Миокин ирисин - молекулярный сигнал, опосредующий благотворное влияние физической активности на функции мозга и циркадианную систему (обзор)
Автор: Инюшкин А.Н., Павленко С.И., Исакова Т.С., Конашенкова А.Т., Инюшкин А.А.
Журнал: Человек. Спорт. Медицина @hsm-susu
Рубрика: Физиология
Статья в выпуске: 1 т.24, 2024 года.
Бесплатный доступ
Цель: обзор современных данных о центральной активности миокина ирисина.
Ирисин, физическая активность, ось «мышцы – мозг», функции мозга, циркадианные ритмы, супрахиазматическое ядро
Короткий адрес: https://sciup.org/147243309
IDR: 147243309 | DOI: 10.14529/hsm240107
Текст обзорной статьи Миокин ирисин - молекулярный сигнал, опосредующий благотворное влияние физической активности на функции мозга и циркадианную систему (обзор)
A.N. Inyushkin, ,
S.I. Pavlenko, ,
Введение. Миллионы лет эволюции включали в себя процессы совершенствования двигательной системы млекопитающих и человека, в ходе которых развитие скелетных мышц происходило параллельно с изменениями на уровне головного мозга. Эти изменения привели к тому, что двигательные области мозга приобрели способность не только регулировать низкоуровневые аспекты планирования и осуществления движений, но и контролировать перцептивные и двигательные аспекты моторики, связанные со сложными когнитивными функциями, такими как принятие решения, распознавание и имитация действия [20].
Данные эволюционной физиологии свидетельствуют о существовании тесной связи между мышечной системой и мозгом [27]. На этом основании все большую популярность приобретает концепция, обосновывающая существование функциональной оси «мышцы – мозг» [26, 29].
Накопленные к настоящему времени экспериментальные данные свидетельствуют о том, что ключевой информационной молекулой, передающей в мозг сигналы от скелетных мышц, является миокин ирисин [26]. Ирисин, открытый в 2012 г., является продуктом расщепления фибронектин тип III домен- содержащего протеина (FNDC5) под влиянием коактиватора транскрипции PGC1α [4]. Ирисин продуцируется в скелетных мышцах при их сокращениях и выделяется в системный кровоток, откуда поступает к органам и тканям и оказывает ряд периферических эффектов. Наиболее известным среди них является стимуляция ирисином превращения клеток белой жировой ткани в бурые адипоциты [4, 34]. Этот процесс сопровождается снижением массы тела и повышением термогенеза. Установлено, что в основе последнего лежит способность ирисина стимулировать экспрессию протеина UCP-1, являющегося регулятором термогенеза бурого жира [18]. В реализации данного эффекта участвуют внутриклеточный посредник р38 митоген-активируемая протеинкиназа (р38 MAPK) и внеклеточная киназа ERK, фосфорилирование которых происходит под действием ирисина. Другим полезным эффектом ирисина является увеличение экспрессии гормона бетатрофина, стимулирующего пролиферацию β-клеток поджелудочной железы, что нормализует гомеостаз глюкозы, снижает толерантность тканей к глюкозе и может предотвратить возникновение сахарного диабета 2 типа [2, 18]. Важным периферическим эффектом ирисина является его стимулирующее влияние на процессы формирования и метаболизм костной ткани. Установлено, что ирисин способствует пролиферации и дифференцировке остеобластов, отложению кальция, повышает активность щелочной фосфатазы и стимулирует ремоделирование кости [11, 16].
Существуют веские основания предполагать, что ирисин способен проникать сквозь гематоэнцефалический барьер в ЦНС, хотя механизм его транспорта в мозг пока не изучен [25, 35]. Кроме этого, экспрессия ирисина выявлена в ряде отделов головного мозга: в гиппокампе, гипоталамусе, среднем и продолговатом мозге, мозжечке, коре больших полушарий [19, 33].
Целью настоящего исследования является обзор современных данных о центральной активности миокина ирисина.
