О биологической активности стабилизированных арабиногалактаном наночастиц серебра в отношении кресс-салата Lepidium sativum L. Curled и фитопатогенного микромицета Fusarium sambucinum

Автор: Гудкова О.И., Бобкова Н.В., Фельдман Н.Б., Луферов А.Н., Громовых Т.И., Самылина И.А., Ананян М.А., Луценко С.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Нанопрепараты

Статья в выпуске: 3 т.56, 2021 года.

Бесплатный доступ

Применение в растениеводстве нанотехнологий, позволяющих получать наночастицы (НЧ) с ростостимулирующим эффектом, антигрибной, антибактериальной и инсектицидной активностью, пролонгированным высвобождением минеральных веществ и гербицидов, открывает перспективы повышения урожайности сельскохозяйственных культур. Среди НЧ металлов, которые могут найти применение в сельском хозяйстве, наночастицы серебра (НЧ Ag) занимают особое место благодаря широкому спектру биологической активности. В настоящей работе нами впервые установлено, что предпосевная обработка семян кресс-салата ( Lepidium sativum L.) сорта Curled наночастицами серебра, стабилизированными биополимером арабиногалактаном и диоктилсульфосукцинатом, влияют на энергию прорастания, всхожесть и некоторые анатомо-морфометрические показатели проростков. Также впервые показано, что НЧ Ag оказывают угнетающее действие на рост фитопатогенного гриба Fusarium sambucinum . Целью работы была оценка потенциала использования наночастиц серебра, стабилизированных арабиногалактаном и диоктилсульфосукцинатом, в качестве средства стимуляции роста кресс-салата сорта Curled, а также изучение антифунгального действия полученных наночастиц на фитопатогенный токсинообразующий микромицет Fusarium sambucinum ВКПМ F-900 . Синтез наночастиц проводили методом восстановления из нитрата серебра в щелочной среде в присутствии арабиногалактана с последующим добавлением стабилизатора - диоктилсульфосукцината. Средний диаметр наночастиц составлял 11,40±3,96 нм; дзета-потенциал -24 мВ. Исследовали влияние НЧ Ag на энергию прорастания, всхожесть семян, рост гипокотиля и корня проростков кресс-салата. Семена инкубировали в течение 1 ч в золях наночастиц с концентрациями серебра 1,17; 2,34; 4,69; 9,38, 18,75; 37,5; 75 и 150 мкг/мл. Контрольные группы семян инкубировали в воде. Затем семена проращивали в чашках Петри на влажной фильтровальной бумаге в темноте при 20 °С. На 3-и сут определяли энергию прорастания семян, на 5-е сут - всхожесть, на 7-е сут - длину гипокотиля и главного корня проростков, а также проводили микроскопический анализ срезов корня проростков, обработанных золями со стимулирующей и ингибирующей концентрациями Ag (соответственно 4,69 и 18,75 мкг/мл). Антифунгальную активность золей Ag с концентрациями от 9,38 до 300 мкг/мл оценивали методом диффузии в агар. В качестве тест-культуры использовали микромицет Fusarium sambucinum Fuckel ВКПМ F-900. Контроль - стерильная вода. Продемонстрировано, что инкубация семян в золях с концентрацией Ag 2,34 и 4,69 мкг/мл оказывала стимулирующее действие на энергию прорастания и всхожесть семян Lepidium sativum . Доза Ag НЧ 4,69 мкг/мл повышала энергию прорастания на 13,5 %, всхожесть - на 11,7 % по сравнению с контролем. Кроме того, концентрации Ag от 1,17 до 4,69 мкг/мл проявляли значительное стимулирующее действие на рост корня (соответственно от 34,4 до 79,1 %) при некотором замедлении роста гипокотиля. Инкубация семян в золях с концентрацией серебра от 18,75 мкг/мл и выше приводила к значительному снижению энергии прорастания и всхожести, а также подавлению роста растений. Микроскопическое изучение срезов всасывающей зоны корня проростков показало, что НЧ Ag существенно влияют на формирование проводящей системы центрального осевого цилиндра. Число сосудов ксилемы в проростках, обработанных золем серебра в стимулирующей концентрации 4,69 мкг/мл, было значительно больше в сравнении с контролем, что обусловило более интенсивный рост корневой системы и растения в целом. Также НЧ Ag оказывали угнетающее действие на рост F. sambucinum . Диаметр зоны угнетения роста при максимальной концентрации золя 300 мкг/мл составлял 32,4±4,2 мм, при концентрации 150 мкг/мл - 28,4±3,9 мм. Минимальная концентрация, которая угнетала видимый рост тест-штамма F. sambucinum , составляла 18,75 мкг/мл (зона угнетения роста 11,7±0,8 мм). Представленные данные свидетельствуют о возможности применения золей, включающих стабилизированные наночастицы серебра, для стимуляции всхожести и роста растений, а также их защиты от фитопатогенов.

