Оценка генетического разнообразия образцов капусты кочанной (Brassica oleracea L.) с использованием SSR маркеров
Автор: Домблидес А.С., Бондарева Л.Л., Пивоваров В.Ф.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Статья в выпуске: 5 т.55, 2020 года.
Бесплатный доступ
Из всех разновидностей капусты в Российской Федерации наиболее распространены традиционные сорта и гибриды капусты кочанной Brassica oleracea L . сonvar. capitata (L.). Классификация селекционного материала с использованием ДНК маркеров позволяет выделить ценные генотипы и установить между ними генетические взаимосвязи для последующей селекции на генетически отличимые формы. Микросателлитные маркеры (simple sequence repeats, SSR) широко используют для генетической идентификации и генотипирования сельскохозяйственных культур. Работы на B. oleracea L. показали их высокую эффективность по выявлению полиморфизма между разновидностями, сортами и внутри сортов. В настоящем исследовании мы впервые установили генетические взаимосвязи между селекционными образцами капусты кочанной отечественной селекции на основе полиморфизма микросателлитных локусов. При сравнении трех разновидностей обнаружена тесная генетическая близость между генотипами савойской и белокочанной капусты. Целью работы было выявление генетических взаимоотношений между селекционными образцами Brassica oleracea L. сonvar. capitata (L.) Alef. var. capitata L. f. alba , var. capitata L. f. rubra и var. sabauda L. на основе типирования и генетической классификации с помощью SSR маркеров, а также сопоставление данных ДНК-анализа с принадлежностью изученных генотипов к соответствующими сортотипам и группами спелости. Объектом исследования были 24 селекционных образца капусты кочанной из коллекции Федерального научного центра овощеводства (ФГБНУ ФНЦО), включая краснокочанную и савойскую разновидности, выведенные в ФГБНУ ФНЦО. Геномную ДНК выделяли из молодых листьев растений в фазу 2-3-го листа с использованием набора реагентов Сорб-ГМО-Б (ООО «Синтол», Россия). Для оценки чистоты и концентрации выделенной ДНК использовали спектрофотометр SmartSpec Plus («Bio-Rad», США). Для осуществления SSR-анализа отобрали 21 микросателлитный локус с известными последовательностями праймеров. Амплификацию осуществляли на приборе С1000 Touch («Bio-Rad», США). ПЦР-продукты разделяли методом вертикального электрофореза с использованием системы Sequi-Gen GT («Bio-Rad», США) в 6 % полиакриламидном секвенирующем геле. Размеры амплифицированных фрагментов определяли в сравнении с маркером молекулярных масс GeneRuler100 bp plus DNA ladder («Thermo Fisher Scientific», США). Полученные цифровые фотографии электрофореграмм анализировали в программе Image Lab 3.0 («Bio-Rad», США). Структуру популяции изучали в программе STRUCTURE 2.3.4 (https://web.stanford.edu/group/pritchardlab/home.html). Расчет генетических расстояний проводили в программе GenAlEx 6.5 для Microsoft Excel по методу M. Nei. Для построения UPGMA дендрограммы использовали алгоритм программы MEGA5.2. В результате анализа получили 103 аллеля со средним показателем 4,9 на локус. Размеры продуктов амплификации составляли 130-410 п.