Морские водоросли: потенциал использования в рационах сельскохозяйственных животных (обзор)

Автор: Кочиш И.И., Зимин Е.Е., Никонов И.Н.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 6 т.58, 2023 года.

Бесплатный доступ

В настоящее время в комбикормовой промышленности, наряду с внедрением энергосберегающих прогрессивных технологий, широко применяют нетрадиционные виды сырья и вторичные ресурсы, получаемые при производстве пищевых продуктов. Переработка и использование нетрадиционных ресурсов на пищевых предприятиях значительно повышает их рентабельность и позволяет снизить затраты на зерно при производстве комбикормов (P. Burtin, 2003). Один из наиболее эффективных способов организации полноценного кормления животных, укрепления их здоровья, улучшения производственных функций и повышения продуктивности - использование природных кормовых ресурсов. В настоящее время исследования биологической активности флоротанинов водорослей по-прежнему актуальны. Разнообразие биологических свойств определяет их практическое применение в различных областях, в том числе в производстве кормовых добавок для сельскохозяйственных животных (S.B. Wang с соавт., 2013). Немаловажная проблема в животноводстве - бесконтрольное применение антибактериальных препаратов, которое может привести к переносу антибиотикорезистентности от животного к человеку (И.И. Кочиш с соавт., 2019). К препаратам, которые служат альтернативой кормовым антибиотикам, относят пробиотики, пребиотики, симбиотики, органические кислоты. Такие добавки по эффективности не уступают антибиотикам, но негативное влияние последних при этом исключается (И.А. Егоров с соавт., 2019). Водоросли обладают не только пребиотическими свойствами из-за содержащихся олиго- и полисахаридов, но и антимикробной, иммуномодулирующей, антиоксидантной и противовоспалительной активностью благодаря биоактивным соединениям. В зависимости от цели применения и при соблюдении оптимальной дозировки водоросли способны положительно повлиять на онтогенез, продуктивность животных, качество получаемой продукции. По мнению многих авторов, морские водоросли могут использоваться в птицеводстве для улучшения иммунного статуса, снижения микробной нагрузки в пищеварительном тракте и улучшения качества получаемой продукции (A.M. Abudabos с соавт., 2012). Зеленые водоросли ( Entermorpha prolifera ) способствуют лучшей усвояемости питательных веществ, повышению уровня метаболизируемой энергии и яйценоскости, улучшению качества куриных яиц (увеличение массы, толщины скорлупы, изменение окраски желтка), а также снижению количества холестерина в желтке (S.B. Wang с соавт., 2013). Бурые водоросли (например, Sargassum dentifebium , Turbinaria conoides , Dictyota dentata ) в сушеном, вареном и автоклавированном виде можно включать в рацион молодняка и кур-несушек без отрицательного влияния на продуктивность и потребление корма. При этом происходят положительные изменения в окраске желтка и увеличивается содержание кальция в скорлупе. Включение бурых водорослей Sargassum sp. в рацион кур-несушек способствует снижению концентрации холестерина и триглицеридов в плазме крови и желтке при одновременном повышении содержания каротина, лютеина и зеаксантина (M.A. Al-Harthi с соавт., 2012). Красные морские водоросли ( Asparagopsis taxiformis ) в рационе животных могут положительно изменять микробиом желудочно-кишечного тракта, увеличивая разнообразие и обилие полезных бактерий (B.M. Roque с соавт., 2019). Таким образом, благодаря особому биохимическому составу морские водоросли перспективны в кормлении высокопродуктивных кроссов сельскохозяйственной птицы, свиней и крупного рогатого скота.

Еще

Водоросли, антибиотикорезистентность, микрофлора кишечника, иммунитет, пробиотики, пребиотики, кампилобактерии, полисахариды, биохимический анализ, кормовая добавка

Короткий адрес: https://sciup.org/142240673

IDR: 142240673   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2023.6.1006rus

Список литературы Морские водоросли: потенциал использования в рационах сельскохозяйственных животных (обзор)

  • Burtin P. Nutritional value of seaweeds. Electronic Journal of Environmental, Agricultural and Food Chemistry, 2003, 2(4): 498-503.
