Нормофлора кишечника поросят при отъемном стрессе
Автор: Андреева А.В., Муратова Е.Т.
Рубрика: Незаразные болезни и организация ветеринарного дела
Статья в выпуске: 4 т.203, 2010 года.
Бесплатный доступ
Представлены результаты исследования нормофлоры (лакто-и бифидобактерий) кишечника поросят при отъемном стрессе и методы их коррекции с применением пробиотика «Споровит», аскорбиновой кислоты и прополисного молочка.
Нормофлора, кишечник, поросята, стресс, формирование
Короткий адрес: https://sciup.org/14286986
IDR: 14286986
Текст научной статьи Нормофлора кишечника поросят при отъемном стрессе
Основными факторами, влияющими на формирование нормофлоры в желудочно-кишечном тракте животных, являются условия содержания, состав рациона (Е.А. Доронин, 2005; Панин А. Н., 2006), время приёма первой порции молозива, состояние иммунитета, проведение вакцинаций и применение лекарственных средств (В.В.Субботин, 1997; Б.В.Тараканов, 2000).
В отъёмный период поросята подвергаются воздействию стресс-факторов – отлучение от свиноматки и переход от одного корма к другому. Переход от теплой жидкой пищи, богатой питательными веществами, к сухому корму влечет за собой временное нарушение аппетита, которое поросенок стремится компенсировать уже через несколько часов путем переедания высокобелкового корма на голодный желудок и не способен его усвоить. В период отъёма пищеварительная система у поросят еще недостаточно развита. Вследствие недоразвитости ферментной системы желудочно-кишечного тракта поступивший корм не полностью переваривается, избыток неусвоенных питательных веществ и продуктов их ферментации приводит к задержке в кишечнике воды (Г.В. Корнева, 2006; И.С. Трончук, 1990).
Для профилактики здоровья организма важно поддерживать необходимое количество полезных бактерий в его пищеварительном тракте. Одной из важных функций нормальной микрофлоры является ее участие в кооперации с организмом хозяина в обеспечении колонизационной резистентности, придающей стабильность нормальной микрофлоре и обеспечивающей предотвращение заселения организма хозяина посторонними микроорганизмами. В случае снижения колонизационной резистентности происходит увеличение числа и спектра потенциально патогенных микроорганизмов, их транслокация через стенку кишечника или других полостей, что может сопровождаться возникновением эндогенной инфекции или суперинфекции различной локализации, развитием дисбактериозов, провоцирующих и осложняющих желудочно-кишечные болезни у молодняка сельскохозяйственных животных (И.В. Строганов, 2002; А.К. Misra, 1994).
Включение пробиотиков в технологию выращивания молодняка -наиболее современный способ профилактики послеотъемного стресса и как его следствие желудочных болезней, основанный на экологически безопасных механизмах поддержания высокого уровня колонизационной резистентности кишечника.
Однако, введение в организм пробиотиков, полученных вне самого организма, не всегда может производить достаточный эффект. Поэтому необходимы исследования в направлении поиска средств, оказывающих благоприятное воздействие на колонизацию кишечника бифидо- и лактобактериями путем создания благоприятного физиологического и биохимического режима в кишечнике с использованием пробиотиков в комплексе с препаратами прополиса и антиоксидантами. Решению этой актуальной проблемы посвящена настоящая работа.
Цель исследования - изучение нормобиоза кишечника поросят при отъемном стрессе и их коррекция с применением пробиотика «Споровит» в комплексе с аскорбиновой кислотой и прополисным молочком.
Материал и методы исследования . Опыты проведены в условиях КФХ «Махновская» Стерлитамакского района Республики Башкортостан. По принципу аналогов были подобраны поросята 45 дневного отъема и разделены на восемь групп (n=10). Животные первой группы служили контрольной (находились на основном рационе), второй группы получали аскорбиновую кислоту+пробиотик «Споровит»+прополисное молочко; третьей - пробиотик «Споровит»+прополисное молочко, четвертой -аскорбиновую кислоту+пробиотик «Споровит»; пятой - аскорбиновую кислоту+ прополисное молочко; шестой - аскорбиновую кислоту; седьмой
- пробиотик «Споровит»; восьмой - прополисное молочко. Разовая доза аскорбиновой кислоты (внутримышечно) в форме 5%-ного водного раствора составила 0,5 мл; доза «Споровит» - 1 мл на 10 кг массы тела и прополисного молочка – 10 мл внутрь на одно животное. Препараты задавались один раз в день до кормления в течение 10 дней.
