Негативная гормональная регуляция развития симбиотических клубеньков. II. Салициловая, жасмоновая и абсцизовая кислоты

Автор: Цыганова Анна Викторовна, Цыганов В.Е.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Агросистемы будущего

Статья в выпуске: 1 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

В результате взаимодействия с ризобиями бобовые растения способны фиксировать атмосферный азот в симбиотических клубеньках. Развитие и функционирование симбиотических клубеньков находится под строгим контролем со стороны растения-хозяина, в том числе за счет фитогормональной регуляции (B.J. Ferguson с соавт., 2014). Поскольку процесс формирования клубеньков требует затрат энергии, их число ограничивается растением. В негативную регуляцию клубенькообразования вовлечены, помимо этилена (А.В. Цыганова с соавт., 2015), салициловая (P.C. Van Spronsen с соавт., 2003; G. Stacey с соавт., 2006), жасмоновая (J. Sun с соавт., 2006) и абсцизовая (Y. Ding с соавт., 2008) кислоты. Все перечисленные фитогормоны действуют на разных стадиях развития и функционирования симбиотических клубеньков. Первые негативные эффекты жасмоновой и абсцизовой кислот связаны с блокированием ими кальциевых осцилляций (J. Sun с соавт., 2006; Y. Ding с соавт., 2008), индуцируемых под действием Nod-факторов - липохитоолигосахаридов, которые синтезируются ризобиями и активируют программу развития инфекции и органогенеза клубенька. Кальциевые осцилляции также блокируются этиленом (G.E. Old-royd с соавт., 2001). Салициловая, жасмоновая и абсцизовая кислоты влияют на дальнейшее развитие симбиоза, блокируя как рост инфекционных нитей, по которым ризобии проникают вглубь корня, так и формирование клубеньковых примордиев (T. Nakagawa с соавт., 2006; J. Sun с соавт., 2006; Y. Ding с соавт., 2008). Негативный эффект абсцизовой кислоты на развитие клубеньковых примордиев опосредован действием на цитокининовый сигнальный каскад (Y. Ding с соавт., 2008). Cалициловая, жасмоновая и абсцизовая кислоты также негативно влияют на азотфиксирующую активность клубеньков, причем отрицательное действие абсцизовой кислоты связано с активацией продукции монооксида азота NO (A. Tominaga с соавт., 2010). Тем не менее, все эти фитогормоны могут оказывать и позитивный эффект на формирование и функционирование клубеньков. Например, жасмоновая кислота активирует экспрессию nod -генов ризобий, контролирующих синтез Nod-факторов (F. Mabood с соавт., 2006). Для салициловой и абсцизовой кислот показана позитивная роль в активации защитных механизмов растений при действии стрессовых факторов, что приводит к снижению их негативного влияния на функционирование клубеньков (F. Palma с соавт., 2013, 2014). Значительный интерес представляют будущие исследования взаимодействия этилена, салициловой, жасмоновой и абсцизовой кислот при негативной регуляции формирования азотфиксирующих клубеньков. Важно изучить возможности практического использования мутантов с пониженным содержанием какого-либо из фитогормонов. В этой связи перспективно исследование мутанта enf1 ( enhanced nitrogen fixation1 ), полученного на модельном бобовом Lotus japonicus и характеризующегося повышенной азотфиксацией (A. Tominaga с соавт., 2009). В то же время следует учитывать, что изменение в содержании какого-либо фитогормона может негативно повлиять на развитие растения и его реакцию на абиотические и биотические стрессы.

