Оптические свойства нейтрофилов периферической крови лошадей при общем внешнем воздействии -излучения

Автор: Шевченко Т.С.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Факторы клеточного иммунитета

Статья в выпуске: 4 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Важным диагностическим тестом для оценки состояния здоровья и выявления заболеваний сельскохозяйственных животных считается определение содержания форменных элементов крови, включая нейтрофилы. Качественные и количественные характеристики нейтрофилов имеют важное значение для оценки состояния здоровья и при лучевом поражении животных в связи с радиационно-индуцированной гибелью предшественников гранулоцитов в костном мозге. Следует отметить весьма немногочисленное число публикаций, посвященных изучению состояния нейтрофилов при радиационных воздействиях не только у сельскохозяйственных, но и у лабораторных животных. В частности, в литературе практически отсутствуют данные об оптических свойствах нейтрофилов и о влиянии на них радиационного фактора. Поэтому целью работы стало исследование оптических свойств этих клеток, выделенных из периферической крови лошадей, которых подвергли общему внешнему воздействию γ-излучения. Определяли величину оптической плотности суспензии нейтрофилов при λ = 600 нм и длине оптического пути 1 см. Кровь у животных отбирали из яремной вены до облучения и на 1-е, 3-и, 5-е, 7-е, 10-е, 15-е, 20-е, 25-е и 30-е сут после облучения. Суспензию нейтрофилов выделяли из периферической крови лошадей при центрифугировании в градиенте плотности урографина с d = 1,077 г/см3. Контролем служила группа из 4 лошадей, которых содержали в тех же условиях, что и 4 группы подопытных животных по 5 гол. в каждой. Подопытные группы подвергали общему внешнему воздействию γ-излучения в дозах 2, 3, 4 и 5 Гр. Было обнаружено, что величина оптической плотности суспензии нейтрофилов в расчете на 105 кл/мл, составляющая в среднем 0,572±0,023 отн. ед., практически не претерпевает изменений при облучении лошадей в исследуемом диапазоне доз. Это свидетельствует о постоянстве оптических свойств нейтрофильных гранулоцитов при радиационном поражении животных, что позволяет проводить фотометрические исследования этих клеток у облученных лошадей. Фотометрический анализ выделенных нейтрофилов выявил следующие закономерности. Величина оптической плотности аликвоты суспензии клеток у необлученных лошадей составила 0,235±0,032 отн. ед. В начальный период лучевой патологии у всех групп облученных животных величина оптической плотности нейтрофилов возрастала в 2,1-2,8 раза, затем последовательно уменьшалась и увеличивалась в латентный период на 5-10-е сут, далее резко снижалась (в 10-12 раз) в период разгара на 20-30-е сут. У лошадей, подвергнутых воздействию γ-излучения в дозе 5 Гр, наблюдали значительное уменьшение показателя (в 18 раз) на 10-е сут. Проведенные исследования показали, что внешнее воздействие γ-излучения в широком диапазоне доз приводит к изменению величины оптической плотности суспензии выделенных нейтрофилов, которое согласуется с динамикой их содержания в периферической крови лошадей.

Еще

Лошади, общее внешнее воздействие γ-излучения, периферическая кровь, нейтрофилы, оптическая плотность, содержание нейтрофилов

Короткий адрес: https://sciup.org/142214165

IDR: 142214165   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.4.795rus

Список литературы Оптические свойства нейтрофилов периферической крови лошадей при общем внешнем воздействии -излучения

