Обоснование техники инъекционного доступа к мочевыводящим органам и придаточным половым железам у кролика

В последнее время все чаще возникает необходимость всестороннего исследования различных органов и систем мелких животных, что обусловлено интенсивно развивающимися темпами пушного звероводства и кролиководства [8; 9]. Как следствие интенсификации технологических процессов и воздействия антропогенных и техногенных факторов возникают различные патологические процессы во внутренних органах, в частности в органах мочеполового аппарата [2; 5]. Для проведения диагностических и лечебных манипуляций в области таза и тазовой полости нередко становится необходимым введение местноанестезирующих средств. В литературе, касающейся техники проведения новокаиновых блокад, имеются сведения, относящиеся к крупным сельскохозяйственным животным [7], пушным зверям [3] и мелким домашним животным [4].

Цель исследования - обосновать технику инъекционного доступа к мочевыводящим органам и придаточным половым железам у кролика.

Задачи исследования: разработать принципиально новый подход к технике инъекционного доступа к мочеполовому каналу и придаточным половым железам, определить оптимальные инъекционные доступы к нервам заднего отдела мочевыводящих органов и придаточных половых желез кролика.

Материалы и методы исследования

Для проведения морфологических и клинических исследований объектом были выбраны кролики. Использован комплексный методологический подход, включающий рентгеноурографический метод, методику введения рентгеноконтрастного вещества Тразограф® в полость мочевого пузыря и соединительные ткани, окружающие органы, расположенные в тазовой полости. Исследования проводились на кафедре анатомии, гистологии, физиологии и патологической анатомии и в Университетской ветеринарной клинике ФГБОУ ВО Омский ГАУ (г. Омск). Исследуемых животных делили на две группы по 5 голов (контрольную и опытную). В каждой группе всего изучено по 5 половозрелых особей самцов кроликов. Животным контрольной группы оперативным путем вводили рентгеноконтрастное вещество, осуществляя вкол иглы со стороны седалищной дуги [4; 7]. В опытной группе животным осуществляли оперативный доступ со стороны лонного сращения.

Результаты исследования и их обсуждение

Использование местноанестезирующих средств для обезболивания внутренних органов и применение их в комплексе с другими методами патогенетической терапии практикуется в ветеринарной практике уже не одно десятилетие. Наиболее известный способ доставки новокаина к органам тазовой полости у коров по А.Д. Ноздрачеву [7] имеет существенные и зачастую непреодолимые препятствия при применении его у мелких животных в связи с технически сложным инъекционным доступом со стороны дорсальной стенки таза.

Наиболее близок по техническому исполнению к рассматриваемому способ внут-ритазовой новокаиновой блокады у котов [4], который включает введение инъекционной иглы со стороны седалищной дуги обоюдно по направлению к правому и левому тазобедренным суставам. Такая техника обеспечивает концентрацию местноанестезирующих веществ в соединительной ткани, в которой залегают ветви тазового нервного сплетения. К недостаткам данного способа можно отнести относительную травматичность в связи с некоторой сложностью продвижения инъекционной иглы. Имеется определенный риск осложнений при попадании в забрюшинное пространство растворов инъецируемых жидкостей.

Предложенный способ блокады нервов мочевыводящих органов и придаточных половых желез включал определение оптимальной точки вкола иглы для инъекции 0,5%-ного раствора новокаина. Точка вкола иглы определена на вентральной стенке живота на пересечении линии соединения тазобедренных суставов и медиальной линии живота. Ориентиром служили краниальный край лонного сращения и вентральный лонный бугорок (рис. 1).

Рис. 1. Точка вкола инъекционной иглы у кролика

Животным контрольной группы после предварительного обездвиживания и местной анестезии проводили инъекцию препарата Тразограф® согласно технике, описанной в литературе [4], со стороны седалищной дуги латерально по направлению сначала к одному, а потом к другому тазобедренному суставу на глубину до 10 мм, инъецируя по 0,3–0,5 мл раствора (рис. 2).

Рис. 2. Вкол инъекционной иглы кролику контрольной группы (фото с рентгенограммы в прямой проекции)

Животным опытной группы также после предварительного обездвиживания и местной анестезии проводили инъекцию препарата Тразограф® согласно разработанной технике, инъецировали 0,5 мл раствора.

Исследования рентгеноконтрастных препаратов показывают их безопасность и быстрое выведение из организма животного без каких-либо видимых изменений со стороны органов и систем животного [1; 8].

Способ блокады нервов мочевыводящих органов и придаточных половых желез у мелких животных осуществляли следующим образом. После предварительного обездвиживания животное фиксировали в спинном положении. Операционное поле готовили путем выстригания и выбривания шерстного покрова по бокам от белой линии живота, отступая на 2–3 см в разные стороны от вентрального лонного бугорка. Место инъекции обрабатывали антисептическим раствором, обезболивали 0,5%-ным раствора новокаина. Вкол инъекционной иглы для внутримышечных инъекций 25G1 (0,5^25 мм) осуществляли в определенной ранее точке на глубину 1,5–2 см под углом 35–45% к брюшной стенке в каудодорсальном направлении. Ориентиром служили вентральный лонный бугорок и краниальный край лонного сращения.

В обеих группах проводили рентгенологический контроль в двух проекциях непосредственно после введения препарата Тразограф®. Для визуализации мочеполового канала и мочевого пузыря в уретру и мочевой пузырь был введен подключичный катетер, через который в полость мочевого пузыря также был введен препарат Тразограф®. У животных контрольной группы в половине случаев визуализировался урографин за пределами тазовой полости, который пропитывал окружающую соединительную ткань и мыщцы области таза. В опытной группе во всех случаях после инъекции раствор концентрировался в области мочевыводящих органов и придаточных половых желез (рис. 3). На следующий день проводили контрольные рентгенографические исследования, которые показали полное выведение урографина из организма животных.

Рис. 3. Распределение рентгеноконтрастного вещества вокруг мочеполового канала и придаточных половых желез (фото с рентгеноурограммы в прямой проекции)

Таким образом, предложенный способ блокады нервов мочевыводящих органов и придаточных половых желез у кроликов обладает низкой травматичностью и низкой вероятностью появления осложнений. Простота введения инъекционной иглы способствует наименьшему травмированию окружающих тканей и полых органов, в частности нервов и мочевого пузыря. Снижение вероятности появления осложнений обеспечивается за счет точного попадания инъецируемых растворов, которые доставляются непосредственно к нервам заднего отдела мочевыводящих органов и придаточных половых желез.

Заключение

Предложенный способ блокады нервов мочевыводящих органов и придаточных половых желез у кроликов может быть использован в экспериментальной и клинической хирургии для проведения патогенетической терапии органов тазовой полости и создания модели блокады нервов заднего отдела мочевыводящих органов и придаточных половых желез у хищных пушных зверей и мелких домашних животных. Указанная точка вкола иглы обеспечивает технически более легкое введение инъекционных растворов в тазовую полость, что снижает травматичность способа и обеспечивает быстрый и эффективный доступ непосредственно к нервным сплетениям мочевыводящих органов и придаточных половых желез, исключающий попадание инъецируемого раствора в забрюшинное пространство, что снижает вероятность появления осложнений. Результаты исследований техники инъекционного доступа к мочевыводящим органам и придаточным половым железам подтверждаются и в значительной степени дополняются данными относительно других видов крупных и мелких животных [4; 7].

V.N. Telenkov

Omsk State Agrarian University named after P.A. Stolypin, Omsk

Justification of the technique of injecting access to the urinary organs and accessory reproductive glands in a rabbit