающих максимальное проникновение препарата в обрабатываемую поверхность и дальнейшее взаимодействие с ней;

• 2)    ротацией дезинфицирующего средства по активно-действующему веществу раз в 3 года, учитывая эффективность в отношении эпизоотически-значимых патогенных биологических агентов (грибы, бактерии, вирусы);

• 3)    использованием для побелки вольеров свежегашеной извести в режиме побелки 2–4 раза в месяц на парково-хозяйственных днях.