  • Кондрахин И.П., Архипов А.В., Левченко В.И. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики. М., 2004.
  • Мишанин Ю.Ф., Мишанин М.Ю. Практическая ветеринария. Ростов-на-Дону, 2002.
  • Назаренко Г.И., Кишкун А.А. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований. М., 2005.
  • Кишкун А.А. Руководство по лабораторным методам диагностики. М., 2013.
  • Пинегин Б.В., Маянский А.Н. Нейтрофилы: структура и функция. Иммунология, 2007, 28(6): 374-382.
  • Ярилин А.А. Иммунология. М., 2010.
  • Garcia-Garcia E. Molecular mechanisms of phagocytosis. Landes Вioscience, Georgetown, Texas, 2005.
  • Robinson J.M. Reactive oxygen species in phagocytic leukocytes. Histochemistry and Cell Biology, 2008, 130(2): 281-297.
  • Segal A.W. How neutrophils kill microbes. Ann. Rev. Immunol., 2006, 23: 197-223.
  • Medical Immunology/Под ред. V. Gabriel. Taylor & Francis, London, 2007.
  • Hicks A.M., Willington M.C., Du W. Effector mechanism of the anticancer immune responses of macrophages in SR/CR mice. Cancer Immunity, 2006, 6: 1-9.
  • Абакумова Т.В., Антонеева И.И., Генинг Т.П., Генинг С.О., Долгова Д.Р., Фомина А.В. Цитокиновый профиль и метаболическая активность нейтрофилов периферической крови при прогрессировании неоплазмы. Патологическая физиология и экспериментальная терапия, 2014, 4: 86-90.
  • Долгушин И.И., Савочкина А.Ю. Секреторные функции нейтрофилов. Аллергология и иммунология, 2015, 2: 210-212.
  • Zh1pixou J., Perelman J.M., Kolosov V.P., Zh1pixou X. Neutrophil elastase induces MUC5AC secretion via protease activated receptor 2. Molecular and Cellular Biochemistry, 2013, 377(1-2): 75-85 ( ) DOI: 10.1007/s11010-013-1572-3
  • Kupchik Y.M., Barchad-Avitzur O., Ben-Chaim Y., Parnas L., Parnas H., Wess J. A novel fast mechanism for GPCR-mediated signal transduction -control of neurotransmitter release. Journal of Cell Biology, 2011, 192(1): 137-151 ( ) DOI: 10.1083/jcb.201007053
  • Wang N., De Bock M., Decrock E., Bol M., Gadicherla A.A., Leybaert L., Vinken M., Rogiers V., Bukauskas F.F., Bultynck G. Paracrine signaling through plasma membrane hemichannels.1pix Biochimica et Biophisica Acta. Biomembranes, 2013, 1828(1): 35-50 ( ) DOI: 10.1016/j.bbamem.2012.07.002
  • Baroja-Mazo A., Barbera-Cremades M., Pelegrin P. The participation of plasma membrane hemichannels to purinergic signaling. Biochimica et Biophisica Acta. Biomembranes, 2013, 1828(1): 79-93 ( ) DOI: 10.1016/j.bbamem.2012.01.002
  • Нестерова И.В., Швыдченко И.Н., Роменская В.А. Нейтрофильные гранулоциты -ключевые клетки иммунной системы. Аллергология и иммунология, 2008, 9(4): 432-436.
  • Cassatella M.A., Mosna F., Micheletti A. Toll-like receptor-3-activated human mesenchymal stromal cells significantly prolong the survival and function of neutrophils. Stem. Cells, 2011, 29(6): 1001-1011.
  • Хаитов Р.М. Иммунология. М., 2011.
  • Diebold B.A., Bokoch G.M. Rho GTPase and the control of the oxidative burst in polymorphonuclear leukocytes. Current Topics of Microbiology and Immunology, 2005, 291: 91-111.
  • Fernandes M.J., Rollet-Labelle E., Pare G. CD11b associates with high-density, detergent resistant membranes in human neutrophils. Biochem. J., 2006, 393: 351-359.
  • Кудряшов Ю.Б. Радиационная биофизика (ионизирующие излучения). М., 2004.
  • Аклеев А.А., Гребенюк А.Н., Глуминина О.А. Влияние радиационного воздействия на показатели адгезивной способности нейтрофилов периферической крови. Вестник Челябинского государственного университета, Биология, 2013, 7(298): 91-93.
