Молекулярно-генетическая идентификация популяций Pinus sylvestrys L. на востоке Русской равнины на основании полиморфизма ISSR-маркеров
Автор: Пришнивская Я.В., Красильников В.П., Боронникова С.В.
Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio
Рубрика: Генетика
Статья в выпуске: 2, 2016 года.
Бесплатный доступ
Проведены молекулярно-генетический анализ и идентификация четырех популяций Pinus sylvestis L., расположенных в Республике Коми и в Кировской обл., с использованием ISSR-метода анализа полиморфизма ДНК. У четырех изученных популяций P. sylvestris выявлены 117 ISSR-маркеров; установлена высокая доля полиморфных локусов (Р95 =0.949). Один ISSR-праймер инициировал у P. sylvestris синтез в среднем 16.7 ISSR-маркеров. В изученных популяциях выявлено 16 редких ISSR-маркеров. Выявлены идентификационные мономорфные видовые и полиморфные ISSR-маркеры, а также их сочетания для молекулярно-генетической идентификации изученных популяций. Составлены молекулярно-генетические формулы и штрихкоды четырех изученных популяций. Полученные данные могут быть использованы для идентификации популяций и древесины P. sylvestris в изученных регионах.
Полиморфизм днк, issr-маркеры, молекулярно-генетическая идентификация
Короткий адрес: https://sciup.org/147204766
IDR: 147204766
Текст научной статьи Молекулярно-генетическая идентификация популяций Pinus sylvestrys L. на востоке Русской равнины на основании полиморфизма ISSR-маркеров
Сохранение биологического разнообразия лесов как основы стабильности экосистем является важной проблемой современности. По разным оценкам площади лесов ежегодно сокращаются на 7-9 млн га. Известно, что за счёт сокращения эффек тивной численности особей в популяциях древесных растений вследствие проведения сплошнолесосечных рубок, гибели насаждений в результате пожаров, болезней, ветровала, загрязнения окружающей среды наблюдается неуклонное снижение генетического разнообразия лесов [Geburek, Turok, 2005]. Поколения леса, возникшие в результате ес-
тественного или искусственного возобновления от ограниченного количества особей, будут генетически менее разнообразными, а, следовательно, исходя из наличия взаимосвязи уровня генетической изменчивости, с одной стороны, и интенсивности роста и гомеостазом - с другой [Левонтин, 1978; Грант, 1984], и менее продуктивными, менее устойчивыми к экологическим факторам.
Вырубка леса, в особенности несанкционированная, ликвидируя часть генотипов, неминуемо ведет к генетическому обеднению популяций и уменьшению генетического разнообразия [Ветчин-никова, Титов, Кузнецова, 2013]. Согласно данным Министерства природных ресурсов и экологии РФ, ущерб от незаконных рубок в 2014 г. составил 14 млрд руб. [Материалы ..., 2012]. Для сокращения количества несанкционированных рубок необходимы точные сведения о популяции, в которой произведена заготовка древесины. Существуют разнообразные технологии, направленные на идентификацию места происхождения древесины после ее вырубки, например, методы дендрохронологии. Однако этот подход имеет ограниченное применение [Основные ..., 2013]. В качестве альтернативы могут использоваться методы, основанные на молекулярно-генетической идентификации. Известно, что генетический контроль является наиболее надежным способом идентификации популяций и определения географического происхождения древесины [Исаев, Коровин, 2009]. В связи с этим молекулярно-генетическая идентификация популяций хвойных видов растений является весьма актуальной.
Материал и методы
Молекулярно-генетическая идентификация проведена у четырех популяций Р. sylvestris, которые расположены на востоке Русской равнины: Psi - около пос. Мордино Республики Коми, Ps2 -около пос. Визинга Республики Коми, Ps3 - из Шабалинского лесничества Кировской обл., Ps4 -из Ежихинского лесничества Кировской обл. Для проведения исследований материал собирался в каждой популяции индивидуально с 46 деревьев, расположенных на расстоянии не менее 100 м друг от друга. Молекулярно-генетический анализ и выявление идентификационных молекулярных маркеров проводилось по результатам ПЦР с пробами ДНК, выделенными как из хвои, так и из древесины.