  • Godfray H.C., Beddington J.R., Crute I.R., Haddad L., Lawrence D., Muir J.F., Pretty J., Robinson S., Thomas S.M., Toulmin C. Food security: the challenge of feeding 9 billion people. Science, 2010, 327(5967): 812-818 (doi: 10.1126/science.1185383).
  • Tilman D., Balzer C., Hill J., Befort B.L. Global food demand and the sustainable intensification of agriculture. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2011, 108(50): 20260-20264 (doi: 10.1073/pnas.1116437108).
  • Makkar H.P.S., Tran G., Heuze V., Guger-Reverdin S., Lessire M., Lebas F., Ankers P. Seaweeds for livestock diets: a review. Animal Feed Science and Technology, 2016, 212: 1-17 (doi: 10.1016/j.anifeedsci.2015.09.018).
  • Слепцов В.В. Пути повышения экономической эффективности производства молока. Эпоха науки, 2017, 9: 96-101.
  • O’Sullivan L., Murphy B., McLoughlin P., Duggan P., Lawlor P.G., Hughes H., Gardiner G.E. Prebiotics from marine macroalgae for human and animal health applications. Marine Drugs, 2010, 8(7): 2038-2064 (doi: 10.3390/md8072038).
  • Коломиец С.Н., Егорова М.А., Фарзутдинов Р.Х. Совершенствование продуктивных качеств кур-несушек кросса ломан белый, путем введения в рацион кормовой добавки «Фукус Дробленый». Зоотехния, 2020, 5: 14-17.
  • Егоров И.А., Егорова Т.А., Ленкова Т.Н., Вертипрахов В.Г., Манукян В.А., Никонов И.Н., Грозина А.А., Филиппова В.А., Йылдырым Е.А., Ильина Л.А., Дубровин А.В., Лаптев Г.Ю. Замещение кормовых антибиотиков в рационах. Сообщение II. Микробиота кишечника и продуктивность мясных кур (Gallus gallus L.) на фоне фитобиотика. Сельскохозяйственная биология, 2019, 54(4): 798-809 (doi: 10.15389/agrobiology.2019.4.798rus).
  • Kim S.-K. Handbook of marine microalgae: biotechnology advances /K.A.S. Gomez, P. Gonzalez (eds.). Academic Press, UK, 2015.
  • van Krimpen M.M., Bikker P., van der Meer I.M., van der Peet-Schwering C.M.C., Vereijken J.M. Cultivation, processing and nutritional aspects for pigs and poultry of European protein sources as alternatives for imported soybean products. In: Wageningen UR Livestock Research. No. 662. Wageningen UR Livestock Research, Netherlands, 2013.
  • Кочиш И.И., Мясникова О.В., Мартынов В.В. Влияние фитобиотика Интебио на экспрессию генов продуктивности и иммунитета у кур-несушек. Мат. Межд. науч.-практ. конф. «Молекулярно-генетические технологии для анализа экспрессии генов продуктивности и устойчивости к заболеваниям животных». М., 2019, вып. 1: 93-97.
  • Буяров В.С. Червонова И.В., Ярован Н.И., Учасов Д.С., Сеин О.Б. Пробиотики и пребиотики в промышленном свиноводстве и птицеводстве: монография. Орел, 2014.
  • Дубровин А.В. Лаптев Г.Ю., Ильина А.А., Филиппова В.А., Йылдырым Е.А., Кочиш И.И., Новикова О.Б. Влияние кормовой добавки на основе эфирных масел на здоровье и продуктивность цыплят кур. Ветеринария, 2018, 12: 12-16.
  • Котарев В.И. Лядова Л.В., Моргунова В.И., Денисенко Л.И. Влияние кормовой добавки Интебио на повышение резистентности организма кур-несушек кросса Хайсекс Браун. Ветеринарный фармакологический вестник, 2019, 3(8): 85-94 (doi: 10.17238/issn2541-8203.2019.3.85).
  • Торшков А.А., Фомичев Ю.П. Применение арабиногалактана при выращивании цыплят-бройлеров. Известия Оренбургского государственного аграрного университета, 2010, 25(1): 172-175.
