О контаминации импортируемой фетальной сыворотки крови крупного рогатого скота пестивирусами как факторе распространения вирусной диареи в условиях глобализации: мини-обзор

Автор: Глотов А.Г., Глотова Т.И., Котенева С.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 2 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

Пестивирусы - важная причина экономического ущерба в молочном и мясном скотоводстве. Болезни, вызываемые этими патогенами, распространены во всем мире (в том числе в России) с разной превалентностью, связанной с региональными особенностями ведения животноводства (А.Г. Глотов с соавт., 2002; М.И. Гулюкин с соавт., 2013; J.F., Ridpath, 2010). Возбудитель вирусной диареи - болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота (ВД-БС КРС, BVDV, Bovine Viral Diarrhea Virus) считается прототипным членом рода Pestivirus семейства Flaviviridae. Заболевание у КРС вызывают два разных вируса - BVDV1 и BVDV2. Потенциальный кандидат в члены рода - официально не классифицированный вирус BVDV3 (атипичный пестивирус), проявляющий высокое сходство с BVDV1 и BVDV2. Его присутствие в популяции КРС может компрометировать программы контроля (эрадикации) вирусной диареи (F.V. Bauermann, 2013). Этот вирус требует особого внимания, так как он впервые был выделен в Европе в 2004 году из эмбриональной сыворотки КРС, изготовленной в Бразилии, и в настоящее время актуально изучение его распространения в других регионах мира (H. Schirrmeier с соавт., 2004). Общепризнано, что вирусы рода Pestivirus - наиболее распространенные контаминанты биологических препаратов (сыворотка эмбрионов коров, перевиваемые линии культур клеток, вакцины для животных и человека, интерфероны, трипсин, эмбрионы, стволовые клетки) (B. Makoschey с соавт., 2003; S.Q. Zhang с соавт., 2014). В условиях мировой глобализации быстрое развитие клеточных и биологических технологий приводит к повышению спроса на эмбриональную сыворотку, которую получают как побочный продукт при производстве мяса крупного рогатого скота (G. Gstraunthaler с соавт., 2013). Международное эпизоотическое бюро установило четкие требования, регулирующие проверку всех коммерческих лотов сывороток и клеточных культур на отсутствие двух типов BVDV и их РНК. Сыворотки крови, включая эмбриональные, должны быть свободны от этих вирусов и антител к ним (OIE, 2015). Те же требования должны распространяться на BVDV3. Отсутствие производства эмбриональной сыворотки в нашей стране создает условия для появления на рынке препаратов сомнительного качества. В отечественной литературе описаны случаи контаминации различных клеточных культур и сывороток нецитопатогенными вариантами пестивирусов (С.В. Алексеенкова с соавт., 2013). Вследствие этого культуральные живые вакцины, приготовленные с использованием некачественного сырья, могут быть потенциальным источником вирусов для восприимчивых животных, а контаминированные диагностические антигены - служить причиной ложных результатов исследования. Поэтому совершенствование системы контроля биологического загрязнения рассматривается как чрезвычайно важный этап в производстве вакцин и других биологических препаратов.

Еще

Пестивирусы, крупный рогатый скот, вирусы вирусной диареи, атипичный пестивирус, эмбриональная сыворотка крупного рогатого скота, контаминация

Короткий адрес: https://sciup.org/142213907

IDR: 142213907   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2018.2.248rus

Список литературы О контаминации импортируемой фетальной сыворотки крови крупного рогатого скота пестивирусами как факторе распространения вирусной диареи в условиях глобализации: мини-обзор