Для молекулярно-генетического анализа Р. sylvestris был избран ISSR (Inter Simple Sequence Нереа1$)-метод [Zietkiewicz, Rafalski, Labuda, 1994]. Метод основан на использовании полимеразной цепной реакции (ПЦР) с одним или несколькими праймерами длиной 15-24 нуклеотида, состоящих из тандемных коротких 2-4 нуклео тидных повторов и одного селективного нуклеотида на 3'-конце праймера [Боронникова, Календарь, 2010]. Концентрацию ДНК определяли с помощью спектрофотометра SmartSpecTM Plus Nano Drop («BioRad», USA). Праймеры для ПЦР синтезированы в ЗАО «Синтол» (Москва). Тотальная ДНК выделена из древесины и хвои 184 деревьев с использованием модифицированной нами методики выделения ДНК СО. Роджерса и Э. Дж. Бендича [Rogers, Bendich, 1985] в которой в качестве сорбента использовался PVPP, то есть поливинилполипирролидон [Нечаева, 2011]. При выделении ДНК брали навеску 100 мг. Для ПЦР-анализа использовали пробы с концентрацией 5 нг/мкл. Амплификацию проводили в амплификаторе GeneAmp PCR System 9700 («Applied Biosystems», USA) по типичной для ISSR-метода программе [Боронникова, 2009]. Температура отжига в зависимости от G/C-состава праймеров варьировала от 46 до 64°С. Для проверки достоверности полученных ДНК-спектров опыт повторяли не менее трех раз. В качестве отрицательного (К-) контроля в реакционную смесь добавляли вместо ДНК 5 мкл деионизированной воды. Продукты амплификации разделяли путем электрофореза в 1.7%-ном агарозном геле в lx ТВЕ буфере. Гели окрашивали бромистым этидием и фотографировали в проходящем ультрафиолетовом свете в системе Gel-Doc XR («Bio-Rad», USA). Для определения длины фрагментов ДНК использовали маркер молекулярной массы (100 bp +1.5 + 3 Kb DNA Ladder; «ООО-СибЭнзим-М», Москва). Определение длин фрагментов проводилось с использованием программы Quantity One в системе гель-документации Gel-Doc XR («Bio-Rad», USA).
Результаты и их обсуждение
При молекулярно-генетическом анализе Р. sylvestris выявлено 117 ISSR-маркеров (табл. 1), из которых 111 были полиморфными (Ру- = 0.949). Число ISSR-маркеров Р. sylvestris варьировало в зависимости от праймера от 13 (праймер М27) до 21 (праймеры ХЮ и CR215), а их размеры - от 150 до 1400 пн. В среднем один ISSR-праймер инициировал у Р. sylvestris синтез 16.7 ISSR-маркеров. Число полиморфных маркеров в общей выборке Р. sylvestris варьировало от 19 до 28, а доля полиморфных локусов в зависимости от ISSR-праймера колебалась от 0.880 до 1.000. Для характеристики генетической структуры популяций важны редкие, то есть встречающиеся с частотой менее 5%, маркеры. В изученных популяциях Р. sylvestris выявлено 16 редких ISSR-маркеров, из которых в популяции Psi выявлено 7, в популяции Ps2 - 3, в популяции Ps3 - 2, а в популяции Ps4 - 4 уникальных ISSR-маркеров.
Для молекулярно-генетической идентификации отобраны наиболее информативные ISSR-праймеры, с помощью которых выявлены родовые (надвидовые), видовые и полиморфные ISSR-маркеры и про веден отбор идентификационных молекулярных маркеров, а также определены их сочетания для идентификации популяций (табл. 2).