  • Świątkiewicz S., Arczewska-Włosek A., Józefiak D. Application of microalgae biomass in poultry nutrition. World’s Poultry Science Journal, 2016, 71(4): 663-672 (doi: 10.1017/S0043933915002457).
  • Windisch W.M., Rohrer E., Schedle K. Phytogenic feed additives to young piglets and poultry: mechanisms and application. In: Phytogenics in animal nutrition: natural concepts to optimize gut health and performance /T. Steiner (еd.). Nottingham, 2009: 19-38.
  • Garcia-Vaquero M., Rajauria G., O’Doherty J.V., Sweeney T. Polysaccharides from macroalgae: recent advances, innovative technologies and challenges in extraction and purification. Food Research International, 2017, 99(3): 1011-1020 (doi: 10.1016/j.foodres.2016.11.016).
  • Renuka N., Prasanna R., Sood A., Ahluwalia A.S., Bansal R., Babu S., Singh R., Shivay Y.S., Nain L. Exploring the efficacy of wastewater-grown microalgal biomass as a biofertilizer for wheat. Environmental Science and Pollution research International, 2015, 23(7): 6608-6620 (doi: 10.1007/s11356-015-5884-6).
  • Saha D., Bhattacharya S. Hydrocolloids as thickening and gelling agents in food: a critical review. Journal of Food Science and Technology, 2010, 47(6): 587-597 (doi: 10.1007/s13197-010-0162-6).
  • Schneider T., Ehrig K., Liewert I., Alban S. Interference with the CXCL12/CXCR4 axis as potential antitumor strategy: superiority of a sulfated galactofucan from the brown alga Saccharina latissima and fucoidan over heparins. Glycobiology, 2015, 25(8): 812-24 (doi: 10.1093/glycob/cwv022).
  • Audibert L., Fauchon M., Blanc N., Hauchard D., Gall E.A. Phenolic compounds in the brown seaweed Ascophyllum nodosum: distribution and radical-scavenging activities. Phytochemical Analysis, 2010, 21(5): 399-405 (doi: 10.1002/pca.1210).
  • Bittkau K.S., Neupane S., Alban S. Initial evaluation of six different brown algae species as source for crude bioactive fucoidans. Algal Research, 2020, 45: 101759 (doi: 10.1016/j.algal.2019.101759).
  • Devaney L., Henchion M., Regan Á. Good governance in the bioeconomy. EuroChoices, 2017, 16(2): 41-46 (doi: 10.1111/1746-692x.12141).
  • Atashrazm F., Lowenthal R.M., Woods G.M., Holloway A.F., Dickinson J.L. Fucoidan and cancer: a multifunctional molecule with anti-tumor potential. Marine Drugs, 2015, 13(4): 2327-46 (doi: 10.3390/md13042327).
  • Jr. Goh L.P., Loh S.P., Fatimah M.Y., Perumal K. Bioaccessibility of carotenoids and tocopherols in marine microalgae, Nannochloropsis sp. and Chaetoceros sp. Malaysian Journal of Nutrition, 2009, 15(1): 77-86.
  • Heffernan N., Brunton N.P., FitzGerald R.J., Smyth T.J. Profiling of the molecular weight and structural isomer abundance of macroalgae-derived phlorotannins. Marine Drugs, 2015, 13(1): 509-528 (doi: 10.3390/md13010509).
  • Heffernan N., Smyth T.J., Soler-Villa A., Fitzgerald R.J., Brunton N.P. Phenolic content and antioxidant activity of fractions obtained from selected Irish macroalgae species (Laminaria digitata, Fucus serratus, Gracilaria gracilis and Codium fragile). Journal of Applied Phycology, 2015, 27(1): 519-530 (doi: 10.1007/s10811-014-0291-9).
  • Kılınç B., Cirik S., Turan G., Tekogul H., Koru E. Seaweeds for food and industrial applications. In: Food industry /I. Muzzalupo (eds.). InTech, 2012 (doi: 10.5772/53172).
  • Liu H., Gu L. Phlorotannins from brown algae (Fucus vesiculosus) inhibited the formation of advanced glycation end products by scavenging reactive carbonyls. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2012, 60(5): 1326-34 (doi: 10.1021/jf204112f).
