ПЦР-анализ генов альдоксимдегидратаз нитрилутилизирующих бактерий

Автор: Кузнецова М.В., Максимова А.В., Овечкина Г.В., Максимов А.Ю.

Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio

Рубрика: Микробиология

Статья в выпуске: 10, 2009 года.

Бесплатный доступ

Проведена детекция генов альдоксимдегидратаз у нитрилутилизирующих бактерий, выделенных на территории Пермского края. Установлено, что 14,3% бактерий лабораторной коллекции содержали гены альдоксимдегидратаз. У 12 штаммов рода Rhodococcus (20,3%) присутствовали фрагменты ДНК, соответствующие по размеру гену альдоксимдегидратазы. На матрице ДНК одного штамма из группы грамотрицательных микроорганизмов - Pseudomonas fluorescens 3220 - амплифицирована последовательность, соответствующая по размеру гену альдоксимдегидратазы P. chlororaphis B23.

Короткий адрес: https://sciup.org/147204446

IDR: 147204446

Текст научной статьи ПЦР-анализ генов альдоксимдегидратаз нитрилутилизирующих бактерий

  • a Пермский государственный университет, 614990, Пермь, ул. Букирева, 15

  • b Институт экологии и генетики микроорганизмов УрО РАН, 614081, Пермь, ул. Голева, 13

Проведена детекция генов альдоксимдегидратаз у нитрилутилизирующих бактерий, выделенных на территории Пермского края. Установлено, что 14,3% бактерий лабораторной коллекции содержали гены альдоксимдегидратаз. У 12 штаммов рода Rhodococcus (20,3%) присутствовали фрагменты ДНК, соответствующие по размеру гену альдоксимдегидратазы. На матрице ДНК одного штамма из группы грамотрицательных микроорганизмов – Pseudomonas fluorescens 3220 - амплифицирована последовательность, соответствующая по размеру гену альдоксимдегидратазы P. chlororaphis B23.

Альдоксимы – это интермедиаты биосинтеза некоторых биологически активных веществ, таких как индолилуксусная кислота, цианогенный гликозид и глюкозинолаты в растениях. Так, индолаце-тальдоксимгидролаза катализирует специфическую дегидратазную реакцию индолацетальдоксима в индолацетонитрил. Этот фермент можно обнаружить в некоторых родах грибов и высших растений, и впервые он выделен из Gibberella sp. (Asano et al., 1981).

У бактерий конверсия альдоксимов в нитрилы, а затем в соответствующие карбоновые кислоты происходит путем сочетания работы ферментов альдоксимдегидратазы и нитрилутилизирующих ферментов – нитрилгидратазы и амидазы и/или нитрилазы (Kato et al., 1998):

альдоксимдегидратаза нитрилгидратаза

R-CH=NOH  ► R-CN + H2O --► R-CONH2 + H2O амидаза

R-CONH2 + H2O --►  R-COOH +NH4+ альдоксимдегидратаза нитрилаза

R-CH=NOH  ► R-CN + H2O --► R-COOH +NH4+

Штаммы – продуценты нитрилгидролитических ферментов имеют важное практическое применение: в крупнотоннажном промышленном производстве акриламида и солей акриловой кислоты (Kobayashi et al., 1992; Yanenko et al., 1995). Несмотря на постоянный поиск новых бактерий в природе, информация о распределении систем гидролиза нитрилов в группах микроорганизмов и их физиологическая роль еще не в полной мере определены. Поэтому внимание исследователей, изучающих нитрилутилизирующие ферменты микроорганизмов, привлекли альдоксимдегидратазы – ферменты, катализирующие альдоксимы до нитрильных соединений. В настоящее время выделены альдоксимтрансформирующие микроорганизмы Bacillus sp. OxB-1 и Rhodococcus sp. YH3-3.

Данные штаммы конвертировали альдоксимы через нитрилы в соответствующие карбоновые кислоты путем последовательной работы альдоксимдегидратазы и нитрилгидролизующих ферментов (Asano, Kato, 1998).

Процесс отбора штаммов, обладающих активностью альдоксимдегидратазы, может быть ускорен быстрым скринингом с помощью молекулярных методов детекции генов, кодирующих эти ферменты.

Работа посвящена детекции генов альдоксимдегидратаз у бактерий, способных утилизировать нитрилы карбоновых кислот, ранее выделенных из почвы на территории Пермского края.

Объекты и методы исследования

Объектами исследования являлись бактериальные культуры, утилизирующие нитрилы карбоновых кислот.