До начала опыта, а затем на 10, 30, 60-й дни проводили взятие фекалий - для микробиологических исследований.
Качественное исследование микрофлоры кишечника проводили по Э.П. Касаткиной с соавт. (1996). Забор фекалий из прямой кишки производили в стерильную посуду с 9-10 мл изотонического раствора натрия хлорида с глицерином. Выделение бифидобактерий проводили посевом больших разведений фекалий в среду Блаурокка. Посевы инкубировали при температуре 37ºС в течение 24 часов. Лактобактерии выращивали на среде МРС. Результаты переводились в десятичные логарифмы (lg) и определяли относительное соотношение различных групп микроорганизмов в кишечной популяции. Биометрическую обработку полученного цифрового материала проводили с использованием прикладных программ на персональном компьютере, статистически значимые различия между группами устанавливали по распределению Стьюдента.
Результаты исследования. Установлено, что в кишечнике поросят контрольной группы содержание бифидобактерий за период опыта находилось на уровне 6,22 - 9,14 lg КОЕ/г.
Фоновый показатель бифидобактерий в кишечнике поросят-отъёмышей колебался от 6,22 - 6,81 lg КОЕ/г.
Выраженное увеличение количества бифидофлоры наблюдалось в кишечнике животных второй и третьей опытных групп: к 10-му дню от начала исследований – в 1,1 и 1,16 раза (на 0,69 и 0,99 lg КОЕ/г); к 30-му дню – в 1,14 и 1,25 раза (на 1,0 и 1,58 lg КОЕ/г) и к 60-му дню – в 1,3 и 1,3 раза (на 2,06 и 1,89 lg КОЕ/г).
У поросят-отъемышей пятой и шестой опытных групп содержание бифидобактерий в кишечнике на 10-й день исследований превышал показатели фона: - в 1,13 (на 0,9 lg КОЕ/г) и 1,11 раза (на 0,72 lg КОЕ/г); на 30-й день – в 1,18 (на 1,2 lg КОЕ/г) и 1,16 раза (на 1,07 lg КОЕ/г) и 60-ый день – в 1,23 (на 1,5 lg КОЕ/г) и в 1,26 раза (на 1,72 lg КОЕ/г).
В кишечнике поросят-отъёмышей седьмой и восьмой опытных групп также наблюдалась тенденция к повышению количества бифидобактерий: к 10-му дню исследований - в 1,09 раза (на 058 lg КОЕ/г), в 1,12 раза (на 0,8 lg КОЕ/г); к 30-му дню – в 1,15 раза (на 0,98 lg КОЕ/г), в 1,18 раза (на 1,2 lg КОЕ/г) и к 60-му дню – в 1,23 раза (на 1,48 lg КОЕ/г), в 1,22 раза (на 1,4 lg КОЕ/г).
Наиболее активное повышение количества бифидобактерий наблюдалось у поросят четвертой опытной группы. Их содержание было выше фоновых показателей: на 10-й день опыта в 1,1 раза (на 0,58 lg КОЕ/г), на 30-й день – в 1,32 раза (на 2,17 lg КОЕ/г), на 60-й день – в 1,37 раза (на 2,47 lg КОЕ/г), соответственно.
Содержание лактобактерий в кишечнике поросят контрольной и опытных групп при 45-дневном отъеме находилось на уровне 3,65 - 4,42 lg КОЕ/г. Уровень лактобактерий в кишечнике поросят второй, пятой и седьмой опытных групп превысил показатели фона на 10-й день исследования - в 1,34; 1,27 и 1,38 раза (на 1,43; 1,0 и 1,43 lg КОЕ/г), на 30-й день – в 1,62; 1,4 и 1,61 раза (на 2,57; 1,5 и 2,33 lg КОЕ/г), на 60-й день – в 1,77; 1,84 и 1,72 раза (на 3,2; 3,1 и 2,73 lg КОЕ/г).