Методы исследования. Проведен анализ литературных источников, размещенных в поисковых платформах РИНЦ, Scopus, и Pubmed. Критериями отбора являлись период 2010–2023 гг. и сочетания ключевых слов «ирисин / irisin», «физическая активность / physical activity», «упражнения / exercises»,
«мозг / brain», «когнитивные функции / cognitive functions». Результаты подвергали обобщению и конкретизации.
Результаты. Поскольку основным источником ирисина считаются работающие мышцы, исследование его центральных эффектов идеологически связано с изучением молекулярных механизмов благотворного влияния физической активности на функции мозга. Известно, что физические упражнения оказывают положительное влияние на когнитивные функции [3], улучшают психическое состояние при депрессии, бессоннице и стрессе [23], замедляют развитие нейродегенеративных заболеваний [24], оказывают нейропротектор-ное действие и улучшают память [10]. Критическую роль в реализации благотворного влияния физических упражнений на функции мозга играет ирисин [35]. В связи с этим в настоящее время активно изучаются центральные эффекты и механизмы действия эндогенного и экзогенного ирисина.
В частности, в исследовании на грызунах показано, что режим длительной 30-дневной физической нагрузки (бег в колесе) приводит к повышенной экспрессии PGC-1α и FNDC5 / ирисина в гиппокампе [33]. Установлено также, что периферическая гиперэкспрессия FNDC5/ирисина стимулирует продукцию в гиппокампе мозгового нейротрофического фактора BDNF, вовлеченного в механизмы обучения и памяти. К аналогичному результату приводила принудительная экспрессия FNDC5 в первичной культуре нейронов гиппокампа, тогда как нокдаун FNDC5 посредством интерференции РНК приводил к снижению экспрессии BDNF [22]. Таким образом, BDNF может быть посредником в реализации определенной части центральных эффектов ирисина. BDNF известен широким набором положительных эффектов на уровне клеток мозга, включая выживание нейронов в условиях ишемии, их дифференцировку, миграцию, ветвление дендритов, синаптогенез и пластичность. Мыши с нокаутом гена fndc5 отличаются морфологическими и функциональными дефектами нейронов зубчатой извилины гиппокампа, в результате чего у этих животных существенно снижены когнитивные функции. Локальное введение ирисина в эту область мозга или даже его периферическое введение приводило к значительному нивелированию когнитивного дефицита и других неврологических симптомов [9].
В исследовании, выполненном с использованием модели церебральной ишемии вследствие окклюзии средней мозговой артерии у мышей [30], было установлено, что объем поражения мозговой ткани отрицательно коррелирует с концентрацией ирисина в плазме крови. Внутривенное введение ирисина за 30 минут до окклюзии артерии приводило к уменьшению объема повреждения мозга, его неврологических последствий, предотвращало отек мозга и снижение массы тела. В отдельной группе мышей, подвергавшихся регулярной физической нагрузке в течение 2 недель, введение антител, нейтрализующих ирисин, приводило к более значительным повреждениям мозга вследствие ишемии, чем в контроле (введение иммуноглобулина). Авторы пришли к заключению о том, что ирисин уменьшает повреждение нейронов головного мозга, вызванное ишемией, и способствует нейропро-текторному влиянию физической нагрузки [30].
Содержание ирисина оказалось сниженным в гиппокампе и цереброспинальной жидкости пациентов с болезнью Альцгеймера, а также у мышей с экспериментальными моделями данного заболевания [10]. Нокдаун FNDC5/ирисина в мозге мышей приводил к нарушению долговременной потенциации и памяти на распознавание новых объектов. В противоположность этому, повышение уровня FNDC5/ирисина в мозге мышей с моделью болезни Альцгеймера восстанавливало долговременную потенциацию и память. Периферическая гиперэкспрессия ирисина предотвращала возникновение нарушений памяти, тогда как иммунологическая блокада ири-сина на периферии или в ЦНС ослабляла нейропротекторное действие физической активности на синаптическую пластичность и память мышей с моделью болезни Альцгеймера. Таким образом, ирисин является медиатором благотворного влияния физической активности в моделях болезни Альцгеймера, способным противодействовать нарушению синаптической пластичности и памяти при данном заболевании [10].