  • Ridpath J.F. Bovine viral diarrhea virus: global status. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 2010, 26(1): 105-121 ( ) DOI: 10.1016/j.cvfa.2009.10.007
  • Глотов А.Г., Глотова Т.И., Петрова О.Г., Нефедченко А.В., Татарчук А.Т., Котенева С.В., Ветров Г.В., Сергеев А.Н. Распространение вирусных респираторных болезней крупного рогатого скота. Ветеринария, 2002, 3: 17-21.
  • Гулюкин М.И., Юров К.П., Глотов А.Г., Донченко Н.А. Стратегия борьбы с вирусной диареей -болезнью слизистых крупного рогатого скота в животноводческих хозяйствах Российской Федерации. Вопросы вирусологии, 2013, 6: 13-18.
  • Simmonds P., Becher P., Bukh J., Gould E.A., Meyers G., Monath T., Muerhoff S., Pletnev A., Hesse R.R., Smith D.B., Stapleton J.T., ICTV Report Consortium. ICTV virus Taxonomy profiles: Flaviviridae. J. Gen. Virol., 2017, 98: 2-3 ( ) DOI: 10.1099/jgv.0.000672
  • Vilcek S., Durkovic B., Kolesarova M., Paton D.J. Genetic diversity of BVDV: consequences for classification and molecular epidemiology. Preventive Veterinary Medicine, 2005, 72: 31-35 ( ) DOI: 10.1016/j.prevetmed.2005.08.004
  • Pecora A., Malacari D.A., Ridpath J.F., Perez Aguirreburualde M.S., Combessies G., Odeón A.C., Romera S.A., Golemba M.D., Wigdorovitz A. First finding of genetic and antigenic diversity in 1b-BVDV isolates from Argentina. Res. Vet. Sci., 2014, 96(1): 204-222 ( ) DOI: 10.1016/j.rvsc.2013.11.004
  • Deng M., Ji S., Fei W., Raza S., He C., Chen Y., Chen H., Guo Al. Prevalence study and genetic typing of bovine viral diarrhea virus (BVDV) in four bovine species in China. PLoS ONE, 2015, 10(7): e0134777 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0134777
  • Evermann J.F., Ridpath J.F. Clinical and epidemiologic observations of bovine viral diarrhea virus in the northwestern United States. Vet. Microbiol., 2002, 89(2-3): 129-139 ( ) DOI: 10.1016/S0378-1135(02)00178-5
  • Carman S., Van Dreumel T., Ridpath J., Hazlett M., Alves D., Dubovi E., Tremblay R., Bolin S., Godkin A., Anderson N. Severe acute bovine viral diarrhea in Ontario, 1993-1995. J. Vet. Diagn. Invest., 1998, 10(1): 27-35 ( ) DOI: 10.1177/104063879801000106
  • Silveira S., Weber M.N., Mósena A.C., da Silva M.S., Streck A.F., Pescador C.A., Flores E.F., Weiblen R., Driemeier D., Ridpath J.F., Canal C.W. Genetic diversity of Brazilian bovine pestiviruses detected between 1995 and 2014. Transbound. Emerg. Dis., 2017, 64: 613-623 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12427
  • Maya L., Puentes R., Reolón E., Acuña P., Riet F., Rivero R., Cristina J., Colina R. Molecular diversity of bovine viral diarrhea virus in Uruguay. Arch. Virol., 2016, 161(3): 529-535 ( ) DOI: 10.1007/s00705-015-2688-4
  • Tajima M., Frey H.R., Yamato O., Maede Y., Moennig V., Scholz H., Greiser-Wilke I. Prevalence of genotypes 1 and 2 of bovine viral diarrhea virus in Lower Saxony, Germany. Virus Res., 2001, 76(1): 31-42 ( ) DOI: 10.1016/S0168-1702(01)00244-1
  • Novácková M., Jacková A., Kolesárová M., Vilcek S. Genetic analysis of a bovine viral diarrhea virus 2 isolate from Slovakia. Acta Virologica, 2008, 52(3): 161-166.
  • Luzzago C., Lauzi S., Ebranati E., Giammarioli M., Moreno A., Cannella V., Masoero L., Canelli E., Guercio A., Caruso C., Ciccozzi M., De Mia G.M., Acutis P.L., Zehender G., Peletto S. Extended genetic diversity of bovine viral diarrhea virus and frequency of genotypes and subtypes in cattle in Italy between1995 and 2013. BioMed Res. Int., 2014, 2014: Article ID 147145 ( ) DOI: 10.1155/2014/147145
  • Oem J.K., Hyun B.H., Cha S.H., Lee K.K., Kim S.H., Kim H.R., Park C.K., Joo Y.S. Phylogenetic analysis and characterization of Korean bovine viral diarrhea viruses. Vet. Microbiol., 2009, 139(3-4): 356-360 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2009.06.017
  • Yamamoto T., Kozasa T., Aoki H., Sekiguchi H., Morino S., Nakamura S. Genomic analyses of bovine viral diarrhea viruses isolated from cattle imported into Japan between 1991 and 2005. Vet. Microbiol., 2008, 127(3-4): 386-371 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2007.08.020
