Оценка физиологического состояния культивируемых гидробионтов Mizuhopecten yessoensis

Автор: Слободскова Валентина Владимировна, Лескова Светлана Евгеньевна, Челомин Виктор Павлович

Журнал: Известия Самарского научного центра Российской академии наук @izvestiya-ssc

Статья в выпуске: 6-1 т.17, 2015 года.

Бесплатный доступ

В работе представлены результаты исследования физиологического состояния Mizuhopecten yessoensis, культивируемого в бух. Северная. Для этой цели были использованы биохимические маркеры: индекс генетического повреждения, степень окислительной деградации липидов и концентрацию тяжелых металлов в тканях гребешка приморского. Показано, что при культивировании моллюски испытывают окислительный стресс, который сопровождается повреждением молекулы ДНК клеток жабр и пищеварительной железы гидробионтов.

Окислительный стресс, малоновый диальдегид, аквакультура

Короткий адрес: https://sciup.org/148204249

IDR: 148204249

Список литературы Оценка физиологического состояния культивируемых гидробионтов Mizuhopecten yessoensis

Состояние мирового рыболовства и аквакультуры. 2014. http://www.fao.org/3/3fc6a307-540d-4335-8edf-613df95251fd/i3720r.pdf
Гайко, Л.А. Марикультура: прогноз урожайности с учетом воздействия абиотических факторов. -Владивосток: Дальнаука, 2006. 204 с.
Коваль, И.В. Состояние и тенденции развития аквакультуры в Приморском крае/И.В. Коваль, И.А. Овчинникова//Вестник ТГУ. 2013. №1. С. 36-47.
Read, P.A. Management of environmental impacts of marine Aquaculture in Europe/P.A. Read, T.F. Fernandes//Aquaculture. 2003. Vol. 226. P. 139-163.
Ansari, Z.A. Effect of high organic enrichment of benthic polychaete population in an estuary/Z.A. Ansari, B.S. Ingole, A.H. Parulekar//Mar. Pollut. Bull. 1986. Vol. 17. P. 361-365.
Veer, H.W. Eutrophication and mussel culture in the western Dutch Wadden Sea: impact on the benthic ecosystem; hypothesis//Helgoland. Meerescentersuch., 1989. Vol. 43. N 3-4. P. 517-527.
Yokoyama, H. Environmental quality criteria for fish farms in Japan//Aquaculture. 2003. Vol. 226. P. 45-56.
Stenton-dozey J.M.E. Impact of mussel culture on macrobenthic community structure in Saldanha bay, South Africa/J.M.E. Stenton-dozey, L.F. Jackson, A.J. Busby//Marine Pollution Bulletin, 1999. Vol. 39. N 1-12. P. 357-366.
Hansen, L.P. The incidence of escaped farmed Atlantic salmon, Salmo salar, in the Faroese fishery and estimates of catches of wild salmon/L.P. Hansen, J.A. Jacobsen, R.A. Lund//ICES J. Mar. 1999. Vol. 56. P. 200-206.
Holmer, M. ICES Symposium on Environmental Effects of Mariculture: Introduction/M. Holmer, P. Lassus, J.E. Stewart, D.J. Wildish//ICES Journal of Marine Science. 2001. Vol. 58. P. 363-368.
Wu, R.S.S. Hypoxia: from molecular responses to ecosustem responses//Mar. Pollut. Bul. 2002. Vol. 45. P 35-45.
Buege, J.A. Microsomal lipid peroxidation/J.A. Buege, S.D. Aust//Methods in Enzymology. Academic Press. N.Y. 1978. Vol. 52. P. 302-310.
Julshamn, K. Subcellular distribution of major and minor elements in unexposed molluscs in western Norway-I. The distribution and binding of cadmium, zinc and copper in the liver and the digestive system of the oyster Ostrea edulis/K. Julshamn, K.-J. Andersen//Comp. Biochem. Physiol. 1983. Vol. 75A. P. 9-12.
Никаноров, А.М. Биомониторинг тяжелых металлов в пресных экосистемах/А.М. Никаноров, А.В. Жулидов, А.Д. Покаржевский. -Л.: Гидрометеоиздат, 1985. 144 c.
Singh, N.P. A simple technique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells/N.P. Singh, M.T. McCoy, R.R. Tice, E.L. Schneider//Exp. Cell Res. 1988. Vol. 175. P. 184-191.
Mitchelmore, C.L. Detection of DNA strand breaks in isolated mussels (Mytilus edulis) digestive gland cells using the “Comet” assay/C.L. Mitchelmore, C. Birmelin, D.V. Livingstone, J.K. Chipman//Ecotoxicology and Environmental Safety. 1998. Vol. 41. P. 51-58.
Cavas, T. In vivo genotoxicity testing of the amnesic shellfish poison (domoic acid) in piscine erythocytes using the micronucleus test and the comet assay/T. Cavas, S. Konen//Aquat. toxicol. 2008. Vol. 90. P. 154-159.
Rodriguez, H. Mapping of copper/hydrogen peroxide-induced DNA damage at nucleotide resolution in human genomic DNA by ligation-mediated polymerase chain reaction/H. Rodriguez, R. Drouin, G.P. Holmquist et al.//J. Biol. Chem. 1995. Vol. 270. P. 17633-17640.
Chelomin, V.P. The effect of heavy metals on processes of lipid peroxidation in microsomal membranes from the hepatopancreas of bivalve mollusks Mizuhopecten yessoensis/V.P. Chelomin, N.N. Belcheva//Comp. Biochem. Physiol. 1992. Vol. 103 C. P. 419-422.
Regoli, F. Glutathione, glutathione-dependent and antioxidant enzymes in mussel, Mytilis galloprovincialis, exposed to metals under field and laboratory conditions: implications for the use of biochemical biomarkers/F. Regoli, G. Principato//Aquat. Toxicol. 1995. Vol. 31. P. 143-164.
Stohs, S.J. Oxidative mechanisms in the toxicity of metal ions/S.J. Stohs, D. Bagchi//Free Rad. Biol. Med. 1995. Vol. 18, № 2. P. 312-336.
Livingstone, D.R. Contaminant-stimulated reactive oxygen species production and oxidative damage in aquatic organisms//Mar. Pollut. Bull. 2001. Vol. 42, Issue 8. P. 656-666.
Chandran, R. Effect of cadmium and zine on antioxidant enzyme activity in the gastropod Achatina filica/R. Chandran, A. Sivakumar, S. Mohandass, M. Aruchami//Compar. Biochem. Physiol. 2005. Vol. 140 C. P. 422-426.
Довженко, Н.В. Окислительный стресс, индуцируемый кадмием в тканях двустворчатого моллюска Modiolus modiolus/Н.В. Довженко, А.В. Куриленко, Н.Н. Бельчева, В.П. Челомин//Биол. моря. 2005. Т. 31, № 5. С. 358-362.
Лукьянова, О.Н. Молекулярные биомаркеры. -Владивосток: Изд-во ДВГАЭУ, 2001. 196 с.

Еще

Статья научная