Еще

Наночастицы серебра, рост растений, энергия прорастания, всхожесть семян, антифунгальная активность, lepidium sativum, fusarium sambucinum

Короткий адрес: https://sciup.org/142231366

IDR: 142231366   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2021.3.500rus

Список литературы О биологической активности стабилизированных арабиногалактаном наночастиц серебра в отношении кресс-салата Lepidium sativum L. Curled и фитопатогенного микромицета Fusarium sambucinum

  • Bhagat Y., Gangadhara K., Rabinal C., Chaudhari G., Ugale P. Nanotechnology in agriculture: a review. Journal of Pure and Applied Microbiology, 2015, 9(1): 737-747.
  • Jampílek J., Kráľová K. Application of nanotechnology in agriculture and food industry, its prospects and risks. Ecological Chemistry and Engineering S, 2015, 22(3): 321-361 (doi: 10.1515/eces-2015-0018).
  • Hossain Z., Mustafa G., Komatsu S. Plant responses to nanoparticle stress. International Journal of Molecular Sciences, 2015, 16(11): 26644-26653 (doi: 10.3390/ijms161125980).
  • Gusev A.A., Kudrinsky A.A., Zakharova O.V., Klimov A.I., Zherebin P.M., Lisichkin G.V., Vasyukova I.A., Denisov A.N., Krutyakov Y.A. Versatile synthesis of PHMB-stabilized silver na-noparticles and their significant stimulating effect on fodder beet (Beta vulgaris L.). Materials Science and Engineering C, 2016, 62: 152-159 (doi: 10.1016/j.msec.2016.01.040).
  • Zhang B., Zheng L.P., Li W.Y., Wang J.W. Stimulation of artemisinin production in Artemisia annua hairy roots by Ag-SiO2 core-shell nanoparticles. Current Nanoscience, 2013, 9(3): 363-370 (doi: 10.2174/1573413711309030012).
  • Salama H.M.H. Effects of silver nanoparticles in some crop plants, Common bean (Phaseolus vulgaris L.) and corn (Zea mays L.). International Research Journal of Biotechnology, 2012, 3(10): 190-197.
  • Seifsahandi M., Sorooshzadeh A., Rezazadeh H., Naghdiabadi H.A. Effect of nano silver and silver nitrate on seed yield of borage. Journal of Medicinal Plants Research, 2011, 5(2): 171-175.
  • Yin L.Y., Cheng Y.W., Espinasse B., Colman B.P., Auffan M., Wiesner M., Rose J., Liu J., Bernhardt E.S. More than the ions: the effects of silver nanoparticles on Lolium multiflorum. Environmental Science and Technology, 2011, 45(6): 2360-2367 (doi: 10.1021/es103995x).
  • Jiang H.S., Li M., Chang F.Y., Li W., Yin L.Y. Physiological analysis of silver nanoparticles and AgNO3 toxicity to Spirodela polyrhiza. Environmental Toxicology and Chemistry, 2012, 31(8): 1880-1886 (doi: 10.1002/etc.1899).
  • Mirzajani F., Askari H., Hamzelou S., Farzaneh M., Ghassempour A. Effect of silver nanoparti-cles on Oryza sativa L. and its rhizosphere bacteria. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2013, 88: 48-54 (doi: 10.1016/j.ecoenv.2012.10.018).
  • Richard J.L. Some major mycotoxins and their mycotoxicoses — an overview. International Jour-nal of Food Microbiology, 2017, 119(1-2): 3-10 (doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2007.07.019).