  • Nakamura T., Nagayama K., Uchida K., Tanaka R. Antioxidant activity of phlorotannins isolated from brown alga Eisenia bicyclis. Fisheries Science, 1996, 62(6): 923-926 (doi: 10.2331/fishsci.62.923).
  • Pozharitskaya O.N., Obluchinskaya E.D., Shikov A.N. Mechanisms of bioactivities of Fucoidan from the brown seaweed Fucus vesiculosus L. of the Barents Sea. Marine Drugs, 2020, 18(5): 275(doi: 10.3390/md18050275).
  • Ragan M.A., Jensen A. Quantitative studies on brown algal phenols. II. Seasonal variation in polyphenol content of Ascophyllum nodosum (L.) Le Jol. and Fucus vesiculosus (L.). Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 1987, 34(3): 245-258 (doi: 10.1016/S0022-0981(78)80006-9).
  • Puspita M., Deniel M., Widowati I., Radjasa O.K., Douzenel P., Marty C., Vandanjon L., Bedoux G., Bourgougnon N. Total phenolic content and biological activities of enzymatic extracts from Sargassum muticum (Yendo) Fensholt. Journal of Applied Phycology, 2017, 29(5): 2521-2537 (doi: 10.1007/s10811-017-1086-6).
  • El Gamal A.A. Biological importance of marine algae. Saudi Pharmaceutical Jorunal, 2010, 18(1): 1-25 (doi: 10.1016/j.jsps.2009.12.001).
  • Hayes M. Food proteins and bioactive peptides: new and novel sources, characterisation strategies and applications. Foods, 2018, 7(3): 38 (doi: 10.3390/foods7030038).
  • Yip Z.T., Quek R.Z.B., Huang D. Historical biogeography of the widespread macroalga Sargassum (Fucales, Phaeophyceae). J. Phycol., 2020, 56(2): 300-309 (doi: 10.1111/jpy.12945).
  • Murty U.S., Banerjee A.K. Seaweed: the wealth of oceans. In: Handbook of marine macroalgae: biotechnology and applied phycology /S.-K. Kim (ed.). Cambridge, 2012: 36-43 (doi: 10.1002/9781119977087.ch2).
  • Edwards M., Hanniffy D., Heesch S., Hernández-Kantún J., Moniz M., Queguineur B., Ratcliff J., Soler-Vila A., Wan A. Macroalgae fact-sheets /A. Soler-Vila, M. Moniz (eds.). Irish Seaweed Research Group, Ryan Institute, NUI Galway, 2012.
  • Misurcova L. Chemical composition of seaweeds. In: Handbook of marine macroalgae: biotechnology and applied phycology /S.-K. Kim (ed.). John Wiley & Sons, Ltd., 2012 (doi: 10.1002/9781119977087.ch7).
  • Corino C., Modina S.C., Giancamillo A.D., Chiapparini S., Rossi R. Seaweeds in pig nutrition. Animals, 2019, 9(12): 1126 (doi: 10.3390/ani9121126).
  • Azenha I. Cultivo e Avaliação Nutricional de Ulva sp. Comparação com Exemplares Recolhidos em Ambiente Natural. Bachelor’s Thesis Escola Superior Agrária de Coimbra. Coimbra, Portugal, 2019.
  • Evans F.D., Critchley A.T. Seaweeds for animal production use. Journal of Applied Phycology, 2013, 26(2): 891-899 (doi: 10.1007/s10811-013-0162-9).
  • Spruijt J., van der Weide R., van Krimpen M. Opportunities for microalgae as ingredient in animal diets. In: Application Centre for Renewable Resource /R. van der Weide (ed.). Wageningen UR, Netherlands, 2016.
  • Abudabos A.M. Okab A., Aljumaah R.S., Samara E.M., Abdoun K.A., Al-Haidar A.A. Nutritional value of greenseaweed (Ulva lactuca) for broiler chickens. Italian Journal of Animal Science, 2012, 12(2): 177-181 (doi: 10.4081/ijas.2013.e28).
