Оценка влияния микрофлоры объектов окружающей среды на возможность внестационарной колонизации дыхательных путей пациентов с муковисцидозом

Автор: Кондратенко Ольга Владимировна

Журнал: Ульяновский медико-биологический журнал @medbio-ulsu

Рубрика: Общая биология

Статья в выпуске: 4, 2018 года.

Бесплатный доступ

Цель исследования - оценка возможных рисков микробной колонизации дыхательных путей пациентов с муковисцидозом. Материалы и методы. Было проведено микробиологическое исследование 176 проб от членов семьи пациента и смывов с объектов с места проживания 17 семей Самарской области, в которых проживают пациенты с муковисцидозом. Посев каждой пробы осуществляли на следующие питательные среды: 5 % кровяной агар, универсальная хромогенная среда, OFPBL-агар для элективного выделения бактерий B. серааа complex, шоколадный агар, среда Сабуро для культивирования грибов. Посевы инкубировали при 37 и 28 °С в течение 24-48 ч. Посевы на средах OFPBL и Сабуро оставляли до 14 сут культивирования. Идентификацию выделенных культур проводили с помощью MALDI-Tof-масс-спектрометрии на приборе Microflex, Bruker. Результаты. Выделено 404 штамма микроорганизмов. Среди них - значительное количество штаммов неферментирующих грамотрицательных бактерий, имеющих клиническое значение при муковисцидозе, в т...

Еще

Муковисцидоз, окружающая среда, дыхательные пути, бактерии

Короткий адрес: https://sciup.org/14113386

IDR: 14113386   |   УДК: 579.63:616.24-008.8.078   |   DOI: 10.23648/UMBJ.2018.32.22705

Impact of microflora of environmental medium on ambulatory airway colonization in patients with cystic fibrosis

The aim of the study is to evaluate possible risks of respiratory tract microbial colonization in patients with cystic fibrosis. Materials and Methods. The authors conducted microbiological studies of 176 samples from family members and swabs from various objects taken in 17 families, in which patients with cystic fibrosis live. The research was conducted in Samara region. Each sample was analyzed for following culture media: 5 % blood agar, universal chromogenic culture medium, OFPBL-agar for elective isolation of B. sepacia complex bacteria, chocolate agar, and Saburo medium for fungi cultivation. Inoculations were incubated for 24-48 hours; the temperature was 37 and 28 °C. On OFPBL and Saburo media inoculations were left for incubation for 14 days. MALDI-Tof-mass spectrometry (Microflex, Bruker) was used to identify the isolated cultures. In general, 404 microbial strains were isolated. Among them there were many strains of non-fermentative gram-negative bacteria, which are of clinical importance in case of cystic fibrosis, namely Achromobacter spp...

Еще

Список литературы Оценка влияния микрофлоры объектов окружающей среды на возможность внестационарной колонизации дыхательных путей пациентов с муковисцидозом

  • Проворов Н.А., Тихонович И.А., ред. Генетические основы эволюции бактерий – симбионтов растений. СПб.: Информ-Навигатор; 2016. 240.
  • Goerke C., Kraning K., Stern M. Molecular epidemiology of community-acquired Staphylococcus aureus in families with and without cystic fibrosis patients. J. Infect. Dis. 2000; 181: 984–989.
  • Von Eiff C., Becker K., Machka K. Nasal carriage as a source of Staphylococcus aureus bacteriemia. Study Group. N. Engl. J. Med. 2001; 344: 11–16.
  • Botzenhart K., Doring G. Epidemiology and ecology of Pseudomonas aeruginosa. In: Campa M., Bendinelli M., Friedman H., eds. Pseudomonas aeruginosa as an opportunistic pathogen. New York: Plenum; 1993: 1–18.
  • Doring G., Ulrich M., Muller W. Generation of Pseudomonas aeruginosa aerosols during handwashing from contaminated sink drains, transmission to hands of hospital personnel, and its prevention by use of a new heating device. Zentralbl. Hyg. 1991; 191: 494–505.
  • Bosshammer J., Fiedler B., Gudowius P. Comparative hygienic surveillance of contamination with pseudomonads in cystic fibrosis ward over a 4-year period. J. Hosp. Infect. 1995; 31: 261–274.
  • Pitchford K.C., Corey M., Highsmith A.K. Pseudomonas species contamination of cystic fibrosis patients home inhalation equipment. J. Pediatr. 1987; 111: 212–216.
  • Rosenfield M., Emerson J., Astley S. Home nebulizer use among patients with cystic fibrosis. J. Pediatr. 1998; 132: 125–131.
  • Jakobsson B.M., Onnered A.B., Hjelte L. Low bacterial contamination of nebulizers in home treatment of cystic fibrosis patients. J. Hosp. Infect. 1997; 36: 201–207.
  • Jensen E.T., Gewercman B., Ojeniyi B. Epidemiology of Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis and the possible role of contamination by dental equipment. J. Hosp. Intect. 1997; 36: 117–122.
  • Halabi M., Wiesholzer-Pittl M., Schoberl J. Non-touch fitting in hospitals: a possible source of Pseudomonas aeruginosa and Legionella spp. J. Hosp. Infect. 2001; 49: 117–121.
  • LiPuma J.J. The Changing Microbial Epidemiology in Cystic Fibrosis. Clin. Microbiol. Rev. 2010; 23 (2): 299–323.
  • Romling U., Wingender J., Muller H., Tummler B. A major Pseudomonas aeruginosa clone common to patients and aquatic habitats. Appl. Environ. Microboil. 1994; 60: 1734–1738.
  • Doring G., Hoiby N. Early intervention and prevention of lung disease in cystic fibrosis: a European consensus. J. Cyst. Fibrosis. 2004; 3: 67–91.
  • Campana S., Tacetti G., Ravenni F. Tramsmission of Burkholderia cepacia complex: evidence for new epidemic clones infecting cystic fibrosis patients in Italy. J. Clin. Microbiol. 2005; 43: 5136–5142.
  • Coenye T., Spilker T., Van Schoor A. Recovery of Burkholderia cenocepacia strain PHDC from cystic fibrosis patients in Europe. Thorax. 2004; 59: 952–954.
  • Fisher M.C., LiPuma J.J., Dasen E. Source of Pseudomonas cepacia: ribotyping of isolated from patients and from the environment. J. Pediatr. 1993; 123: 745–747.
  • LiPuma J.J., Spilker T., Coenye T. An epidemic Burkholderia cepacia complex strain identificied in soil. Lancet. 2003; 359: 2002–2003.
  • Govan J.R., Brown A.R., Jones A.M. Evolving epidemiology of Pseudomonas aeruginosa and the Burkholderia cepacia complex in cystic fibrosis lung infection. Future Microbiol. 2007; 2: 153–164.
  • Mortensen J.E., Fischer M.C., LiPuma J.J. Recovery of Pseudomonas cepacia and other Pseudomonas species from the environment. Infect. Control. Hosp. Epidemoil. 1995; 16: 30–32.
  • Baldwin A., Mahenthiralingam E., Drevenik P. Environmental Burkholderia cepacia complex isolated in human infections. Emerg. Infect. Dis. 2007; 13: 458–461.
Еще