Отдельный интерес представляют сведения о роли ирисина в регуляции функции циркадианных биологических часов гипоталамуса. Эти часы, расположенные в супрахи-азматическом ядре, обладают способностью генерировать собственный эндогенный ритм с периодом, близким к 24 часам [1, 12]. Обладание собственными циркадианными часами является важным эволюционным достижением живых организмов, дающим им возможность заранее предвидеть наступление ежесуточно повторяющихся событий. Главные часы супрахиазматического ядра регулируют всю совокупность физиологических, биохимических и поведенческих циркадианных ритмов организма [13].
Ритм, генерируемый биологическими часами супрахиазматического ядра, редко имеет период, в точности соответствующий 24 часам; чаще имеет место небольшое удлинение этого периода. В связи с этим существует совокупность физиологических механизмов, обеспечивающих синхронизацию циркадианного осциллятора супрахиазматического ядра с внешним геофизическим суточным ритмом. Главным среди них является фотический механизм настройки циркадианных часов, в котором в качестве времязадателя (синхронизирующего сигнала) используются сигналы, поступающие в супрахиазматическое ядро по ретиногипоталамическому пути от фоточув-ствительных ганглиозных клеток сетчатки [5]. Кроме этого, имеется комплекс нефотических механизмов синхронизации, среди которых важную роль играет физическая активность. В исследованиях на грызунах было показано, что локомоторная активность способна вызывать фазовые сдвиги циркадианного ритма как в условиях постоянной темноты (в отсутствие фотической синхронизации) [28], так и при обычном режиме суточного освещения [28, 31]. Установлено, что уровень физической активности грызунов коррелирует с периодом циркадианного ритма осциллятора супрахи-азматического ядра [32]. Инъекция ирисина в третий желудочек мозга вызывала рост двигательной активности и уменьшение продолжительности суточного периода отдыха у крыс [14]. Предполагается, что сигнальной молекулой, проникающей через гематоэнцефалический барьер и передающей в супрахиазмати-ческое ядро информацию о режиме и интенсивности физической активности и, таким образом, обеспечивающей связь между скелетными мышцами и циркадианной системой, является миокин ирисин [6]. Такое предположение хорошо вписывается в концепцию о настройке циркадианных часов в соответствии с уровнем физической активности, а также с представлением о непосредственном участии ирисина в механизме синхронизации супра-хиазматического ядра [6, 28].
Исследование механизмов центральной активности ирисина существенно затруднено в связи с тем, что до сих пор не идентифицированы его рецепторы в ЦНС. Результаты исследований на остеоцитах и адипоцитах указывают на то, что рецептором ирисина является интегрин αVβ5 [7, 15]. Такое предположение подтверждается результатами работы, в которой показано, что нарушенная функция кишечного эпителиального барьера при ишемии может быть нормализована ириcином за счет его связывания с интегри-ном αVβ5 [17]. Вместе с тем возможная роль интегрина αVβ5 в качестве специфического рецептора ирисина в ЦНС до сих пор не доказана. В отличие от этого, идентифицированы внутриклеточные сигнальные каскады, участвующие в передаче сигнала ирисина в нейронах. Основными сигнальными путями являются MAPK/ERK, PI3/AKT, cAMP/PKA/CREB и STST3/Snail [21].