  • Wang S.B., Shi X.P., Zhou C.F., Lin Y.T. Enteromorpha prolifera: effects on performance, carcass quality and small intestinal digestive enzyme activities of broilers. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2013, 25(6): 1332-1337.
  • Wang S.B., Jia Y.H., Wang F.H., Lin Y.T. Enteromorpha prolifera supplemental level: effects on laying performance, egg quality, immune function and microflora in feces of laying hens. Chinese Journal of Animal Nutrition, 2013, 25(6): 1346-1352.
  • Bradbury E.J. Wilkinson S.J., Cronin G.M., Walk C., Cowieson A. The effect of marine calcium source on broiler leg integrity. In: Australian poultry science symposium /E.J. Bradbury (ed.). Poultry Research Foundation, Australia, 2012, 23: 85-88.
  • Al-Harthi M.A. Sexual maturity and performance of pullets fed different preparations and concentrations of brown marine algae (Sargassum dentifebium) in pre-laying and early laying periods. Italian Journal of Animal Science, 2014, 13(1): 3102 (doi: 10.4081/ijas.2014.3102).
  • Al-Harthi M.A., El-Deek A.A. The effects of preparing methods and enzyme supplementation on the utilization of brown marine algae (Sargassum dentifebium) meal in the diet of laying hens. Italian Journal of Animal Science, 2011, 10(48): 195-203 (doi: 10.4081/ijas.2011.e48).
  • Al-Harthi M.A., El-Deek A.A. Effect of different dietary concentrations of brown marine algae (Sargassum dentifebium) prepared by different methods on plasma and yolk lipid profiles, yolk total carotene and lutein plus zeaxanthin of laying hens. Italian Journal of Animal Science, 2012, 11(4): 347-353 (doi: 10.4081/ijas.2012.e64).
  • El-Deek A.A., Al-Harthi M.A., Abdalla A.A., Elbanoby M.M. The use of brown algae meal in finisher broiler diets. Egypt Poultry Science Journal, 2011, 31(IV): 767-781.
  • Kulshreshtha G., Rathgeber B., Stratton G., Thomas N., Evans F., Critchley A., Hafting J., Prithiviraj B. Feed supplementation with red seaweeds, Chondus crispus and Sarcodiotheca gaudichaudii, affects performance, egg quality, and gut microbiota of layer hens. Poultry Science, 2014, 93(12): 2991-3001 (doi: 10.3382/ps.2014-04200).
  • Kulshreshtha G., Rathgeber B., Maclsaac J., Boulianne M., Brigitte L., Stratton G., Thomas N.A., Critchley A.T., Hafting J., Prithiviraj B. Feed supplementation with red seaweeds, Chondrus crispus and Sarcodiotheca gaudichaudii, reduce Salmonella enteritidis in laying hens. Frontiers in Microbiology, 2017, 8: 567 (doi: 10.3389/fmicb.2017.00567).
  • Ngo D.-H., Kim S.-K. Sulfated polysaccharides as bioactive agents from marine algae. International Journal of Biological Macromolecules, 2013, 62: 70-75 (doi: 10.1016/j.ijbiomac.2013.08.036).
  • Mariey Y.A., Samak H., Ibrahem M. Effect of using Spirulina platensis algae as feed additive for poultry diets. Egyptian Poultry Science Journal, 2012, 32(1): 201-215.
  • Kulshreshtha G., Borza T., Rathgeber B., Stratton G.S., Thomas N.A., Crithley A., Hafting J., Prithiviraj B. Red seaweeds Sarcodiotheca gaudichaudii and Chondrus crispus down regulate virulence factors of Salmonella enteritidis and induce immune responses in Caenorhabditis elegans. Frontiers in Microbiology, 2016, 7: 1-12 (doi: 10.3389/fmicb.2016.00421).
  • Manor M.L., Derksen T.J., Magnuson A.D., Raza F., Lei X.G. Inclusion of dietary defatted microalgae dose-dependently enriches ω-3 fatty acids in egg yolk and tissues of laying hens. The Journal of Nutrition, 2019, 149(6): 942-950 (doi: 10.1093/jn/nxz032).
