Особенности эндокринного аппарата поджелудочной железы после введения N-ацетилцистеина в модели острого постлучевого панкреатита

Автор: Демяшкин Г.А., Угурчиева Д.И., Якименко В.А., Вадюхин М.А.

Журнал: Ульяновский медико-биологический журнал @medbio-ulsu

Статья в выпуске: 2, 2024 года.

Бесплатный доступ

Исследования постлучевых поражений поджелудочной железы (ПЖЖ) после облучения заряженными частицами (электроны, протоны) немногочисленны. Установлена эффективность применения некоторых антиоксидантов для снижения диапазона и глубины постлучевых повреждений ПЖЖ. Однако механизмы радиационно-индуцированного повреждения ПЖЖ окончательно не раскрыты, а исследования ее эндокринного аппарата после облучения электронами единичны. Цель - оценка экспрессии инсулина и глюкагона в панкреатических островках после введения N-ацетилцистеина в модели острого постлучевого панкреатита.

Поджелудочная железа, инсулоциты, глюкагоноциты, облучение электронами, n-ацетилцистеин

Короткий адрес: https://sciup.org/14130553

IDR: 14130553 | DOI: 10.34014/2227-1848-2024-2-166-174

Список литературы Особенности эндокринного аппарата поджелудочной железы после введения N-ацетилцистеина в модели острого постлучевого панкреатита

Singh V.K., Seed T.M. Pharmacological management of ionizing radiation injuries: current and prospective agents and targeted organ systems. Expert Opin Pharmacother. 2020; 21 (3): 317-337. DOI: 10.1080/14656566.2019.1702968.
Donya M., RadfordM., ElGuindy A., Firmin D., Yacoub M.H. Radiation in medicine: Origins, risks and aspirations. Glob Cardiol Sci Pract. 2014; 2014 (4): 437-448. DOI: 10.5339/gcsp.2014.57.
Cervelli T., Panetta D., Navarra T., Gadhiri S., Salvadori P., Galli A., Caramella D., Basta G., Picano E., Del Turco S. A New Natural Antioxidant Mixture Protects against Oxidative and DNA Damage in Endothelial Cell Exposed to Low-Dose Irradiation. Oxid Med Cell Longev. 2017; 2017: 9085947. DOI: 10.1155/2017/9085947.
Campesi I., Brunetti A., Capobianco G., Galistu A., Montella A., Ieri F., Franconi F. Sex Differences in X-ray-Induced Endothelial Damage: Effect of Taurine and N-Acetylcysteine. Antioxidants. 2023; 12: 77. DOI: 10.33 90/antiox12010077.
Topcu A., Mercantepe F., Rakici S., Tumkaya L., Uydu H.A., Mercantepe T. An investigation of the effects of N-acetylcysteine on radiotherapy-induced testicular injury in rats. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 2019; 392 (2): 147-157. DOI: 10.1007/s00210-018-1581-6.
Amin A., Lotfy M., Mahmoud-Ghoneim D., Adeghate E., Al-Akhras M., Al-Saadi M., Al-Rahmoun S., HameedR. Pancreas-protective effects of chlorella in STZ-induced diabetic animal model: insights into the mechanism. Journal of Diabetes Mellitus. 2011; 1: 36-45. DOI: 10.4236/jdm.2011.13006.
El-Far A.H., Lebda M.A., Noreldin A.E., Atta M.S., Elewa Y.H.A., Elfeky M., Mousa S.A. Quercetin Attenuates Pancreatic and Renal D-Galactose-Induced Aging-Related Oxidative Alterations in Rats. Int J Mol Sci. 2020; 21 (12): 4348. DOI: 10.3390/ijms21124348.
El Agaty S., Asmaa I.A. Pathophysiological and immunohistochemical analysis of pancreas after renal ischemia/reperfusion injury: protective role of melatonin. Archives of Physiology and Biochemistry. 2020; 126 (3): 264-275. DOI: 10.1080/13813455.2018.1517182.
Mercantepe F., Tümkaya L., Mercantepe T., Yilmaz Rakici S. The effects of coenzyme Q10 (CoQ10) on ionizing radiation-induced pancreatic ß-cell injury. Endocrinol Res Pract. 2023; 27 (3): 127-134. DOI: 10.5152/erp.2023.23245.
Reisz J.A., Bansal N., Qian J., Zhao W., Furdui C.M. Effects of ionizing radiation on biological molecules-mechanisms of damage and emerging methods of detection. Antioxid Redox Signal. 2014; 21 (2): 260-292. DOI: 10.1089/ars.2013.5489.
Lei G., Mao C., Yan Y., Zhuang L., Gan B. Ferroptosis, radiotherapy, and combination therapeutic strategies. Protein Cell. 2021; 12 (11): 836-857. DOI: 10.1007/s13238-021-00841-y.
Jiao Y., Cao F., Liu H. Radiation-induced Cell Death and Its Mechanisms. Health Phys. 2022; 123 (5): 376-386. DOI: 10.1097/HP.0000000000001601.
Baek J.Y., Lim D.H., Oh D., Nam H., Kim J.J., Lee J.H., Min B.H., Lee H. Increased Risk of Diabetes after Definitive Radiotherapy in Patients with Indolent Gastroduodenal Lymphoma. Cancer Res Treat. 2022; 54 (1): 294-300. DOI: 10.4143/crt.2021.073.
Bacarella N., Ruggiero A., Davis A.T. Whole Body Irradiation Induces Diabetes and Adipose Insulin Resistance in Nonhuman Primates. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 2020; 106 (4): 878-886. DOI: 10.1016/ j.ijrobp.2019.11.034.
Nylander V., Ingerslev L.R., Andersen E., Fabre O., Garde C., Rasmussen M., Citirikkaya K., Bäk J., Christensen G.L., AznarM., SpechtL., Simar D., BarresR. Ionizing Radiation Potentiates High-Fat Diet-Induced Insulin Resistance and Reprograms Skeletal Muscle and Adipose Progenitor Cells. Diabetes. 2016; 65 (12): 3573-3584. DOI: 10.2337/db16-0364.
Ezerina D., Takano Y., Hanaoka K., Urano Y., Dick T.P. N-Acetyl Cysteine Functions as a Fast-Acting Antioxidant by Triggering Intracellular H2S and Sulfane Sulfur Production. Cell Chem Biol. 2018; 25 (4): 447-459.e4. DOI: 10.1016/j.chembiol.2018.01.011.
MinatiM.A., LibertM., Dahou H., Jacquemin P., AssiM. N-Acetylcysteine Reduces the Pro-Oxidant and Inflammatory Responses during Pancreatitis and Pancreas Tumorigenesis. Antioxidants. 2021; 10 (7): 1107. DOI: 10.3390/antiox10071107.
Yilmaz H., Mercantepe F., Tumkaya L., Mercantepe T., Yilmaz A., Yilmaz R.S. The potential antioxidant effect of N-acetylcysteine on X-ray ionizing radiation-induced pancreas islet cell toxicity. Biochem Bio-phys Res Commun. 2023; 685: 149154. DOI: 10.1016/j.bbrc.2023.149154.

Еще

Статья научная