н. Величина информационного полиморфизма (PIC) для праймеров варьировала от 0,3 до 0,9. Анализ популяции выявил, что все образцы распределились по шести основным кластерам. Генетические дистанции варьировали от 0,060 до 0,186. Дендрограмма UPGMA, построенная на основе генетических дистанций, отражала происхождение исследуемых селекционных образцов. Так, сорта Белорусская 455, Подарок 2500, Амагер 611 и Зимовка 1474 с происхождением из Северо-Западной Европы, были объединены в общий кластер, где также находился гибрид Северянка F1, созданный с использованием этих сортов. Сорта, принадлежащие к сортотипу Дитмарская ранняя, - Июньская 3200, Стахановка 1513, Номер первый грибовский 147 образовали отдельный кластер, куда также входил раннеспелый гибрид Аврора F1, имеющий в своей родословной сорт Июньская 3200. Две селекционные линии, выделенные из гибрида Аврора F1, были генетически отдалены и располагались в другом подкластере. Сорта Слава 1305 и Слава грибовская 231, относящиеся к отдельному сортотипу Слава, располагались на отдельной ветви дендрограммы. Относительно недавно полученные сорт Парус и два гибрида Зарница F1 и Мечта F1 генетически отличались от остальных образцов. Московская поздняя 15, стародавний сорт местного происхождения, также образовал отдельную ветвь дендрограммы. Три сорта капусты савойской сгруппировались вместе, причем новый раннеспелый сорт Московская кружевница был генетически отдален от двух других. Образцы капусты краснокочанной образовывали свою группу с достаточным генетическим отдалением между образцами. Полученные результаты на основе изменчивости SSR локусов совпадали с данными о происхождении образцов капусты кочанной, подтверждая их принадлежность к определенным сортотипам и группам спелости, что позволит использовать этот селекционный материал в дальнейшем для получения новых форм.
Brassica oleracea l, капуста кочанная, ssr маркеры, генетическая идентификация, сортовой полиморфизм, сортотип
Короткий адрес: https://sciup.org/142229433
IDR: 142229433 | DOI: 10.15389/agrobiology.2020.5.890rus
Список литературы Оценка генетического разнообразия образцов капусты кочанной (Brassica oleracea L.) с использованием SSR маркеров
- Chepkemoi J. The world leaders in cabbage production. WorldAtlas, 2017. Режим доступа: worldat-las.com/articles/the-world-leadeis-in-cabbage-production.html. Дата обращения: 15.03.2020.
- Novotny C., Schulzova V., Krmela A., Hajslova J., Svobodova K., Koudela M. Ascorbic acid and glucosinolate levels in new czech cabbage cultivars: effect of production system and fungal infection. Molecules, 2018, 23(8): 1855 (doi: 10.3390/molecules23081855).
- Лизгунова Т.В. Культурная флора СССР. Том 11. Капуста. Л., 1984.
- Formisano G., Roig C., Esteras C., Ercolano M.R., Nuez F., Monforte A.J., Pico M.B. Genetic diversity of Spanish Cucurbita pepo landraces: an unexploited resource for summer squash breeding. Genetic Resources and Crop Evolution, 2012, 59(б): 1169-1184 (doi: 10.1007/s10722-011-9753-y).
- Collard B.C.Y, Mackill D.J. Marker-assisted selection: аn approach for precision plant breeding in the twenty-first century. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences, 2008, 363(1491): 557-572 (doi: 10.1098/rstb.2007.2170).
- Guichoux E., Lagache L., Wagner S., Chaumeil P., Léger P, Lepais O., Lepoittevin C., Ma-lausa T., Revardel E., Salin F., Petit R.J. Current trends in microsatellite genotyping. Molecular Ecology Resources, 2011, 11(4): 591-611 (doi: 10.1111/j.1755-0998.2011.03014.x).
- Lowe A.J., Moule C., Trick M., Edwards K.J. Efficient large-scale development of microsatellites for marker and mapping application in Brassica crop species. Theoretical and Applied Genetics, 2004, 108(6): 1103-1112 (doi: 10.1007/s00122-003-1522-7).
- Márquez-Lema A., Velasco L., Pérez-Vich B. Transferability, amplification quality, and genome specificity of microsatellites in Brassica carinata and related species. Journal of Applied Genetics, 2010, 51(2): 123-131 (doi: 10.1007/BF03195720).