Еще

Растительно-микробные взаимодействия, бобово-ризобиальный симбиоз, симбиотический клубенек, фитогормоны

Короткий адрес: https://sciup.org/142213898

IDR: 142213898   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2018.1.3rus

Список литературы Негативная гормональная регуляция развития симбиотических клубеньков. II. Салициловая, жасмоновая и абсцизовая кислоты

  • Цыганова В.A., Цыганов В.Е. Роль поверхностных компонентов ризобий в симбиотических взаимодействиях с бобовыми растениями. Успехи современной биологии, 2012, 132(2): 211-222.
  • Цыганова А.В., Китаева А.Б., Бревин Н.Дж., Цыганов В.Е. Клеточные механизмы развития симбиотических клубеньков у бобовых растений. Сельскохозяйственная биология, 2011, 3: 34-40.
  • Oldroyd G.E. Speak, friend, and enter: signalling systems that promote beneficial symbiotic associations in plants. Nat. Rev. Microbiol., 2013, 11(4): 252-263 ( ) DOI: 10.1038/nrmicro2990
  • Hause B., Schaarschmidt S. The role of jasmonates in mutualistic symbioses between plants and soil-born microorganisms. Phytochemistry, 2009, 70(13): 1589-1599 ( ) DOI: 10.1016/j.phytochem.2009.07.003
  • Desbrosses G.J., Stougaard J. Root nodulation: a paradigm for how plant-microbe symbiosis influences host developmental pathways. Cell Host Microbe, 2011, 10(4): 348-358 ( ) DOI: 10.1016/j.chom.2011.09.005
  • Suzaki T., Ito M., Kawaguchi M. Genetic basis of cytokinin and auxin functions during root nodule development. Front. Plant Sci., 2013, 4: 42 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2013.00042
  • Hayashi S., Gresshoff P.M., Ferguson B.J. Mechanistic action of gibberellins in legume nodulation. J. Integr. Plant Biol., 2014, 56(10): 971-978 ( ) DOI: 10.1111/jipb.12201
  • Guinel F.C. Ethylene, a hormone at the center-stage of nodulation. Front. Plant Sci., 2015, 6: 1121 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2015.01121
  • Цыганова А.В., Цыганов В.Е. Негативная гормональная регуляция развития симбиотических клубеньков. Сообщение I. Этилен (обзор). Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(3): 267-277 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2015.3.267rus
  • Stec N., Banasiak J., Jasi_ski M. Abscisic acid-an overlooked player in plant-microbe symbioses formation? Acta Biochim. Pol., 2016, 63(1): 53-58 ( ) DOI: 10.18388/abp.2015_1210
  • Rivas-San Vicente M., Plasencia J. Salicylic acid beyond defense: its role in plant growth and development. J. Exp. Bot., 2011, 62(10): 3321-3338 ( ) DOI: 10.1093/jxb/err031
  • Ryu H., Cho H., Choi D., Hwang I. Plant hormonal regulation of nitrogen-fixing nodule organogenesis. Mol. Cells, 2012, 34(2): 117-126 ( ) DOI: 10.1007/s10059-012-0131-1
  • Nagata M., Suzuki A. Effects of phytohormones on nodulation and nitrogen fixation in leguminous plants. In: Advances in biology and ecology of nitrogen fixation/T. Ohyama (ed.). InTech, Rijeka, Croatia, 2014: 111-128 ( ) DOI: 10.5772/57267
  • Ferguson B.J., Mathesius U. Phytohormone regulation of legume-rhizobia interactions J. Chem. Ecol., 2014, 40(7): 770-790 ( ) DOI: 10.1007/s10886-014-0472-7
  • Vlot A.C., Dempsey D.M.A., Klessig D.F. Salicylic acid, a multifaceted hormone to combat disease. Annu. Rev. Phytopathol., 2009, 47: 177-206 ( ) DOI: 10.1146/annurev.phyto.050908.135202