  • Sweeney T., Meredith H., Vigors S., McDonnell M.J., Ryan M., Thornton K., O’Doherty J.V. Extract of laminarin and laminarin/fucoidan from the marine macroalgal species Laminaria digitate improved growth rate and intestinal structure in young chicks, but does not influence Campylobacter jejuni collonisation. Animal Feed Science and Technology, 2017, 232(4): 71-79 (doi: 10.1016/j.anifeedsci.2017.08.001).
  • Erickson P.S., Marston S.P., Gemmel M., Deming J., Cabral R.G., Murphy M.R., Marden J.I. Short communication: kelp taste preferences by dairy calves. Journal of Dairy Science, 2012, 95(2): 856-858 (doi: 10.3168/jds.2011-4826).
  • Bach S.J., Wang Y., Mcallister T.A. Effect of feeding sun-dried seaweed (Ascophyllum nodosum) on fecal shedding of Escherichia coli O157:H7 by feedlot cattle and on growth performance of lambs. Animal Feed Science and Technology, 2008, 142(1-2): 17-32 (doi: 10.1016/j.anifeedsci.2007.05.033).
  • Lopez C.C., Serio A., Rossi C., Mazzarrino G., Marchetti S., Castellani F., Grotta L., Fiorentino F.P., Paparella A., Martino G. Effect of diet supplementation with Ascophyllum nodosum on cow milk composition and microbiota. Journal of Dairy Science, 2016, 99(8): 6285-6297 (doi: 10.3168/jds.2015-10837).
  • Коновалов А.В., Флерова Е.А., Зарубин А.В., Богданова А.А. Влияние суспензии хлореллы на среднесуточный прирост живой массы молодняка ярославской породы крупного рогатого скота. Вестник АПК Верхневолжья, 2012, 1(17): 46-49.
  • Garcés C.N., Vela D., Mullo A., Cabezas V., Alvear A., Ponce C. Spirulina supplementation during the transition period by grazing dairy cattle at tropical highland conditions. Tropical Animal Health and Production, 2019, 51(2): 477-480 (doi: 10.1007/s11250-018-1691-7).
  • Петряков В.В. Изменения показателей естественной резистентности сыворотки крови коров при включении в рационы микроводоросли Spirulina platensis. Научный альманах, 2016, 6-2(19): 442-445.
  • Механикова М.В., Третьяков Е.А., Кулакова Т.С. Использование суспензии хлореллы в питании ремонтных телок черно-пестрой породы в молочный период. Молочнохозяйственный вестник, 2016, 1(21): 35-42.
  • Roque B.M., Brooke C.G., Ladau J., Polley T., Marsh L.J., Najafi N., Pandey P., Singh L., Kinley R., Salwen J.R., Eloe-Fadrosh E., Kebreab E., Hess M. Effect of the macroalgae Asparagopsis taxiformis on methane production and rumen microbiome assemblage. Animal Microbiome, 2019, 1: 3 (doi: 10.1186/s42523-019-0004-4).
  • Maghin F., Ratti S., Corino C. Biological functions and health promoting effects of brown seaweeds in swine nutrition. Journal of Dairy, Veterinary & Animal Research, 2014, 1(1): 14-16 (doi: 10.15406/jdvar.2014.01.00005).
  • Wan J., Jiang F., Xu Q., Chen D., He J. Alginic acid oligosaccharide accelerates weaned pig growth through regulating antioxidant capacity, immunity and intestinal development. RSC Advances, 2016, 90: 87026-87035 (doi: 10.1039/c6ra18135j).
  • Choi Y., Hosseindoust A., Goel A., Lee S., Jha P.K., Kwon I.K., Chae B.-J. Effects of Ecklonia cava as fucoidan-rich algae on growth performance, nutrient digestibility, intestinal morphology and caecal microflora in weanling pigs. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 2017, 30(1): 64-70 (doi: 10.5713/ajas.16.0102).
  • Dell’Anno M., Sotira S., Rebucci R., Reggi S., Castinglioni B., Rossi L. In vitro evaluation of antimicrobial and antioxidant activities of algal extracts. Italian Journal of Animal Science, 2020, 19(1): 103-113 (doi: 10.1080/1828051X.2019.1703563).