  • Гребенюк А.Н. Состояние нейтрофилов при радиационных воздействиях. Автореф. докт. дис. СПб, 2002.
  • Исамов Н.Н., Исамов Н.Н. (мл.) Радиобиология и радиоэкология лошадей/Под ред. Р.М. Алексахина. Обнинск, 2009.
  • Meo S.A., Al Dress A.M., Zadi S.Z., Al Damon S., Al-Tuwauri A.S. Hazards of X-ray radiation on quantitative and phagocytic function of polymorphonuclear neutrophils in X-ray technicians. J. Occup. Health, 2006, 48: 88-92.
  • Wilkins R.C., Wilkinson D., Macharaj H.P., Bellier P.V., Cybuiski M.B., McLean J.R. Differential apoptotic response to ionizing radiation in sub population of human white blood cells. Mutat. Res., 2002, 513(1-2): 27-36.
  • Latifynia A., Vojgani M., Gharagozlou M.J., Sharifian R. Neutrophil finction (innate immunity) during ramadan. J. Auub. Med. Coll. Abbottabad, 2009, 21(4): 111-115.
  • Latifynia M.Y., Kalamzadeh A., Abofazeli T., Nuraie M., Khransarii N. Phagocyte finctions of human subjects living in high level of natural radiation areas in Iran. J. Auub. Med. Coll. Abbottabad, 2012, 24(3-4): 177-179.
  • Шевченко Т.С., Шевченко А.С. Фотометрические показатели и общее содержание белка в клетках крови интактных и облученных сельскохозяйственных животных. Сельскохозяйственная биология, 1999, 4: 114-118.
  • Шевченко Т.С. Выделение клеточных популяций из периферической крови сельскохозяйственных животных методом центрифугирования в градиенте плотности. Сельскохозяйственная биология, 2007, 6: 123-126.
  • Gil-Villa A.M., Norling L.V., Serhan C.N., Cordero D. Aspirin triggered-lipoxin A(4) reduces the adhesion of human polymorphonuclear neutrophils to endothelial cells initiated by preeclamptic plasma. Prostaglandins Leukot. Essent. Fatty Acids, 2012, 87(4-5): 127-134 ( ) DOI: 10.1016/j.plefa.2012.08.003
  • Overbeek S.A., Kleinjan M., Henricks P.A.J., Kamp V.M., Georgiou N.A., Garssen J., Kraneveldand A.D., Folkerts G. Chemo-attractant N-acetyl proline-glycine-proline induces CD11b/CD18-dependent neutrophil adhesion. Biochimica et Biophisica Acta, 2012, 1830(1): 2188-2193.
  • Maeshima Y., Makino H. Molecular mechanism of cell injury. Contrib. Nephrol., 2003, 139: 32-43.
  • Luo H.R., Loison F. Constitutive neutrophil apoptosis mechanisms and regulation. J. Haematology, 2008, 83(4): 288-295.
  • Mayadas T.N., Tsokos G.C., Tsuboi N. Mechanisms of immune complex-mediated neutrophil recruitment and tissue injury. Circulation, 2009, 120(20): 2012-2024.
  • Zhavoronok T.V., Stepovaya Ye.A., Ryazantseva N.V., Petina G.V., Starikov Yu.V., Ageeva T.S. Influence of oxidative stress on redox-state and peripheral blood heterophilic leukocytes apoptotic program realization. European Journal of Natural History, 2007, 6: 63-64.
  • Brinkman V., Rechard U., Goosmann C. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science, 2004, 303: 1532-1535.
  • Brinkman V., Zychlinsky A. Beneficial suicide: why neutrophils die to make NETs. Nature Rev., 2007, 5: 577-582.
  • Fuches T.A., Abed U., Goosmann C. Novel cells death program leads to neutrophil extracellular traps. J. Cell Biol., 2007, 176(2): 231-241.
  • Jenne C.N. Neutrophils recruited to sites of infection protect from virus challenge by releasing neutrophil extracellular traps. Cell Host and Microbe, 2013, 13: 169-180.
  • Gupta A.K., Joshi M.B., Philippova M. Activated endothelial cells induce neutrophil extracellular traps and are susceptible to NETosis-mediated cell death. FEBS Lett., 2010, 584: 3193-3197.
Еще
Статья научная