  • Ochirkhuu N., Konnai S., Odzaya B., Gansukh S., Murata S., Ohashi K. Molecular detection and characterization of bovine viral diarrhea virus in Mongolian cattle and yaks. Arch. Virol., 2016, 161(8): 2279-2283 ( ) DOI: 10.1007/s00705-016-2890-z
  • Giangaspero M., Harasawa R. Characterization of genotypes among bovine viral diarrhea virus type1 strains according to palindromic nucleotide substitutions in the genomic 5ґ-untranslated region. J. Virol. Methods, 2014, 195: 34-53 ( ) DOI: 10.1016/j.jviromet.2013.10.003
  • Bauermann F.V., Ridpath J.F., Weiblen R., Flores E.F. HoBi-like viruses: an emerging group of pestiviruses. J. Vet. Diagn. Invest., 2013, 25(1): 6-15 ( ) DOI: 10.1177/1040638712473103
  • Glotov A.G., Glotova T.I. Atypical bovine pestiviruses (review). Agricultural Biology, 2015, 50(4): 399-408 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2015.4.399eng
  • Schirrmeier H., Strebelow G., Depner K., Hoffmann B., Beer M. Genetic and antigenic characterization of an atypical pestivirus isolate, a putative member of a novel pestivirus species. J. Gen. Virol., 2004, 85: 3647-3652 ( ) DOI: 10.1099/vir.0.80238-0
  • Weber M.N., Mosena A.C.S., Simoes S.V.D., Almeida L.L., Pessoa C.R., Budaszewski R.F., Silva T.R., Ridpath J.F., Riet-Correa F., Driemeier D., Canal C.W. Clinical presentation resembling mucosal disease associated with "HoBi"-like pestivirus in a field outbreak. Transbound. Emerg. Dis., 2016, 63(1): 92-100 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12223
  • Mao L., Li W., Zhang W., Yang L., Jiang J. Genome sequence of a novel Hobi-like pestivirus in China. J. Virol., 2012, 86(22): 12444 ( ) DOI: 10.1128/JVI.02159-12
  • Haider N., Rahman M.S., Khan S.U., Mikolon A., Gurley E.S., Osmani M.G., Shanta I.S., Paul S.K., Macfarlane-Berry L., Islam A., Desmond J., Epstein J.H., Daszak P., Azim T., Luby S.P., Zeidner N., Rahman M.Z. Identification and epidemiology of a rare HoBi-like pestivirus strain in Bangladesh. Transbound. Emerg. Dis., 2014, 61: 193-198 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12218
  • Mishra N., Rajukumar K., Pateriya A., Kumar M., Dubey P., Behera S.P., Verma A., Bhardwaj P., Kulkarni D.D., Vijaykrishna D., Reddy N.D. Identification and molecular characterization of novel and divergent HoBi-like pestiviruses from naturally infected cattle in India. Vet. Microbiol., 2014, 174: 239-246 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2014.09.017
  • Decaro N., Lucente M.S., Mari V., Uttenthal A., Polak M.P., Ståhl K., Alenius S., Shan H., Yin H., Belák S. Atypical pestivirus and severe respiratory disease in calves, Europe. Emerg. Infect. Dis., 2011, 17(8): 1549-1552 ( ) DOI: 10.3201/eid1708.101447
  • Giammarioli M., Ridpath J.F., Rossi E., Bazzucchi M., Casciari C., De Mia G.M. Genetic detection and characterization of emerging HoBi-like viruses in archival foetal bovine serum batches. Biologicals, 2015, 43(4): 220-224 ( ) DOI: 10.1016/j.biologicals.2015.05.009
  • Gstraunthaler G., Lindl T., van der Valk J. A plea to reduce or replace fetal bovine serum in cell culture media. Cytotechnology, 2013, 65(5): 791-793 ( ) DOI: 10.1007/s10616-013-9633-8
  • Gstraunthaler G. Alternatives to the use of fetal bovine serum: serum-free cell culture. ALTEX, 2003, 20(4): 275-281.
  • Flatschart R.B., Caldas L.A., Almeida D.O., dos Santos N.C., Boldrini L.C., Granjeiro J.M., Folgueras-Flatschart A.V. The Impact of BVDV presence on fetal bovine serum used in the biotechnology industry. In: Advances in medicine and biology. Nova Biomedical, New York, 2016. V. 95: 75-95.
  • Zhang S.Q., Guo B.T.L., Wang F.X., Zhu H.W., Wen Y.J., Cheng S. Genetic diversity of bovine viral diarrhea viruses in commercial bovine serum batches of Chinese origin. Infection, Genetics and Evolution, 2014, 27: 230-233 ( ) DOI: 10.1016/j.meegid.2014.07.021
  • Häusl P. Fetal Bovine Serum running short. European Biotechnology -Life Sciences and Industry Magazine, 2008. Режим доступа: http://www.european-biotechnology-news.com. Без даты.