  • Azizi A.F.N., Miyazaki R., Yumito T., Ohashi Y., Uno S., Miyajima U., Kumamoto M., Uchiyama S., Yasuda M. Effect of maternal supplementation with seaweed powder on immune status of liver and lymphoid organs of piglets. The Journal of Veterinary Medical Science, 2018, 80(1): 8-12 (doi: 10.1292/jvms.17-0537).
  • Nedeva R., Jordanova G., Kistanova E., Shumkov K., Georgiev B., Abadgieva D., Kacheva D., Shimkus A., Shimkine A. Effect of the addition of Spirulina platensis on the productivity and some blood parameters on growing pigs. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 2014, 20(3): 680-684.
  • McDonnell P., Figat S., O’Doherty J.V. The effect of dietary laminarin and fucoidan in the diet of the weanling piglet on performance, selected faecal microbial populations and volatile fatty acid concentrations. Animal, 2010, 4(4): 579-585 (doi: 10.1017/S1751731109991376).
  • Derek N., Ovyn A., De Smet S. In vitro assessment of the effect of intact marine brown macroalgae Ascophyllum nodosum on the gut flora of piglets. Livestock Science, 2010, 133(1-3): 154-156 (doi: 10.1016/j.livsci.2010.06.051).
  • Katayama M., Fukuda T., Okamura T., Suzuki E., Tamura K., Shimizu Y., Suda Y., Suzuki K. Effect of dietary addition of seaweed and licorice on the immune performance of pigs. Animal Science Journal, 2011, 82(2): 274-281 (doi: 10.1111/j.1740-0929.2010.00826.x).
  • Панин А.Н., Комаров А.А., Куликовский А.В., Макаров Д.А. Проблема резистентности к антибиотикам возбудителей болезней, общих для человека и животных. Ветеринария и зоотехния, 2017, 5: 18-24.
  • Всемирная организация здоровья животных. Кодекс здоровья наземных животных, 28 издание. Rue de Prony, Paris, 2019.
  • Centers for Disease Control and Prevention (U.S.). Antibiotic resistance threats in the United States, 2013 (2013). Режим доступа: https://stacks.cdc.gov/view/cdc/20705. Без даты.
  • Короткевич Ю.В., Ефимочкина Н.Р., Шевелева С.А. Антибиотикорезистентность микроорганизмов, загрязняющих пищевые продукты. Мат. 2-й Межд. науч.-практ. конф. «Современные технологии продуктов питания». Курск, 2015, 78-81.
  • European Food Safety Authority (EFSA). The European Union summary report on trends and sources of zoonoses, zoonotic agents and foodborne outbreaks in 2013. European Food Safety Authority Journal, 2015, 13(1): 3991 (doi: 10.2903/j.efsa.2015.3991).
  • Meunier M., Guyard-Nicodeme M., Dory D., Chemaly M. Control strategies against Campylobacter at the poultry production level: biosecurity measures, feed additives and vaccination. Journal of Applied Microbiology, 2016, 120(5): 1139-1173 (doi: 10.1111/jam.12986).
  • Ефимочкина Н.Р., Короткевич Ю.В., Стеценко В.В., Пичугина T.В., Быкова И.В., Маркова Ю.М., Минаева Л.П., Шевелева С.А. Антибиотикорезистентность штаммов Campylobacter jejuni, выделенных из пищевых продуктов. Вопросы питания, 2017, 86(1): 17-27 (doi: 10.24411/0042-8833-2017-00016).
  • Сухинин А.А., Рождественская Т.Н., Панкратов С.В., Смирнова Л.И., Макавчик С.А. Возбудители кампилобактериоза птиц — этиологические факторы токсикоинфекций у людей. Ветеринария и кормление, 2021, 3: 52-54.
  • Cumashi A., Ushakova N.A., Preobrazhenskaya M.E., D’Incecco A., Piccoli A., Totani L., Tinari N., Morozevich G.E., Berman A.E., Bilan M.I., Usov A.I., Ustyuzhanina N.E., Grachev A.A., Sanderson C.J., Kelly M., Rabinovich G.A., Lacobelli S. A comparative study of the anti-inflammatory, anticoagulant, antiangiogenic and antiadhesive activities of nine different fucoidans from brown seaweeds. Glycobiology, 2007, 17(5): 541-552 (doi: 10.1093/glycob/cwm014).