Есть основания предполагать, что активность ирисина на уровне супрахиазматическо-го ядра может быть в определенной степени обусловлена его способностью стимулировать экспрессию мозгового нейротрофического фактора BDNF. В ядрах гипоталамуса, включая супрахиазматическое ядро, обнаружен высокий уровень экспрессии BDNF и его главного специфического рецептора TrkB [8]. Считается, что BDNF обладает способностью облегчать синаптическую передачу в глутама-тергическом синапсе с окончаний ретиногипоталамического пути на нейроны супрахиаз-матического ядра, изменяя кинетику активации NMDA рецептора и способствуя слиянию везикул, содержащих глутамат, с пресинапти-ческой мембраной [6]. При этом пик экспрессии BDNF приходится на субъективную ночь. Это предполагает, что в дневное время концентрация BDNF недостаточна для регуляции высвобождения глутамата и для передачи светового сигнала через синапс; однако повышение уровня BDNF в ночное время должно быть достаточным, чтобы опосредовать инду- цированную светом активацию супрахиазма-тического ядра через ретиногипоталамический тракт. Неудивительно, что экзогенный BDNF, введенный непосредственно в супра-хиазматическое ядро, способен вызвать фазовое опережение циркадианного ритма в ответ на световой стимул лишь в субъективное дневное время суток, когда уровни эндогенного BDNF низки, а биологические часы нечувствительны к свету [6]. Важно заметить, что изменений в одной лишь системе BDNF/TrkB оказалось достаточно, чтобы произвести фазовый сдвиг в циркадианном ритме активности нейронов супрахиазматического ядра in vitro. Сделан вывод о том, что BDNF играет ключевую роль в фотической настройке циркадианных часов супрахиазматического ядра, опосредуя фазовые сдвиги ритма.
Заключение. Миокин ирисин, выделяющийся при сокращениях скелетных мышц, играет важную роль в регуляции функций мозга. Ирисин, являющийся сигнальной молекулой в рамках функциональной оси «мышцы – мозг», опосредует благотворное влияние физической активности на функции мозга в норме и при патологии, что выражается в улучшении когнитивных функций, психического состояния, синаптической пластичности и памяти, замедлении развития нейродегенера-тивных заболеваний и нейропротекторном действии. На уровне главных циркадианных часов супрахиазматического ядра ирисин участвует в механизмах их синхронизации в соответствии с режимом и интенсивностью физической активности. Эффекты ирисина на уровне супрахиазматического ядра в определенной степени связаны с его способностью стимулировать продукцию BDNF, играющего ключевую роль в фотической настройке циркадианных часов. Клеточные рецепторы ири-сина в ЦНС до сих пор не идентифицированы. Решение этой задачи будет способствовать значительному прогрессу в понимании многих ключевых аспектов функциональной активности ирисина.
Список литературы Миокин ирисин - молекулярный сигнал, опосредующий благотворное влияние физической активности на функции мозга и циркадианную систему (обзор)
- Арушанян, Э.Б., Попов А.В. Современные представления о роли супрахиазматических ядер гипоталамуса в организации суточного периодизма физиологических функций // Успехи физ. наук. 2011. Т. 42, № 4. С. 39–58. [Arushanian E.B., Popov A.V. [Recent Data About the Role of Hypothalamic Suprachiasmatic Nucleus in Circadian Organization of Physiological Functions]. Uspehi fiziologicheskih nauk [Progress in Physiological Science], 2011, vol. 42, no. 4, pp. 39–58. (in Russ.)]