Культуры получены ранее в результате селекции на ацето- и/или изобутиронитриле из образцов почв и вод естественной среды и почвы промышленных предприятий (ФГУП "ПЗ им. С.М. Кирова" и ОАО "Бератон"). Всего проанализирована 91 культура микроорганизмов: 59 штаммов грамположительных бактерий (роды Rhodococcus , Arthrobacter , Miсrobacterium , Citreo-bacterium , Nocardia , Gordonia, Aureobacterium ) и 32 штамма грамотрицательных бактерий (роды Pseudomonas , Azomonas , Azotobacter и Acidovorax ).

Препараты хромосомной ДНК грамположи-тельных бактерий получали фенольным методом, модифицированным для выделения ДНК из акти-номицетов (Гловер и др., 1988). ДНК грамотрица-тельных микроорганизмов получали следующим образом: полную петлю биомассы бактериальной культуры инокулировали в 100 мкл стерильной

Таблица 1

Праймеры для ПЦР-анализа генов альдоксимдегидратаз

Праймер

Последовательность

Размер фрагмента, пар нуклеотидов

№ в GenBank

PsOxd

F

R

ATGGAATCTGCGATCGACACGCATC TCAGGTGGGCGCGACAACGGCATC

1058

АВ093544

RhOxd

F

R

ATGGAATCTGCAATCGGCGAACAC TCAGTGCTCGGCGGTTGTCACCG

1069

АВ094201

Н 2 О, выдерживали при 95°С в течение 15 мин в твердотельном термостате «Термит» (Россия) (Stone et al., 1994). Пробы охлаждали, центрифугировали 5 мин при 12 тыс. об./мин. Супернатант использовали в генетических исследованиях.

Детекцию генов альдоксимдегидратаз осуществляли посредством ПЦР с праймерами к генам, кодирующим известные альдоксимдегидратазы грамотрицательных и грамположительных микроорганизмов. Олигонуклеотидные праймеры были разработаны с использованием баз данных GENBANK и по заданным последовательностям синтезированы ООО «Евроген», Москва (табл. 1).

Амплификацию ДНК проводили с применением термостабильной Taq -полимеразы производства ООО «СибЭнзим» (Новосибирск) на термоциклере Т3 (Biometra, Германия). Режим амплификации для всех праймеров включал начальный цикл денатурации – 1 мин при 94°С и завершающий цикл 3 мин при 72°С. Для праймеров RhOxd F1/R1 режим амплификации составлял: 94°С – 20 сек; 64°С – 30 сек; 72°С – 60 сек (35 циклов). Для праймеров PsOxd F1/R1: 94°С – 20 сек; 54°С – 70 сек; 72°С – 60 сек (35 циклов). Электрофоретическое разделение ДНК проводили стандартным способом в 1,5% агарозном геле. Визуализацию результатов осуществляли с помощью системы гель-документации BioDocAnalyze (Biometra, Германия).

Результаты исследований

Известна только хромосомная локализация генов, кодирующих альдоксимдегидрогеназы у бактерий (Xie et al., 2003). Гены, контролирующие гидролиз нитрилов, также имеют хромосомную локализацию (Kobayashi et al., 1992).

Установлено, что у 12 штаммов (20,3%) грам-положительных нитрилутилизирующих бактерий присутствовали фрагменты ДНК, соответствующие по размеру гену альдоксимдегидратазы (рис. 1). Все штаммы принадлежали к роду Rhodococcus (из них 11 – R. erythropolis , 1 – R. rhodochrous ).

У штаммов, принадлежащих к родам Microbacterium , Citreobacterium , Nocardia , Gordonia, Aureo-bacterium , не обнаружены фрагменты генов альдоксимдегидратаз ни с одной парой праймеров к генам гидролитических ферментов.

На матрице ДНК одного штамма из группы грамотрицательных микроорганизмов ( Pseudomonas fluorescens 3220) амплифицирована последовательность, соответствующая гену альдоксимдегидратазы P. chlororaphis B23 (Oinuma et al., 2003).

Нужно подчеркнуть, что в большинстве случаев гены альдоксимдегидратазы были детектированы в штаммах (8), содержащих весь комплекс генов, кодирующих ферменты гидролиза нитрилов: нитрилгидратазу/амидазу и/или нитрилазу (табл. 2).

В трех случаях детектировали ген альдоксимдегидратазы и один из генов, ответственных за синтез гидролитических ферментов.