Подобная тенденция регистрировалась и в кишечнике животных третьей, шестой и восьмой опытных групп: на 10-й день от начала опыта – в 1,28; 1,26 и 1,31 раза (на 1,13; 1,18 и 1,28 lg КОЕ/г), на 30-й день – в 1,5; 1,47 и 1,45 раза (на 2,03; 2,08 и 1,88 lg КОЕ/г) и на 60-й день – в 1,6; 1,58 и 1,55 раза (на 204; 2,58 и 2,28 lg КОЕ/г).
Максимальное содержание лактобактерий в кишечнике поросят наблюдалось в четвертой опытной групп, что превысило фоновые показатели на 10-й день: в 1,08 раза (на 0,58 lg КОЕ/г), на 30-й – в 1,32 раза (на 2,17 lg КОЕ/г), на 60-й – в 1,37 раза (на 2,47 lg КОЕ/г), соответственно.
Заключение. Таким образом, период отъемного стресса сопровождается значительным угнетением лакто- и бифидофлоры кишечника. Применение пробиотика «Споровит», аскорбиновой кислоты и прополисного молочка поросятам в послеотъемный период способствует активизации бифидобактерий, которые обладают антиаллергическим действием, участвуют в формировании иммунологической реактивности и являются мощным биосорбентом, инактивирующим экзо- и эндотоксины, а также лактобактерий, обладающих выраженным бактерицидным действием, и повышению колонизационной резистентности кишечника.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Доронин, Е.А. Лечебно-профилактические аспекты применения пробиотиков в ранний постнатальный период у телят [Диспепсия новорожденных телят]: автореф. дис. … канд. ветеринар. наук : 16.00.01 / Доронин Евгений Александрович. - Санкт-Петербург, 2005. – 18 с. 2. Корнева, Г.В. Влияние синдрома стресса на заболеваемость и падеж поросят на свинокомплексе «Ворожино» / Г.В. Корнева // Ветеринария сельскохозяйственных животных.- 2006. - №5.- С.53-54. 3. Панин, А.Н. Пробиотики – неотъемлимый компонент рационального кормления животных. / А.Н. Панин, Н. И. Малик. – Ветеринария. – 2006. -№7. – С. 3-6. 4. Строганов, Н.В. Мероприятия по профилактике и борьбе с колибактериозом телят и поросят в условиях хозяйств Северо-Запада Тверской области: автореф.дисс.... к.в.н./ Н.В.Строганов. - Москва, 2002. -
22с. 5. Субботин. В.В. Физиологическое значение нормальной микрофлоры животного организма / В. В. Субботин. - МГУПБ, 1997. - 6667с. 6. Тараканов, Б.В. Механизм действия пробиотиков на микрофлору пищеварительного тракта и организм животных / Б.В. Тараканов // Ветеринария. – 2000. - №1. – С. 42-45. 7. Трончук И.С., Фесина Б.Е., Почерняев Г.М. и др. Кормление свиней.- М.: ВО Агропромиздат., 1990.- С. 76-77. 8. Misra, A.K. Bilidobacteria in food and health // Indian Dairyman. -1996. - Vol. 48. -№6.-P.13-16.
НОРМОФЛОРА КИШЕЧНИКА ПОРОСЯТ ПРИ ОТЪЕМНОМ СТРЕССЕ
Андреева А.В., Муратова Е.Т.
Резюме
Представлены результаты исследования нормофлоры (лакто-и бифидобактерий) кишечника поросят при отъемном стрессе и методы их коррекции с применением пробиотика «Споровит», аскорбиновой кислоты и прополисного молочка.
NORM FLORA PIGLETS’ BOWELS UNDER DEPRIVING STRESS
Andreeva A.V., Muratova E.T.