  • Ramanujam M.P., Jaleel V.A., Kumaravelu G. Effect of salicylic acid on nodulation, nitrogenous compounds and related enzymes of Vigna mungo. Biologia Plantarum, 1998, 41(2): 307-311 ( ) DOI: 10.1023/A:1001859824008
  • Martinez-Abarca F., Herrera-Cervera J.A., Bueno P., Sanjuan J., Bisseling T., Olivares J. Involvement of salicylic acid in the establishment of the Rhizobium meliloti-alfalfa symbiosis. Mol. Plant Microbe In., 1998, 11(2): 153-155 ( ) DOI: 10.1094/MPMI.1998.11.2.153
  • Blilou I., Ocampo J.A., Garc_a-Garrido J.M. Resistance of pea roots to endomycorrhizal fungus or Rhizobium correlates with enhanced levels of endogenous salicylic acid. J. Exp. Bot., 1999, 50(340): 1663-1668 ( ) DOI: 10.1093/jxb/50.340.1663
  • Lian B., Zhou X., Miransari M., Smith D.L. Effects of salicylic acid on the development and root nodulation of soybean seedlings. J. Agron. Crop Sci., 2000, 185(3): 187-192 ( ) DOI: 10.1046/j.1439-037x.2000.00419.x
  • Sato T., Fujikake H., Ohtake N., Sueyoshi K., Takahashi T., Sato A., Ohyama T. Effect of exogenous salicylic acid supply on nodule formation of hypernodulating mutant and wild type of soybean. Soil Sci. Plant Nutr., 2002, 48(3): 413-420 ( ) DOI: 10.1080/00380768.2002.10409219
  • van Spronsen P.C., Tak T., Rood A.M., van Brussel A.A., Kijne J.W., Boot K.J. Salicylic acid inhibits indeterminate-type nodulation but not determinate-type nodulation. Mol. Plant Microbe In., 2003, 16(1): 83-91 ( ) DOI: 10.1094/MPMI.2003.16.1.83
  • Stacey G., McAlvin C.B., Kim S.Y., Olivares J., Soto M.J. Effects of endogenous salicylic acid on nodulation in the model legumes Lotus japonicus and Medicago truncatula. Plant Physiol., 2006, 141(4): 1473-1481 ( ) DOI: 10.1104/pp.106.080986
  • Riely B.K., Lougnon G., An_ J.-M., Cook D.R. The symbiotic ion channel homolog DMI1 is localized in the nuclear membrane of Medicago truncatula roots. Plant J., 2007, 49(2): 208-216 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-313X.2006.02957.x
  • Bonfante P., Genre A., Faccio A., Martini I., Schauser L., Stougaard J., Webb J., Parniske M. The Lotus japonicus LjSym4 gene is required for the successful symbiotic infection of root epidermal cells. Mol. Plant Microbe In., 2000 13(10): 1109-1120 ( ) DOI: 10.1094/MPMI.2000.13.10.1109
  • Bastianelli F., Costa A., Vescovi M., D'Apuzzo E., Zottini M., Chiurazzi M., Schiavo F.L. Salicylic acid differentially affects suspension cell cultures of Lotus japonicus and one of its non-symbiotic mutants. Plant Mol. Biol., 2010, 72(4-5): 469-483 ( ) DOI: 10.1007/s11103-009-9585-8
  • Levine A., Tenhaken R., Dixon R., Lamb C. H2O2 from the oxidative burst orchestrates the plant hypersensitive disease resistance response. Cell, 1994, 94(4): 491-501 ( ) DOI: 10.1016/0092-8674(94)90544-4
  • Palma F., L_pez-G_mez M., Tejera N.A., Lluch, C. Salicylic acid improves the salinity tolerance of Medicago sativa in symbiosis with Sinorhizobium meliloti by preventing nitrogen fixation inhibition. Plant Sci., 2013, 208: 75-82 ( ) DOI: 10.1016/j.plantsci.2013.03.015
  • Hayat S., Hayat Q., Alyemeni M.N., Ahmad A. Salicylic acid enhances the efficiency of nitrogen fixation and assimilation in Cicer arietinum plants grown under cadmium stress. J. Plant Interact., 2014, 9(1): 35-42 ( ) DOI: 10.1080/17429145.2012.751635