- Thakur A.K., Singh K.H., Singh L., Nanjundanet J., Khan Y.J., Singh D. SSR marker variations in Brassica species provide insight into the origin and evolution of Brassica amphidiploids. Heredi-tas, 2018, 155(6): 1-11 (doi: 10.1186/s41065-017-0041-5).
- Raza A., Mehmood S.S., Ashraf F., Khan R.S.A. Genetic diversity analysis of Brassica species using PCR-based SSR markers. Gesunde Pflanzen, 2019, 71(1): 1-7 (doi: 10.1007/s10343-018-0435-y).
- Tonguc M., Griffiths P.D. Genetic relationships of Brassica vegetables determined using database derived sequence repeats. Euphytica, 2004, 137(2): 193-201 (doi: 10.1023/B:EUPH.0000041577.84388.43).
- Louarn S., Torp A.M., Holme I.B., Andersen S.B., Jensen B.D. Database derived microsatellite markers (SSRs) for cultivar differentiation in Brassica oleracea. Genetic Resources and Crop Evolution, 2007, 54(8): 1717-1725 (doi: 10.1007/s10722-006-9181-6).
- Saxena B., Kaur R., Bhardwaj S.V. Assessment of genetic diversity in cabbage cultivars using RAPD and SSR markers. Journal of Crop Science and Biotechnology, 2011, 14(3): 191-196 (doi: 10.1007/s12892-011-0018-2).
- Zhu S., Zhang X., Liu Q., Luo T., Tang Z., Zhou Y. The genetic diversity and relationships of cauliflower (Brassica oleracea var. botrytis) inbred lines assessed by using SSR markers. PLoS ONE, 2018, 13(12): e0208551 (doi: 10.1371/journal.pone.0208551).
- Артемьева А.М., Клоке Э., Чесноков Ю.В. Анализ филогенетических связей вида Brassica oleracea L. (капуста огородная). Информационный вестник ВОГиС, 2009, 13(4): 759-771.
- Izzah N.K., Lee J., Perumal S., Park J.Y., Ahn K., Fu D., Kim G.-B., Nam Y.-W., Yang T.-J. Microsatellite-based analysis of genetic diversity in 91 commercial Brassica oleracea L. cultivars belonging to six varietal groups. Genetic Resources and Crop Evolution, 2013, 60(7): 1967-1986 (doi: 10.1007/s10722-013-9966-3).
- Shapturenko M., Khotyleva L., Vakula S., Jakimovich A.V., Zabara Yu.M., Khotyleva L.V. Informative EST-SSR markers for genotyping and intraspecific differentiation of Brassica oleracea var. capitata L. Vavilov Journal of Genetics and Breeding, 2016, 20(1): 51-56.
- Чесноков Ю.В., Артемьева А.М. Оценка меры информационного полиморфизма генетического разнообразия. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(5): 571-578 (doi: 10.15389/agrobiology.2015.5.571rus).
- Pritchard J.K., Stephens M., Donnelly P. Inference of population structure using multilocus genotype data. Genetics, 2000, 155(2): 945-959.
- Earl D.A., vonHoldt B.M. STRUCTURE HARVESTER: a website and program for visualizing STRUCTURE output and implementing the Evanno method. Conservation Genetics Resources, 2012, 4(2): 359-361 (doi: 10.1007/s12686-011-9548-7).
- Peakall R., Smouse P.E. GenAlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research-an update. Bioinformatics, 2012, 28(19): 2537-2539 (doi: 10.1093/bioinfor-matics/bts460).
- Nei M. Genetic distance between populations. American Naturalist, 1972, 106(949): 283-392 (doi: 10.1086/282771).
- Nei M. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals. Genetics, 1978, 89(3): 583-590.
- Tamura K., Peterson D., Peterson N., Stecher G., Nei M., Kumar S. MEGA5: molecular evolutionary genetic analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Molecular Biology and Evolution, 2011, 28(10): 2731-2739 (doi: 10.1093/mol-bev/msr121).
