Пестивирусы крупного рогатого скота - контаминанты биологических препаратов (обзор)

Автор: Глотов А.Г., Глотова Т.И., Котенева С.В., Нефедченко А.В., Семенова О.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 2 т.59, 2024 года.

Бесплатный доступ

Пестивирусы крупного рогатого скота становятся возбудителями вирусной диареи - болезни слизистых оболочек, широко распространенной и экономически значимой инфекции (J.F. Ridpath, 2010; C.A. Evans с соавт., 2019). К таким вирусам относятся прототипный вид Pestivirus А (вирус вирусной диареи крупного рогатого скота 1 вида; BVDV-1), Pestivirus В (вирус вирусной диареи крупного рогатого скота 2 вида; BVDV-2) и Pestivirus H (Hobi-like pestivirus, HoBiPeV; вирус вирусной диареи крупного рогатого скота 3 вида; BVDV-3) (P. Simmonds с соавт., 2017; ICTV, 2019). Все агенты представлены цитопатогенным (Цп) и нецитопатогенным (Нцп) биотипами. Нцп биотип, в отличие от Цп, не вызывает видимых морфологических разрушений культур клеток и представляет более 90 % популяции вирусов (P.H. Walz с соавт., 2020). Число известных субтипов BVDV-1 составляет 22 (от a до v), BVDV-2 - 4 (a, b, c, d) и BVDV-3 - 4 (a, b, c, d) (N. Su с соавт., 2023). В России установлена циркуляция 12 субтипов BVDV-1, трех субтипов BVDV-2 и одного субтипа BVDV-3 (А.Г. Глотов с соавт., 2022). Одним из путей распространения возбудителей в популяциях крупного рогатого скота могут быть биопрепараты, полученные с использованием контаминированных фетальных сывороток (Л.В. Урываев с соавт., 2012; А.Г. Глотов с соавт., 2018), культур клеток и трипсина (O. Lung с соавт., 2021), а именно ветеринарные вакцины и интерфероны. Агенты могут распространяться со спермой быков-производителей и эмбрионами (J.A. Gard с соавт., 2007; K. Gregg с соавт., 2010). Значительную проблему могут представлять контаминированные вакцины медицинского назначения (Giangaspero M. с соавт., 2004), а также биотехнологические материалы (L. Djemal с соавт., 2021), стволовые клетки (S. Viau с соавт., 2019). Контаминация вакцин происходит при их производстве Нцп штаммами всех видов пестивирусов, которые заносятся в культуры клеток случайным образом из непроверенной фетальной сыворотки (B. Makoschey с соавт., 2003; Pastoret P.P., 2010). Существующие методы деконтаминации не всегда могут обеспечить полную инактивацию агентов (W.P. Paim с соавт., 2021). Дополнительную проблему вносит увеличивающееся число видов и субтипов вирусов (C. Luzzago с соавт., 2021). Контаминация культур клеток млекопитающих может привести к ложным результатам диагностических исследований, заражению биологических препаратов и передаче их реципиентам. Антитела к пестивирусам крупного рогатого обнаруживали в 40 % проб сыворотки крови, взятых у близнецов с шизофренией (M. Giangaspero, 2013), а их антигены - в 23,6 % образцов фекалий от детей с гастроэнтеритом (R. Yolken с соавт., 1989). Только тщательный рутинный контроль и выбраковка животных, используемых для получения фетальной сыворотки или для получения органов для культур клеток, всех серий сыворотки, культур клеток и биопрепаратов на ее основе, может предотвратить потенциально опасную контаминацию пестивирусами. При этом необходимо учитывать пластичность вирусов и появление новых видов и субтипов.

Еще

Пестивирусы, крупный рогатый скот, контаминация, эмбриональная сыворотка, культуры клеток, вакцины, биопрепараты, сперма, эмбрионы

Короткий адрес: https://sciup.org/142242441

IDR: 142242441   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2024.2.179rus

Список литературы Пестивирусы крупного рогатого скота - контаминанты биологических препаратов (обзор)