маркер

о _               —5                                                                                1

-§ |          р                                                   Т

— 7^^:U   —f-   г |   —f-   —f-   г |   —f-   к, к, г |   “ к,   —|-

1 kb-

Рис. 1. Электрофорез ПЦР-продуктов, соответствующих генам альдоксимдегидратаз грамположи-тельных бактерий

Таблица 2

Распределение генов, кодирующих ферменты метаболизма нитрилов у некоторых штаммов изучаемой коллекции

Культура

Гены, кодирующие ферменты, участвующие в метаболизме нитрилов

nhc Fe nhc Co

nh α Fe nh β Fe

ami

nit

oxd

R. rhodochrous К17(Р)

+

+/+

+

+

+

R. erythropolis Б2-4

+

+/+

+

+

R. erythropolis Б4-1

+

+/+

+

+

+

R. erythropolis Б4-3

+

+/+

+

R. erythropolis Б4-4

+

+

R. erythropolis Б5-2

+

+/+

+

+

+

R. erythropolis Б5-5

+

+/+

+

+

R. erythropolis Б20-8

+

-/+

+

+

R. erythropolis ДО-1-1с

+

+

Pseudomonas sр. C3220

+

+

+

R. erythropolis П4-1-3

+

+

R. erythropolis П11-2

+

+

+

+

Rhodococcus sр. П3

+

+

+

Заключение

На основе коллекции нитрилутилизирующих штаммов бактерий исследовано распространение генов альдоксимдегидратаз, кодирующих ферменты, участвующие в метаболизме нитрилов карбоновых кислот. Установлено, что только 14,3% штаммов нитрилутилизирующих бактерий лабораторной коллекции содержали гены альдоксимдегидратаз. Возможно, это связано с вариабельностью фланкирующих участков генов, кодирующих эти ферменты, и используемые праймеры не охватывают все возможные комбинации этих последовательностей.

При оценке распространения генов альдоксимдегидратаз среди микроорганизмов различных таксономических групп показано превалирование представителей рода Rhodococcus , продуцирующих железосодержащие нитрилгидратазы. Следует отметить, что при анализе и других генов, кодирующих гидролитические ферменты, доля этих бактерий была наибольшей.

Метод молекулярного скрининга при помощи ПЦР позволяет быстро идентифицировать альдоксимдегидратазы и может быть использован в процессе селекции альдоксим- и нитрилконвертирующих микроорганизмов.

Полученные результаты подтверждают важную роль альдоксимдегидратаз в метаболизме бактерий.

Работа выполнена при поддержке аналитической ведомственной целевой программы «Развитие научного потенциала высшей школы (2009– 2010 годы)» и программы Президиума РАН «Биологическое разнообразие»

Список литературы ПЦР-анализ генов альдоксимдегидратаз нитрилутилизирующих бактерий

  • Гловер Д. Клонирование ДНК. Методы/Д. Гловер. М.: Мир, 1988. 538 с.
  • Asano Y. Fungal degradation of triacrylonitrile/Y.Asano, S. Ando, Y. Tani, H. Yamada, T. Ueno//Agric. Biol. Chem. 1981. Vol. 45. P. 57-62.
  • Asano Y. Z-Phenylacetaldoxime degradation by a novel aldoxime dehydratase from Bacillus sp. strain OxB-1/Y. Asanо, Y. Kato//FEMS Microbiol. Lett. 1998. Vol. 158. P. 185-190.
  • Kato Y. et al. Isolation and characterization of a bacterium possessing a novel aldoxime-dehydration activity and nitrile-degrading enzymes/Y. Kato//Arch. Microbiol. 1998. Vol. 170. P. 85-90.
  • Kobayashi M. Enzymatic synthesis of acrylamide: a success story not yet over …/M. Kobayashi, T. Nagasawa, H. Yamada//Trends Bioechnol. 1992. Vol. 10. P. 402-408.
  • Oinuma K. et al. Novel aldoxime dehydratase involved in carbon-nitrogen triple bond synthesis of Pseudomonas chlororaphis B23. Sequencing, gene expression, purification, and characterization/K. Oinuma, Y. Hashimoto, K. Konishi, M. Goda et al.//J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278. P. 29600-29608.
  • Stone G.G. Detection of Salmonella serovars from clinical samples by enrichment broth cultivation-PCR procedure/G.G. Stone, R.D. Oberst, M.P. Hays, S. McVey, M.M. Chengappa//J. Clin. Microbiol. 1994. Vol. 32. P. 1742-1749.
  • Xie S.X. A novel gene cluster responsible for alkylaldoxime metabolism coexisting with nitrile hydratase and amidase in Rhodococcus globerulus A-4/S.X. Xie, Y. Kato, H. Komeda et al.//Biochemistry. 2003. Vol. 42. P. 12056-12066.
  • Yanenko A.S. Regulation of nitrile utilization in Rhodococcus/A.S. Yanenko, O.B. Astaurova, T.V. Gerasimova et al.//Biotechnologia. 1995. № 7-8. P. 139-144.
Еще
Статья научная