Таблица 1
Характеристика ISSR-маркеров в четырех популяций Р. sylvestris
ISSR-праймеры |
Нуклеотидная последовательность (5'^ 3') |
Длина фрагментов, пн |
Число полиморфных ISSR-маркеров в популяциях |
|||||
Psi |
Ps2 |
Ps3 |
Ps4 |
на общую выборку |
||||
всего |
полиморфных |
|||||||
ISSR-1 |
(АС)8Т |
220-1115 |
И (0.733) |
12 (0.857) |
9 (0.563) |
8 (0.533) |
20 |
20 (1.000) |
CR-212 |
(CT)8TG |
250 1400 |
12 (0.706) |
12 (0.750) |
6 (0.462) |
8 (0.500) |
25 |
22 (0.880) |
CR-215 |
(CA)6GT |
150 1280 |
18 (0.857) |
18 (0.900) |
8 (0.533) |
8 (0.533) |
22 |
22 (1.000) |
М27 |
(GA)8C |
1501020 |
И (0.647) |
9 (0.642) |
7(0.438) |
6 (0.400) |
21 |
19 (0.905) |
ХЮ |
(AGC)6C |
200 1400 |
13 (0.722) |
21 (0.913) |
9 (0.529) |
10 (0.588) |
29 |
28 (0.966) |
Всего ISSR-маркеров (в скобках - их частота) |
65 (0.739) |
72 (0.827) |
39 (0.506) |
40 (0.513) |
117 |
111 (0.949) |
Таблица 2
Характеристика идентификационных ISSR-маркеров популяций Р. sylvestris
Обозначение праймера |
Нуклеотидная последовательность (5'^ 3') |
Размеры ISSR-маркеров, пн |
ISSR-маркеры, избранные для паспортизации |
Мономорфные ISSR-маркеры
CR-212 |
(CT)8TG |
1400-250 |
PSv670CR212 PSv450CR212 PSv390CR212 |
М27 |
(GA)8C |
1020-150 |
PSv500M27 PSv460M27 |
ХЮ |
(AGC)6C |
1400-200 |
PSv440X10 |
Полиморфные ISSR-маркеры
ISSR-1 |
(AC)8T |
1115-220 |
Pslp930ISl |
CR-212 |
(CT)8TG |
1400-250 |
Pslp260CR212 Ps4p290CR212 Ps4p250CR212 |
CR-215 |
(CA)6GT |
1280-150 |
Ps3pl400CR215 Ps3pl200CR215 |
M27 |
(GA)8C |
1020-150 |
Pslp210M27Pslpl80M27 Pslpl70M27 Ps2p350M27 |
X10 |
(AGC)6C |
1400-200 |
Ps3p410X10 Ps2p250X10 Ps2p200X10 Ps4pl650X10 Ps4p900X10 |
Примечание. PSv - ISSR-маркеры, характерные для всех популяций; Pslp, Ps2p, Ps3p и Ps4p - полиморфные ISSR-маркеры, характерные для отдельных популяций.
Молекулярные маркеры, избранные для идентификации четырех популяций Р. sylvestris, представлены в виде молекулярно-генетической формулы, при составлении которой использовались так называемые «видовые» и «полиморфные» ISSR-маркеры. «Родовые» ISSR-маркеры использованы не были, так как для их обнаружения необходимо исследовать как минимум еще один вид рода Pinus. Мономорфные ISSR-маркеры, характерные для вида, обозначены как PSv а полиморфные как Pslp - для популяции Psi, Ps2p - для популяции Ps2, Ps3p - для популяции Ps3, Ps4p - для популяции Ps4. Основная характеристика молекулярного маркера (его длина) указана большими буквами после указания типа маркера -Pslp260CR2i2. В молекулярно-генетической форму ле приведены тип и номер праймера нижним индексом. Так, молекулярный маркер Ps3pl200CR2i5 выявлен ISSR-методом с использованием праймера CR215. В случае, когда праймер возможно записать в виде короткой формулы как при ISSR-анализе, запись молекулярного маркера можно представить в следующем виде Ps3pl200(CA)6GT-Данная форма записи молекулярного маркера является самой информативной. Таким образом, в предлагаемой записи молекулярно-генетической формулы указан вид растения, тип амплифициро-ванного ISSR-маркера, его размер и дана характеристика исследуемой части генома посредством указания метода анализа полиморфизма ДНК и номера или последовательности праймера.