  • Khadri H., Alzohairy M., Janardhan A., Kumar A.P., Narasimha G. Green synthesis of silver nanoparticles with high fungicidal activity from olive seed extract. Advances in Nanoparticles, 2013, 2(3): 241-246 (doi: 10.4236/anp.2013.23034).
  • Gajbhiye M., Kesharwani J., Ingle A., Gade A., Rai M. Fungus-mediated synthesis of silver nano-particles and their activity against pathogenic fungi in combination with fluconazole. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology, and Medicine, 2009, 5(4): 382-386 (doi: 10.1016/j.nano.2009.06.005).
  • Elgorban A.M., El-Samawaty A.E.-R.M., Yassin M.A., Sayed S.R., Adil S.F., Elhindi K.M., Bakri M., Khan M. Antifungal silver nanoparticles: Synthesis, characterization and biological evaluation. Biotechnology and Biotechnological Equipment, 2016, 30(1): 56-62 (doi: 10.1080/13102818.2015.1106339).
  • Mishra S., Singh B.R., Singh A., Keswani C., Naqvi A.H., Singh H.B. Biofabricated silver na-noparticles act as a strong fungicide against Bipolaris sorokiniana causing spot blotch disease in wheat. PLoS ONE, 2014, 9(5): e97881 (doi: 10.1371/journal.pone.0097881).
  • Jo Y.-K., Kim B.H., Jung G. Antifungal activity of silver ions and nanoparticles on phytopatho-genic fungi. Plant Disease, 2009, 93(10): 1037-1043 (doi: 10.1094/PDIS-93-10-1037).
  • Kim S.W., Jung J.H., Lamsal K., Kim Y.S., Min J.S., Lee Y.S. Antifungal effects of silver nano-particles (AgNPs) against various plant pathogenic fungi. Mycobiology, 2012, 40(1): 53-58 (doi: 10.5941/MYCO.2012.40.1.053).
  • Almutairi Z.M., Alharbi A.А. Effect of silver nanoparticles on seed germination of crop plants. Journal of Advances in Agriculture, 2015, 4(1): 280-285 (doi: 10.24297/jaa.v4i1.4295).
  • Nair R., Varghese S.H., Nair B.G., Maekawa T., Yoshida Y., Kumar D.S. Nanoparticulate ma-terial delivery to plants. Plant Science, 2010, 179(3): 154-163 (doi: 10.1016/j.plantsci.2010.04.012).
  • Maity D., Kanti Bain M., Bhowmick B., Sarkar J., Saha S., Acharya K., Chakraborty M., Chat-topadhyay D. In situ synthesis, characterization, and antimicrobial activity of silver nanoparticles using water soluble polymer. Journal of Applied Polymer Science, 2011, 122(4): 2189-2196 (doi: 10.1002/app.34266).
  • Lukman A.I., Gong B., Marjo C.E., Roessner U., Harris A.T. Facile synthesis, stabilization, and anti-bacterial performance of discrete Ag nanoparticles using Medicago sativa seed exudates. Jour-nal of Colloid and Interface Science, 2011, 353(2): 433-444 (doi: 10.1016/j.jcis.2010.09.088).
  • Grishchenko L.A., Medvedeva S.A., Aleksandrova G.P., Feoktistova L.P., Sapozhnikov A.N., Sukhov B.G., Trofimov B.A. Redox reactions of arabinogalactan with silver ions and formation of nanocomposites. Russian Journal of General Chemistry, 2006, 76(7): 1111-1116 (doi: 10.1134/S1070363206070189).