- Радугин Ф.М., Тимкина Н.В., Каронова Т.Л. Метаболические свойства ирисина в норме и при сахарном диабете // Ожирение и метаболизм. 2022. Т. 19, № 3. С. 332–339. [Radugin F.M., Timkina N.V., Karonova T.L. [Metabolic Properties of Irisin in Health and in Diabetes Mellitus]. Ozhirenie i metabolizm [Obesity and Metabolism], 2022, vol. 19, no. 3, pp. 332–339. (in Russ.)] DOI: 10.14341/omet12899
- Smith P.J., Blumenthal J.A., Hoffman B.M. et al. Aerobic Exercise and Neurocognitive Performance: A Meta-Analytic Review of Randomized Controlled Trials. Psychosomatic Medicine, 2010, vol. 72, pp. 239–252. DOI: 10.1097/PSY.0b013e3181d14633
- Bostrom P., Wu J., Jedrychowski M.P. et al. A PGC1α-Dependent Myokine that Drives Browning of White Fat and Thermogenesis. Nature, 2012, vol. 481, pp. 463–468. DOI: 10.1038/nature10777
- Ashton A., Foster R.G., Jagannath A. Photic Entrainment of the Circadian System. International Journal of Molecular Sciences, 2022, vol. 23, art. 729. DOI: 10.3390/ijms23020729
- Zsuga J., More C.E., Erdei T. et al. Blind Spot for Sedentarism: Redefining the Diseasome of Physical Inactivity in View of Circadian System and the Irisin/BDNF Axis. Frontiers in Neurology, 2018, vol. 9, art. 818. DOI: 10.3389/fneur.2018.00818
- Oguri Y., Shinoda K., Kim H. et al. CD81 Controls Beige Fat Progenitor Cell Growth and Energy Balance via FAK Signaling. Cell, 2020, vol. 182, pp. 563–577. DOI: 10.1016/j.cell.2020.06.021
- Bilu C., Frolinger-Ashkenazi T., Einat H. et al. Effects of Photoperiod and Diet on BDNF Daily Rhythms in Diurnal Sand Rats. Behavioural Brain Research, 2022, vol. 418, art. 113666. DOI: 10.1016/j.bbr.2021.113666
- Islam M.R., Valaris S., Young M.F. et al. Exercise Hormone Irisin is a Critical Regulator of Cognitive Function. Nature Metabolism, 2021, vol. 3, pp. 1058–1070. DOI: 10.1038/s42255-021-00438-z
- Lourenco M.V., Frozza R.L., de Freitas G.B. et al. Exercise-Linked FNDC5/Irisin Rescues Synaptic Plasticity and Memory Defects in Alzheimer’s Models. Nature Medicine, 2019, vol. 25, pp. 165–175. DOI: 10.1038/s41591-018-0275-4
- Waseem R., Shamsi A., Mohammad T. et al. FNDC5/Irisin: Physiology and Pathophysiology. Molecules, 2022, vol. 27, art. 1118. DOI: 10.3390/molecules27031118
- Hastings M.H., Brancaccio M., Maywood E.S. Circadian Pacemaking in Cells and Circuits of the Suprachiasmatic Nucleus. Journal of Neuroendocrinology, 2014, vol. 26, pp. 2–10. DOI: 10.1111/jne.12125
- Hastings M.H., Maywood E.S., Brancaccio M. Generation of Circadian Rhythms in the Suprachiasmatic Nucleus. Nature Reviews Neuroscience, 2018, vol. 19, pp. 453–469. DOI: 10.1038/s41583-018-0026-z
- Zhang W., Chang L., Zhang C. et al. Irisin: a Myokine with Locomotor Activity. Neuroscience Letters, 2015, vol. 595, pp. 7–11. DOI: 10.1016/j.neulet.2015.03.069
- Estell E.G., Le P.T., Vegting Y. et al. Irisin Directly Stimulates Osteoclastogenesis and Bone Resorption In Vitro and In Vivo. eLife, 2020, vol. 9, art. e58172. DOI: 10.7554/eLife.58172
- Qiao X., Nie Y., Ma Y. et al. Irisin Promotes Osteoblast Proliferation and Differentiation via Activating the MAP Kinase Signaling Pathways. Scientific Reports, 2016, vol. 6, art. 18732. DOI: 10.1038/srep18732
- Bi J., Zhang J., Ren Y. et al. Irisin Reverses Intestinal Epithelial Barrier Dysfunction During Intestinal Injury via Binding to the Integrin αVβ5 Receptor. Journal of Cellular and Molecular Medicine, 2020, vol. 24, pp. 996–1009. DOI: 10.1111/jcmm.14811
- Zhang Y., Li R., Meng Y. et al. Irisin Stimulates Browning of White Adipocytes Through Mitogen-Activated Protein Kinase p38 MAP Kinase and ERK MAP Kinase Signaling. Diabetes, 2014, vol. 63, pp. 514–525. DOI: 10.2337/db13-1106