  • Market Research Reports. Cell Culture Market by Equipment -Global Forecast to 2018. Режим доступа: http://www.rnrmarketresearch.com. Без даты.
  • BCC Research. Global Markets for Media, Sera and Reagents in Biotechnology. 2015. Режим доступа: http://www.bccresearch.com. Без даты.
  • Market Research Reports. Cell Expansion Market by Product -Forecast to 2019. Режим доступа: http://www.reportlinker.com. Без даты.
  • Davis D., Hirschi S.D. Fetal bovine serum: what you should ask your supplier and why. BioProcess. J., 2014, 13(1): 19-21 ( ) DOI: 10.12665/J131.DavisHirschi
  • Makoschey B., van Gelder P.T., Keijsers V., Goovaerts D. Bovine viral diarrhoea virus antigen in foetal calf serum batches and consequences of such contamination for vaccine production. Biologicals, 2003, 31(3): 203-208 ( ) DOI: 10.1016/S1045-1056(03)00058-7
  • EMA. Guideline on the use of bovine serum in the manufacture of human biological medicinal products. 2013. Режим доступа: http://www.ema.europa.eu/docs/en_GB/document_libra-ry/Scientific_guideline/2013/06/WC500143930.pdf. Дата обращения: 09.04.2018.
  • Siegel W., Foster L. Fetal bovine serum: the impact of geography. BioProcess. J., 2013, 12(3): 28-30 ( ) DOI: 10.12665/J123.Siegel
  • Xia H., Vijayaraghavan B., Belák S., Liu L. Detection and identification of the atypical bovine pestiviruses in commercial foetal bovine serum batches. PLoS ONE, 2011, 6(12): e28553 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0028553
  • Bauermann F.V., Harmon A., Flores E.F., Falkenberg S.M., Reecy J.M., Ridpath J.F. In vitro neutralization of HoBi-like viruses by antibodies in serum of cattle immunized with inactivated or modified live vaccines of bovine viral diarrhea viruses 1 and 2. Vet. Microbiol., 2013, 166(1-2): 242-245 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2013.04.032
  • Bauermann F.V., Flores E.F., Falkenberg S.M., Weiblen R., Ridpath J.F. Lack of evidence for the presence of emerging HoBi-like viruses in North American fetal bovine serum lots. J. Vet. Diagn. Invest., 2014, 26(1): 10-17 ( ) DOI: 10.1177/1040638713518208
  • Daryany M.K.A., Hosseini S.M., Raie M., Fakharie J., Zareh A. Study on continuous (254 nm) and pulsed UV (266 and 355 nm) lights on BVD virus inactivation and its effects. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology, 2009, 94(2): 120-124 ( ) DOI: 10.1016/j.jphotobiol.2008.10.009
  • Ceylan C., Severcan F., Ozkul A., Severcan M., Bozoglu F., Taheri N. Biophysical and microbiological study of high hydrostatic pressure inactivation of Bovine Viral Diarrhea virus type 1 on serum. Vet. Microbiol., 2012, 154(3-4): 266-271 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2011.07.026
  • Hodgson J. To treat or not to treat: that is the question for serum. Bio/Technology, 1995, 13(4): 333-343 ( ) DOI: 10.1038/nbt0495-333
  • OIE. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. P. 2, S. 2.4. Ch. 2.4.8. Bovine viral diarrhoea. Paris, France, 2015.
  • Flatschart R.B., Caldas L.A., de Oliveira Almeida D., Correeia dos Santos N., da Cunha Boldrini L., Granjeiro M.J., Flatschart A.V.F. The impact of BVDV presence on fetal bovine serum used in the biotechnology industry. In: Advances in Medicine and Biology/L.V. Berhardt (ed.). Nova Science Publishers, Inc., 2016, V. 95, Chapter 4: 75-93.
  • Алексеенкова С.В., Юров Г.К., Гальнбек Т.В., Калита И.А., Юров К.П. Проверка клеточных культур на контаминацию вирусом диареи крупного рогатого скота -необходимое условие производства биологических препаратов. Российский ветеринарный журнал, 2013, 1: 15-18.
  • Урываев Л.В., Ионова К.С., Дедова А.В., Дедова Л.В., Селиванова Т.К., Парасюк Н.А., Мезенцева М.В., Костина Л.В., Гущина Е.А., Подчерняева Р.Я., Гребенникова Т.В. Анализ контаминации клеточных культур пестивирусом BVDV и микоплазмами. Вопросы вирусологии, 2012, 5(57): 15-21.
  • Koteneva S.V., Maksyutov R.A., Glotova T.I., Glotov A.G. Identification of the bovine atypical pestivirus in biological samples. Agricultural Biology, 2017, 52(6): 1259-1264 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2017.6.1259eng
Еще
Статья обзорная