Для изученных популяций Р. sylvestris установлены шесть видовых ISSR-маркеров, выявленные у всех изученных популяций: PSv670Cr212 PSv500M2 PSv460M27 PSv450Cr212 PSv44Oxio PSv390cr212- На основе ISSR-спектров удалось установить идентификационные ISSR-маркеры или их сочетания для популяций, с достаточно высокой частотой встречаемости в популяции. Для популяции Psi идентификационными маркерами являются Pslp93OISi
Pslp260CR212 Pslp210M27 PslplS0M27 Pslpl70M27; для популяции Ps2 - Ps2p350M27 Ps2p25OXio Ps2p2OOXio; Для Ps3 - Ps3pl400CR2i5 Ps3pl200CR2i5 Ps3p41OXio; Для Ps4 - Ps4pl65OXio Ps4p9OOXio Ps4p290CR2i2 Ps4p250CR2i2- На основании полученных данных были составлены молекулярногенетические формулы для изученных популяций Р. sylvestris (табл. 3).
Таблица 3
Молекулярно-генетические формулы четырех популяций Р. sylvestris
Популяции |
Тип ISSR-маркера |
ISSR-маркеры, избранные для паспортизации |
Psi |
vid |
PSv670CR212 PSv500M27 PSv460M27 PSv450CR212 PSv440X10 PSv390CR212 |
polimorph |
Pslp930ISl Pslp260CR212 Pslp210M27 Pslpl80M27 Pslpl70M27 |
|
Ps2 |
vid |
PSv670CR212 PSv500M27 PSv460M27 PSv450CR212 PSv440X10 PSv390CR212 |
polimorph |
Ps2p350M27 Ps2p250X10 Ps2p200X10 |
|
Ps3 |
vid |
PSv670CR212 PSv500M27 PSv460M27 PSv450CR212 PSv440X10 PSv390CR212 |
polimorph |
Ps3pl400CR215 Ps3pl200CR215 Ps3p410X10 |
|
Ps4 |
vid |
PSv670CR212 PSv500M27 PSv460M27 PSv450CR212 PSv440X10 PSv390CR212 |
polimorph |
Ps4pl650X10 Ps4p900X10 Ps4p290CR212 Ps4p250CR212 |
Примечание. PSv - ISSR-маркеры, характерные для всех популяций; Pslp, Ps2p, Ps3p и Ps4p - полиморфные ISSR-маркеры, характерные для отдельной популяции; vid - видовые ISSR-маркеры; polymorph - полиморфные ISSR-маркеры.
На основании полученных молекулярногенетических формул рекомендуется составлять штрихкоды [Боронникова, 2013]. Как молекулярно-генетическая формула, так и штрихкод позволят идентифицировать принадлежность особей не только к роду и виду, но и к определенной популяции.
Родовые маркеры предлагается обозначить толстой линией, видовые - линией средней толщины, а полиморфные маркеры - тонкой линией. Для штрихкода предлагается использовать от 9 до 12 штрихов. ISSR-маркеры в штрихкоде располагаются в зависимости от их длины от большего к меньшему (рисунок).
Маркер _____ молекулярной массы, пн
700 ________________________
№ ISSR- |
Обозначение |
|
Штрихкод |
||
маркера |
маркера |
|
— |
1 |
Ps3pl400CR215 |
— |
2 |
Ps3pl200CR215 |
3 |
1jSv67UcR212 |
|
4 |
PSv500m2? |
|
5 |
Р^ДбОрр'т |
|
6 |
Р^Д^Ог’пою |
|
7 |
РКуДДОхпп |
|
— |
8 |
Ps3p4 lOxio |
9 |
PSv390cr212 |
Штрихкод популяции Ps3, расположенной в Шабалинском лесничестве Кировской обл.