- Jodeiri Farshbaf M., Alvina K. Multiple Roles in Neuroprotection for the Exercise Derived Myokine Irisin. Frontiers in Aging Neuroscience, 2021, vol. 13, art. 649929. DOI: 10.3389/fnagi.2021.649929
- Mendoza G., Merchant H. Motor System Evolution and the Emergence of High Cognitive Functions. Progress in Neurobiology, 2014, vol. 122, pp. 73–93. DOI: 10.1016/j.pneurobio.2014.09.001
- Rabiee F., Lachinani L., Ghaedi S. et al. New Insights into the Cellular Activities of Fndc5/Irisin and its Signaling Pathways. Cell & Bioscience, 2020, vol. 10, art. 51. DOI: 10.1186/s13578-020-00413-3
- Park H., Poo M.M. Neuroprophin Regulation of Neural Circuit Development and Function. Nature Review Neurocsience, 2013, vol. 14, pp. 7–23. DOI: 10.1038/nrn3379
- Pascoe M.C., Parker A.G. Physical Activity and Exercise as a Universal Depression Prevention in Young People: A Narrative Review. Early Intervention in Psychiatry, 2019, vol. 13, pp. 733–739. DOI: 10.1111/eip.12737
- Santos-Lozano A., Pareja-Galeano H., Sanchis-Gomar F. et al. Physical Activity and Alzheimer Disease: A Protective Association. Mayo Clinic Proceedings, 2016, vol. 91, pp. 999–1020. DOI: 10.1016/j.mayocp.2016.04.024
- Maak S., Norheim F., Drevon C.A. et al. Progress and Challenges in the Biology of FNDC5 and Irisin. Endocrine Reviews, 2021, vol. 42, pp. 436–456. DOI: 10.1210/endrev/bnab003
- Lu Y., Bu F.-Q., Wang F. et al. Recent Advances on the Molecular Mechanisms of Exercise‑Induced Improvements of Cognitive Dysfunction. Translational Neurodegeneration, 2023, vol. 12, art. 9. DOI: 10.1186/s40035-023-00341-5
- Schulkin J. Evolutionary Basis of Human Running and its Impact on Neural Function. Frontiers in Systems Neuroscience, 2016, vol. 10, art. 59. DOI: 10.3389/fnsys.2016.00059
- Tahara Y., Aoyama S., Shibata S. The Mammalian Circadian Clock and its Entrainment by Stress and Exercise. Journal of Physiological Sciences, 2017, vol. 67, pp. 531–534. DOI: 10.1007/ s12576-016-0450-7
- Burtscher J., Millet G.P., Place N. et al. The Muscle-Brain Axis and Neurodegenerative Diseases: The Key Role of Mitochondria in Exercise-Induced Neuroprotection. International Journal of Molecular Sciences, 2021, vol. 22, art. 6479. DOI: 10.3390/ijms22126479
- Li D.J., Li Y.H., Yuan H.B. et al. The Novel Exercise-Induced Hormone Irisin Protects Against Neuronal Injury via Activation of the Akt and ERK1/2 Signaling Pathways and Contributes to the Neuroprotection of Physical Exercise in Cerebral Ischemia. Metabolism, 2017, vol. 68, pp. 31–42. DOI: 10.1016/j.metabol.2016.12.003
- Schroeder A.M., Truong D., Loh D.H. et al. Voluntary Scheduled Exercise Alters Diurnal Rhythms of Behaviour, Physiology and Gene Expression in Wild-Type and Vasoactive Intestinal Peptide-Deficient Mice. Journal of Physiology, 2012, vol. 590, pp. 6213–6226. DOI: 10.1113/jphysiol.2012.233676
- Weinert D., Schottner K. An Inbred Lineage of Djungarian Hamsters with a Strongly Attenuated Ability to Synchronize. Chronobiology Interbational, 2007, vol. 24, pp. 1065–1079. DOI: 10.1080/07420520701791588
- Wrann C.D. FNDC5/Irisin – Their Role in the Nervous System and as a Mediator for Beneficial Effects of Exercise on the Brain. Brain Plasticity, 2015, vol. 1, pp. 55–61. DOI: 10.3233/BPL-150019
- Wu J., Spiegelman B.M. Irisin ERKs the Fat. Diabetes, 2014, vol. 63, pp. 381–383. DOI: 10.2337/db13-1586
- Zhang J., Zhang W. Can Irisin Be a Linker Between Physical Activity and Brain Function? BioMolecular Concepts, 2016, vol. 7, pp. 253–258. DOI: 10.1515/bmc-2016-0012