Оценка функционального состояния Chlorella vulgaris suboblonga и Phaeodactylum tricornutum при акклимации к низкой температуре

Автор: Соломонова Екатерина Сергеевна

Журнал: Вестник Тверского государственного университета. Серия: Биология и экология @bio-tversu

Рубрика: Ботаника

Статья в выпуске: 1, 2017 года.

Бесплатный доступ

Исследована возможность применения диацетат флуоресцеина (FDA) (проточная цитометрия) и коэффициента переменной флуоресценции хлорофилла (k) для экспресс-оценки функционального состояния водорослей Chlorellavulgaris suboblonga и Phaeodactylum tricornutum в условиях акклимации культур к низкой температуре в накопительном режиме. Сублетальные значения температуры и освещённости не оказывали значительного влияния на жизнеспособность и целостность мембран клеток исследуемых видов. Об этом свидетельствует увеличение интенсивности свечения флуоресценции FDA по мере роста культур. Изменение параметра FDA fl , возможно рассматривать как компенсаторную реакцию клеток на действие температуры. Коэффициент переменной флуоресценции имел высокие значения, где сохранялся темп деления клеток.

Еще

Микроводоросли, температура, проточная цитомтерия, внутриклеточные эстеразы, диацетат флуоресцеина, переменная флуоресценция

Короткий адрес: https://sciup.org/146116695

IDR: 146116695

Список литературы Оценка функционального состояния Chlorella vulgaris suboblonga и Phaeodactylum tricornutum при акклимации к низкой температуре

  • Берсенева Г.П., Сергеева Л.М., Финенко З.З. 1978. Адаптация морских планктонных водорослей к свету//Океанология. Т. 18. № 2. С. 298-306.
  • Марушкина Е.В. 2005. Исследование состояния популяции водоросли Scenedesmus quadricauda в норме и при интоксикации методом микрокульур: автореф. дис…. канд. биол. наук. М.: МГУ. 21 с.
  • Парсонс Т.Р., Такахаши М., Харгрейв Б. 1982. Биологическая океанография. М.: Легкая промышленность. 432 с.
  • Соломонова Е.С., Муханов В.С. 2011. Оценка доли физиологически активных клеток в накопительных культурах Phaeodactylum tricornutum и Nitzschia sp. с помощью проточной цитометрии//Морской экологический журнал. №. 10. С. 67-72.
  • Соломонова Е.С., Акимов А.И. 2012. Оценка функционального состояния культуры Chlorella vulgaris Suboblonga методами проточной цитометрии и переменной флуоресценции//Морской экологический журнал. № 4. С. 78-84
  • Соломонова Е.С., Акимов А.И. 2014. Соотношение мёртвой и живой компоненты взвеси в культурах микроводорослей в зависимости от стадии роста и освещённости//Морской экологический журнал. Т.1. С.73-81.
  • Стельмах Л.В., Куфтаркова Е.А, Акимов И.А., Бабич И.И., Кожемяка А.Б. 2010. Использование переменной флюоресценции хлорофилла in vivo для оценки функционального состояния фитопланктона//Система контроля окружающей среды. Т 13. С. 263-268.
  • Финенко З.З., Ланская Л.А. Сборник научных трудов. 1971/ред. Хайлова К. М. Киев: Наукова думка. С. 22-51.
  • Шоман Н. Ю., Акимов А. И. 2013. Действие света и температуры на удельную скорость роста диатомовых водорослей Phaeodactylum tricornutum и Nitzschia sp.№ 3.//МЭЖ. Т. 10. С. 38-42.
  • Agustí S., Duarte C. M. 2000. Strong seasonality in phytoplankton cell lysis in the NW Mediterranean littoral//Limnology and Oceanography. V. 45. № 4. P. 940-947.
  • Duarte C. M., Agustı S., Kennedy H., Vaqué D. 1999. The Mediterranean climate as a template for Mediterranean marine ecosystems: the example of the northeast Spanish littoral//Progress in Oceanography. V. 44. № 1. P. 245-270.
  • Fork D.C., Murata N., Sato N. 1979. Effect of growth temperature on the lipid and fatty acid composition, and the dependence on temperature of light-induced redox reactions of cytochrome f and of light energy redistribution in the thermophilic blue-green alga Synechococcus lividus//Plant physiology. V. 63. № 3. P. 524-530.
  • Jochem F.J. 1999. Dark survival strategies in marine phytoplankton assessed by cytometric measurement of metabolic activity with fluorescein diacetate//Marine biology. V. 135. № 4. P. 721-728.
  • Kolber Z., Falkowski P.G. 1993. Use of active fluorescence to estimate phytoplankton photosynthesis in situ//Limnology and Oceanography. V. 38. № 8. Р. 1646-1665.
  • Llabrés M., Agustí S. 2008. Extending the cell digestion assay to quantify dead phytoplankton cells in cold and polar waters//Limnol. Oceanogr. Methods. V. 6. № 659. P. e666.
  • Mura P., Agusti S., del Giorgio P.A., Gasol J., Duarte C. 1996. Grazer-controlled production of nutrient-poor littoral NW Mediterranean phytoplankton: In situ experimental evidence//Mar. Ecol. Prog. Ser. V. 130. P. 2-13.
  • Prado R., García R., Rioboo C., Herrero C., Abalde J., Cid A. 2009. Comparison of the sensitivity of different toxicity test endpoints in a microalga exposed to the herbicide paraquat//Environment international. V. 35. № 2. Р. 240-247.
  • Prado R., García R., Rioboo C., Herrero C., Cid A. 2015. Suitability of cytotoxicity endpoints and test microalgal species to disclose the toxic effect of common aquatic pollutants//Ecotoxicology and environmental safety. V. 114. Р. 117-125.
  • Prado R., Rioboo C., Herrero C., Cid A. 2011. Characterization of cell response in Chlamydomonas moewusii cultures exposed to the herbicide paraquat: Induction of chlorosis//Aquatic Toxicology. V. 102. № 1. Р. 10-17.
  • Quinn P. J., Williams W. P. 1983. The structural role of lipids in photosynthetic membranes//Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Reviews on Biomembranes. V. 737. № 2. P. 223-266.
  • Quinn P. J. 1988. Effects of temperature on cell membranes//Symp Soc Exp Biol. V. 42. P. 237-258.
Еще
Статья научная