Таким образом, в основу методики молекулярно-генетической идентификации популяций заложен молекулярный анализ высоко полиморфных областей геномов изучаемых видов. Молекулярногенетическая идентификация популяций включает в себя молекулярно-генетический анализ на основании полиморфизма ISSR-маркеров, выявление идентификационных маркеров, редких и уникаль ных аллелей, составление для каждой популяции молекулярно-генетической формулы и штрихкода.
Заключение
У четырех изученных популяций Р. sylvestris выявлено 117 ISSR-маркеров. Установлено, что доля полиморфных локусов у этих популяций высока (Р95 = 0.949), поэтому они могут быть исполь- зованы для идентификации на популяционном уровне. Выявлены идентификационные видовые для Р. sylvestris и полиморфные ISSR-маркеры, а также их сочетания для молекулярно-генетической идентификации изученных популяций. Составлены молекулярно-генетические формулы и штрих-коды четырех изученных популяций Р. sylvestris. Полученные данные могут быть использованы для идентификации популяций и древесины Р. sylvestris в изученных регионах.
Работа выполнена при финансовой поддержке программы «Участник молодежного научноинновационного конкурса» (УМНИК) Фонда содействия развития малых форм предприятий в научно-технической сфере» 2016-2018 гг., договор № 9000ГУ/2015 от 22.12.2015.
Список литературы Молекулярно-генетическая идентификация популяций Pinus sylvestrys L. на востоке Русской равнины на основании полиморфизма ISSR-маркеров
- Боронникова С.В. Исследование генетической изменчивости популяций редкого вида Урала Adenophora lilifolia (L.) DC. на основании анализа полиморфизма ISSR-маркеров//Генетика. 2009. Т. 45, № 5. С. 652-655
- Боронникова С.В. Молекулярно-генетический анализ и оценка состояния генофондов ресурсных видов растений Пермского края: монография. Пермь, 2013. 223 с
- Боронникова С.В., Календарь Р.Н. Использование IRAP-метода для анализа генетической изменчивости популяций ресурсных и редких видов растений//Генетика. 2010. Т. 46, № 1 С. 44-50
- Ветчинникова Л.В., Титов А.Ф., Кузнецова Т.Ю. Карельская береза: биологические особенности, динамика ресурсов и воспроизводство. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН, 2013. 312 с
- Грант В. Видообразование у растений. М.: Мир, 1984. 528 с
- Исаев А.С., Коровин Г.Н. Актуальные проблемы национальной лесной политики/Центр по проблемам экологии и продуктивности лесов Российской академии наук. М., 2009. 108 с
- Левонтин Р.С. Генетические основы эволюции. М.: Мир, 1978. 351 с
- Материалы к заседанию "круглого стола" на тему «Законодательное обеспечение основных направлений развития лесного хозяйства на базе инновационньгх научно-технических достижений». 2012. URL: http://council.gov.ru/media/files/41d4935c0f740f5 e1a2b.pdf (дата обращения: 03.04.2016)
- Нечаева Ю.С. Оптимизация методики выделения ДНК некоторых хвойных видов растений Пермского края//Материалы международной конференции «Синтез знаний в естественных науках. Рудник будущего: проекты, технологии, оборудование». Пермь, 2011. С. 278-282.
- Основные результаты работы Министерства природных ресурсов и экологии Российской Федерации за 2013 г. URL: http://government.ru/dep_news/11859/(дата обращения: 02.04.2016)
- Geburek Т., Turok J. Conservation and sustainable management of forest genetic resources in Europe -an introduction//Conservation and Management of Forest Genetic Resources in Europe. Arbora Publishers, Zvolen, 2005. P. 3-8
- Rogers S.O., Bendich A.J. Extraction of DNA from milligram amounts of fresh, herbarium and mummified plant tissues//Plant Molecular Biology. 1985. Vol. l, № 19. P. 69-76
- Zietkiewicz E. Rafalski A., Labuda D. Genome fingerprinting by simple sequence repeat (SSR)-anchored polymerase chain reaction amplification//Genomics. 1994. Vol. 20. P. 176-183