  • Tett A.J., Karunakaran R., Poole P.S. Characterisation of SalRAB a salicylic acid inducible positively regulated efflux system of Rhizobium leguminosarum bv viciae 3841. PloS ONE, 2014, 9(8): e103647 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0103647
  • Wasternack C., Hause B. Jasmonates: biosynthesis, perception, signal transduction and action in plant stress response, growth and development. An update to the 2007 review in Annals of Botany. Annals of Botany, 2013, 111(6): 1021-1058 ( ) DOI: 10.1093/aob/mct067
  • Rosas S., Soria R., Correa N., Abdala G. Jasmonic acid stimulates the expression of nod genes in Rhizobium. Plant Mol. Biol., 1998, 38(6): 1161-1168 ( ) DOI: 10.1023/A:1006064807870
  • Mabood F., Souleimanov A., Khan W., Smith D.L. Jasmonates induce Nod factor production by Bradyrhizobium japonicum. Plant Physiol. Bioch., 2006, 44(11): 759-765 ( ) DOI: 10.1016/j.plaphy.2006.10.025
  • Creelman R.A., Mullet J.E. Jasmonic acid distribution and action in plants: regulation during development and response to biotic and abiotic stress. PNAS USA, 1995, 92(10): 4114-4119 ( ) DOI: 10.1073/pnas.92.10.4114
  • Zhang J., Subramanian S., Zhang Y., Yu O. Flavone synthases from Medicago truncatula are flavanone-2-hydroxylases and are important for nodulation. Plant Physiol., 2007, 144(2): 741-751 ( ) DOI: 10.1104/pp.106.095018
  • Sun J., Cardoza V., Mitchell D.M., Bright L., Oldroyd G., Harris J.M. Crosstalk between jasmonic acid, ethylene and Nod factor signaling allows integration of diverse inputs for regulation of nodulation. Plant J., 2006, 46(6): 961-970 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-313X.2006.02751.x
  • Oldroyd G.E.D., Engstrom E.M., Long S.R. Ethylene inhibits the Nod factor signal transduction pathway of Medicago truncatula. Plant Cell, 2001, 13(8): 1835-1849 ( ) DOI: 10.2307/3871322
  • Nakagawa T., Kawaguchi M. Shoot-applied MeJA suppresses root nodulation in Lotus japonicus. Plant Cell Physiol., 2006, 47(1): 176-180 ( ) DOI: 10.1093/pcp/pci222
  • Seo H.S., Li J., Lee S.-Y., Yu J.-W., Kim K.-H., Lee S.-H., Lee I.-J., Paek N.-C. The hypernodulating nts mutation induces jasmonate synthetic pathway in soybean leaves. Mol. Cells, 2007, 24(2): 185.
  • Zdyb A., Demchenko K., Heumann J., Mrosk C., Grzeganek P., G_bel C., Feussner I., Pawlowski K., Hause B. Jasmonate biosynthesis in legume and actinorhizal nodules. New Phytol., 2011, 189(2): 568-579 ( ) DOI: 10.1111/j.1469-8137.2010.03504.x
  • Suzuki A., Suriyagoda L., Shigeyama T., Tominaga A., Sasaki M., Hiratsuka Y., Yoshinaga A., Arima S., Agarie S., Sakai T., Inada S., Jikumaru Y., Kamiya Y., Uchiumi T., Abe M., Hashiguchi M., Akashi R., Sato S., Kaneko T., Tabata S., Hirsch A.M. Lotus japonicus nodulation is photomorphogenetically controlled by sensing the red/far red (R/FR) ratio through jasmonic acid (JA) signaling. PNAS USA, 2011, 108(40): 16837-16842 ( ) DOI: 10.1073/pnas.1105892108
  • Costanzo M.E., Andrade A., del Carmen Tordable M., Cass_n F., Abdala G. Production and function of jasmonates in nodulated roots of soybean plants inoculated with Bradyrhizobium japonicum. Arch. Microbiol., 2012, 194(10): 837-845 ( ) DOI: 10.1007/s00203-012-0817-y