  • Morua V.K., Kim J., Kim E.-K. Algal fucoidan: structural and size-dependent bioactivities and their perspectives. Applied Microbiology and Biotechnology, 2012, 93(1): 71-82 (doi: 10.1007/s00253-011-3666-8).
  • Зиновьев Е.В., Лукьянов С.А., Цыган В.Н., Кульминская А.А., Лапина И.М., Журишкина Е.В., Лопатин И.М., Асадулаев М.С., Арцимович И.В., Костяков Д.В., Панеях М.Б., Шабунин А.С., Зубов В.В., Жилин А.А., Давлетова Л.А., Стекольщикова Е.А. Оценка эффективности раневых покрытий на основе бактериальной целлюлозы с фукоиданом при ожогах кожи. Вестник Российской военно-медицинской академии, 2019, 1(65): 148-152.
  • Потороко И.Ю., Ускова Д.Г., Паймулина А.В., Багале У. Использование ультразвуковой микронизации растительного ингредиента фукоидана для применения в технологиях пищевых производств. Вестник Южно-Уральского государственного университета. Серия: Пищевые и Биотехнологии, 2019, 7(1): 58-70 (doi: 10.14529/food190107).
  • Bogolitsyn K.G., Kaplitsin P.A., Pochtovalova A.S. Amino-acid composition of arctic brown algae. Chemistry of Natural Compounds, 2014, 49(6): 1110-1113 (doi: 10.1007/s10600-014-0831-1).
  • Shibata T., Ishimaru K., Kawaguchi S., Yoshikawa H., Hama Y. Antioxidant activities of phlorotannins isolated from Japanese Laminariaceae. Journal of Applied Phycology, 2007, 20(5): 705-711 (doi: 10.1007/s10811-007-9254-8).
  • Ryu Y.B., Jeong H.J., Yoon S.Y., Park J.Y., Kim Y.M., Park S.J., Rho M.C., Kim S.J., Lee W.S. Influenza virus neuraminidase inhibitory activity of phlorotannins from the edible brown alga Ecklonia cava. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2011, 59(12): 6467-6473 (doi: 10.1021/jf2007248).
  • Lezcano V., Fernández C., Parodi E.R., Morelli S. Antitumor and antioxidant activity of the freshwater macroalga Cladophora surera. Journal of Applied Phycology, 2018, 30(5): 2913-2921 (doi: 10.1007/s10811-018-1422-5).
  • Kojima-Yuasa A. Biological and pharmacological effects of polyphenolic compounds from Ecklonia cava. In: Polyphenols: mechanisms of action in human health and disease /R.R. Watson, V.R. Preedy, S. Zibadi (eds.). Academic Press, London, 2018: 41-52 (doi: 10.1016/B978-0-12-813006-3.00005-2).
  • Lee M.H., Lee K.B., Oh S.M., Lee B.H., Chee H.Y. Antifungal activities of dieckol isolated from the marine brown alga Ecklonia cava against Trichophyton rubrum. Journal of the Korean Society for Applied Biological Chemistry, 2010, 53(4): 504-507 (doi: 10.3839/jksabc.2010.076).
  • Kim H.-J., Dasagrandhi C., Kim S.-H., Kim B.-G, Eom S.-H., Kim Y.-M. In vitro antibacterial activity of phlorotannins from edible brown algae, Eisenia bicyclis against streptomycin-resistant Listeria monocytogenes. Indian Journal of Microbiology, 2018, 58(1): 105-108 (doi: 10.1007/s12088-017-0693-x).
  • Barbosa M., Lopes G., Valentão P., Ferreres F., Gil-Izquierdo Á., Pereira D.M., Andrade P.B. Edible seaweeds’ phlorotannins in allergy: a natural multi-target approach. Food Chemistry, 2018, 265:233-241 (doi: 10.1016/j.foodchem.2018.05.074).
Еще
Статья обзорная