- DeWoody J.A., Honeycutt R.L., Skow L.C. Microsatellite markers in white-tailed deer. Journal of Heredity, 1995, 86(4): 317-319 (doi: 10.1093/oxfordjournals.jhered.a111593).
- Елена Михайловна Попова. Ученый, селекционер. Основоположник научной отечественной селекции по капустным культурам. Научное наследие — воспоминания, развитие научных идей /Под ред. В.Ф. Пивоварова. М., 2007.
- El-Esawi M.A., Germaine K., Bourke P., Malone R. Genetic diversity and population structure of Brassica oleracea germplasm in Ireland using SSR markers. Comptes Rendus Biologies, 2016, 339(3-4): 130-140 (doi: 10.1016/j.crvi.2016.02.002).
- Peng L., Zhou L., Li Q., Wei D., Ren X., Song H., Mei J., Si J. Qian W. Identification of quantitative trait loci for clubroot resistance in Brassica oleracea with the use of Brassica SNP microarray. Frontiers in Plant Science, 2018, 9(822): 1-8 (doi: 10.3389/fpls.2018.00822).
- Kifuji Y., Hanzawa H., Terasawa Y., Ashutosh, Nishio T. QTL analysis of black rot resistance in cabbage using newly developed EST-SNP markers. Euphytica, 2013, 190(2): 289-295 (doi: 10.1007/s10681-012-0847-1).
- Mei J.Q., Ding Y.G., Lu K., Wei D.Y., Liu Y., Disi J.O., Li J., Liu L., Liu S., McKay J., Qian W. Identification of genomic regions involved in resistance against Sclerotinia sclerotiorum from wild Brassica oleracea. Theoretical and Applied Genetics, 2013, 126(2): 549-556 (doi: 10.1007/s00122-012-2000-x).
- Okazaki K., Sakamoto K., Kikuchi R., Saito A., Togashi E., Kuginuki Y., Matsumoto S., Hi-rai M. Mapping and characterization of FLC homologs and QTL analysis of flowering time in Brassica oleracea. Theoretical and Applied Genetics, 2007, 114(4): 595-608 (doi: 10.1007/s00122-006-0460-6).
- Uptmoor R., Schrag T., Stutzel H., Esch E. Crop model based QTL analysis across environments and QTL based estimation of time to floral induction and flowering in Brassica oleracea. Molecular Breeding, 2008, 21(2): 205-216 (doi: 10.1007/s11032-007-9121-y).
- Lv H., Wang Q., Zhang Y., Yang L., Fang Z., Wang X., Liu Y., Zhuang M., Lin Y., Yu H., Liu B. Linkage map construction using InDel and SSR markers and QTL analysis of heading traits in cabbage. Molecular Breeding, 2014, 34(1): 87-98 (doi: 10.1007/s11032-014-0019-1).
- Pang W., Li X., Choi S.R., Nguyen V.D., Dhandapani V., Kim Y.Y., Ramchiary N., Kim J.G., Edwards D., Batley J., Na J., Kim H.R., Lim Y.P. Mapping QTLs of resistance to head splitting in cabbage (Brassica oleracea L. var. capitata L.). Molecular Breeding, 2015, 35(5): 1-12 (doi: 10.1007/s11032-015-0318-1).
- Su Y., Liu Y., Li Z., Fang Z., Yang L., Zhuang M., Zhang Y. QTL analysis of head splitting resistance in cabbage (Brassica oleracea L. var. capitata) using SSR and InDel makers based on whole-genome re-sequencing. PLoS ONE, 2015, 10(9): e0138073 (doi: 10.1371/jour-nal.pone.0138073).
- Korir N.K., Han J., Shangguan L., Wang C., Kayesh E., Zhang Y., Fang J. Plant variety and cultivar identification: advances and prospects. Critical Reviews in Biotechnology, 2013, 33(2): 111125 (doi: 10.3109/07388551.2012.675314).