  • Umezawa T., Nakashima K., Miyakawa T., Kuromori T., Tanokura M., Shinozaki K., Yamaguchi-Shinozaki K. Molecular basis of the core regulatory network in ABA responses: sensing, signaling and transport. Plant Cell Physiol., 2010, 51(11): 1821-1839 ( ) DOI: 10.1093/pcp/pcq156
  • Phillips D.A. Abscisic acid inhibition of root nodule initiation in Pisum sativum. Planta, 1971, 100(3): 181-190 ( ) DOI: 10.1007/BF00387034
  • Cho M.J., Harper J.E. Effect of abscisic acid application on root isoflavonoid concentration and nodulation of wild-type and nodulation-mutant soybean plants. Plant Soil, 1993, 153(1): 145-149 ( ) DOI: 10.1007/BF00010552
  • Bano A., Harper J.E., Auge R.M., Neuman D.S. Changes in phytohormone levels following inoculation of two soybean lines differing in nodulation. Funct. Plant Biol., 2002, 29(8): 965-974 ( ) DOI: 10.1071/PP01166
  • Suzuki A., Akune M., Kogiso M., Imagama Y., Osuki K., Uchiumi T., Higashi S., Han S.Y., Yoshida S., Asami T., Abe M. Control of nodule number by the phytohormone abscisic acid in the roots of two leguminous species. Plant Cell Physiol., 2004, 45(7): 914-922 ( ) DOI: 10.1093/pcp/pch107
  • Gonz_lez E.M., G_lvez L., Arrese_Igor C. Abscisic acid induces a decline in nitrogen fixation that involves leghaemoglobin, but is independent of sucrose synthase activity. J. Exp. Bot., 2001, 52(355): 285-293 ( ) DOI: 10.1093/jexbot/52.355.285
  • Khadri M., Tejera N.A., Lluch C. Alleviation of salt stress in common bean (Phaseolus vulgaris) by exogenous abscisic acid supply. J. Plant Growth Regul., 2006, 25(2): 110-119 ( ) DOI: 10.1007/s00344-005-0004-3
  • Palma F., L_pez-G_mez M., Tejera N.A., Lluch C. Involvement of abscisic acid in the response of Medicago sativa plants in symbiosis with Sinorhizobium meliloti to salinity. Plant Sci., 2014, 223: 16-24 ( ) DOI: 10.1016/j.plantsci.2014.02.005
  • Ding Y., Kalo P., Yendrek C., Sun J., Liang Y., Marsh J.F., Harris J.M., Oldroyd G.E. Abscisic acid coordinates nod factor and cytokinin signaling during the regulation of nodulation in Medicago truncatula. Plant Cell, 2008, 20(10): 2681-2695 ( ) DOI: 10.1105/tpc.108.061739
  • Caba J.M., Centeno M.L., Fern_ndez B., Gresshoff P.M., Ligero F. Inoculation and nitrate alter phytohormone levels in soybean roots: differences between a supernodulating mutant and the wild type. Planta, 2000, 211(1): 98-104 ( ) DOI: 10.1007/s004250000265
  • Tominaga A., Nagata M., Futsuki K., Abe H., Uchiumi T., Abe M., Kucho K., Hashiguchi M., Akashi R., Hirsch A.M., Arima S., Suzuki A. Enhanced nodulation and nitrogen fixation in the abscisic acid low-sensitive mutant enhanced nitrogen fixation1 of Lotus japonicus. Plant Physiol., 2009, 151(4): 1965-1976 ( ) DOI: 10.1104/pp.109.142638
  • Tominaga A., Nagata M., Futsuki K., Abe H., Uchiumi T., Abe M., Kucho K., Hashiguchi M., Akashi R., Hirsch A., Arima S., Suzuki A. Effect of abscisic acid on symbiotic nitrogen fixation activity in the root nodules of Lotus japonicus. Plant Signaling & Behavior, 2010, 5(4): 440-443 ( ) DOI: 10.4161/psb.5.4.10849
  • Shimoda Y., Shimoda-Sasakura F., Kucho K., Kanamori N., Nagata M., Suzuki A., Abe M., Higashi S., Uchiumi T. Overexpression of class 1 plant hemoglobin genes enhances symbiotic nitrogen fixation activity between Mesorhizobium loti and Lotus japonicus. Plant J., 2009, 57(2): 254-263 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-313X.2008.03689.x
Еще
Статья обзорная