  • Anuradha K., Bangal P., Madhavendra S.S. Macromolecular arabinogalactan polysaccharide me-diated synthesis of silver nanoparticles, characterization and evaluation. Macromolecular Research, 2016, 24(2): 152-162 (doi: 10.1007/s13233-016-4018-4).
  • Alexandrova V.A., Shirokova L.N., Sadykova V.S., Baranchikov A.E. Antimicrobial activity of silver nanoparticles in a carboxymethyl chitin matrix obtained by the microwave hydrothermal method. Applied Biochemistry and Microbiology, 2018, 54(5): 496-500 (doi: 10.1134/S0003683818050046).
  • Sukhov B.G., Aleksandrova G.P., Grishchenko L.A., Feoktistova L.P., Sapozhnikov A.N., Proid-akova O.A., T'Kov A.V., Medvedeva S.A., Trofimov B.A. Nanobiocomposites of noble metals based on arabinogalactan: preparation and properties. Journal of Structural Chemistry, 2007, 48(5): 922-927 (doi: 10.1007/s10947-007-0136-3).
  • Ahmad A., Mukherjee P., Senapati S., Mandal D., Khan M.I., Kumar R., Sastry M. Extracellular biosynthesis of silver nanoparticles using the fungus Fusarium oxysporum. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2003, 28(4): 313-318 (doi: 10.1016/S0927-7765(02)00174-1).
  • Gurunathan S. Biologically synthesized silver nanoparticles enhance antibiotic activity against Gram-negative bacteria. Journal of Industrial and Engineering Chemistry, 2015, 29: 217-226 (doi: 10.1016/j.jiec.2015.04.005).
  • Gurunathan S., Jeong J.K., Han J.W., Zhang X.F., Park J.H., Kim J.H. Multidimensional effects of biologically synthesized silver nanoparticles in Helicobacter pylori, Helicobacter felis, and human lung (L132) and lung carcinoma A549 cells. Nanoscale Research Letters, 2015, 10(1): 1-17 (doi: 10.1186/s11671-015-0747-0).
  • Lamprecht M.R., Sabatini D.M., Carpenter A.E. CellProfilerTM: free, versatile software for au-tomated biological image analysis. Biotechniques, 2007, 42(1): 71-75 (doi: 10.2144/000112257).
  • Balouiri M., Sadiki M., Ibnsouda S.K. Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: a review. Journal of Pharmaceutical Analysis, 2016, 6(2): 71-79 (doi: 10.1016/j.jpha.2015.11.005).
  • Shah M., Fawcett D., Sharma S., Tripathy S.K., Poinern G.E.J. Green synthesis of metallic nanoparticles via biological entities. Materials, 2015, 8(11): 7278-7308 (doi: 10.3390/ma8115377).
  • Kaveh R., Li Y.-S., Ranjbar S., Tehrani R., Brueck C.L., Van Aken B. Changes in Arabidopsis thaliana gene expression in response to silver nanoparticles and silver ions. Environmental Science and Technology, 2013, 47(18): 10637-10644 (doi: 10.1021/es402209w).
  • Geisler-Lee J., Wang Q., Yao Y., Zhang W., Geisler M., Li K., Huang Y., Chen Y., Kolma-kov A., Ma X. Phytotoxicity, accumulation and transport of silver nanoparticles by Arabidopsis thaliana. Nanotoxicology, 2013, 7(3): 323-337 (doi: 10.3109/17435390.2012.658094).
  • Velmurugan N., Kumar G., Han S.S., Nahm K.S., Lee Y.S. Synthesis and characterization of potential fungicidal silver nano-sized particles and chitosan membrane containing silver particles. Iranian Polymer Journal (English Edition), 2009, 18(5): 383-392.
Еще
Статья научная