  • ICTV. International Committee on Taxonomy of Viruses. Family: Flaviviridae. Genus: Pestivirus. Режим доступа: https://ictv.global/report/chapter/flaviviridaeport/flaviviridaeport/flaviviri-dae/pestivirus. Без даты.
  • Bovine Viral Diarrhea Virus: diagnosis, management, and control /S.M. Goyal, J.F. Ridpath (eds.). Blackwell Publishing Ltd., 2005 (doi: 10.1002/9780470344453).
  • Верховская А.Е., Сергеев В.А., Алипер Т.И., Иванов Е.В. Особенности диагностики и профилактики вирусной диареи крупного рогатого скота. Ветеринария, 2009, 8: 3-7.
  • Evans C.A., Pinior B., Larska M., Graham D., Schweizer M., Guidarini C., Decaro N., Rid-path J., Gates M.C. Global knowledge gaps in the prevention and control of bovine viral diarrhoea (BVD) virus. Transboundary and Emerging Diseases, 2019, 66(2): 640-652 (doi: 10.1111/tbed.13068).
  • Ridpath J.F. Bovine viral diarrhea virus: global status. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 2010, 26(1): 105-121 (doi: 10.1016/j.cvfa.2009.10.007).
  • Simmonds P., Becher P., Bukh J., Gould E.A., Meyers G., Monath T., Muerhoff S., Pletnev A., Rico-Hesse R., Smith D.B., Stapleton J.T., ICTV Report Consortium. ICTV virus taxonomy profile: Flaviviridae. Journal of General Virology, 2017, 98(1): 2-3 (doi: 10.1099/jgv.0.000672).
  • Su N., Wang Q., Liu H.-Y., Li L.-M., Tian T., Yin J.-Y., Zheng W., Ma Q.-X., Wang T.-T., Li T., Yang T.-L., Li J.-M., Diao N.-C., Shi K., Du R. Prevalence of bovine viral diarrhea virus in cattle between 2010 and 2021: a global systematic review and meta-analysis. Front. Vet. Sci., 2023, 9: 1086180 (doi: 10.3389/fvets.2022.1086180).
  • Walz P.H., Chamorro M.F., Falkenberg M.S., Passler T., van der Meer F.R., Woolums A. Bovine viral diarrhea virus: an updated American College of Veterinary Internal Medicine consensus statement with focus on virus biology, hosts, immunosuppression, and vaccination. Journal of Veterinary Internal Medicine, 2020, 34(5): 1690-1706 (doi: 10.1111/jvim.15816).
  • Глотов А.Г., Глотова Т.И., Нефедченко А.В., Котенева С.В. Генетический полиморфизм и распространение пестивирусов (Flaviviridae: Pestivirus) крупного рогатого скота в мире и в Российской Федерации. Вопросы вирусологии, 2022, 67(1): 18-26 (doi: 10.36233/0507-4088-96).
  • Moennig V., Becher P. Control of bovine viral diarrhea. Pathogens, 2018, 7(1): 29-41 (doi: 10.3390/pathogens7010029).
  • Глотов А.Г., Глотова Т.И. Атипичные пестивирусы крупного рогатого скота (обзор). Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(4): 399-408 (doi: 10.15389/agrobiology.2015.4.399rus).
  • Bauermann F.V., Ridpath J.F. Hobi-like viruses — the typical ‘atypical bovine pestivirus’. Animal Health Research Reviews, 2015, 16(1): 64-69 (doi: 10.1017/S146625231500002X).
  • Pinior B., Firth C.L., Richter V., Lebl K., Trauffler M., Dzieciol M., Hutter S.E., Burgstaller J., Obritzhauser W., Winter P., Käsbohrer A. A systematic review of financial and economic assess-ments of bovine viral diarrhea virus (BVDV) prevention and mitigation activities worldwide. Pre-ventive Veterinary Medicine, 2017, 137(Pt. A): 77-92 (doi: 10.1016/j.prevetmed.2016.12.014).
  • Grooms D.L. Reproductive consequences of infection with bovine viral diarrhea virus. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 2004, 20(1): 5-19 (doi: 10.1016/j.cvfa.2003.11.006).
  • O’Rourke K. BVDV: 40 years of effort and the disease still has a firm hold. J. Am. Vet. Med. Assoc., 2002, 220(12): 1770-1773.
  • Decaro N. HoBi-like pestivirus and reproductive disorders. Front. Vet. Sci., 2020, 7: 622447 (doi: 10.3389/fvets.2020.622447).
  • Ridpath J.F. Bovine viral diarrhea virus. In: Encyclopedia of virology /B.W.J. Mahy, M.H.V. Re-genmortel (eds.). Elsevier, Oxford (UK), 2008: 374-380 (doi: 10.1016/B978-012374410-4.00354-X).
  • Georges H.M., Knapek K.J., Bielefeldt-Ohmann H., Van Campen H., Hansen T.R. Attenuated lymphocyte activation leads to the development of immunetolerance in bovine fetuses persistently infected with bovine viral diarrhea virus. Biology of Reproduction, 2020, 103(3): 560-571 (doi: 10.1093/biolre/ioaa088).
  • Georges H.M., Van Campen H., Bielefeldt-Ohmann H., Hansen T.R. Epigenomic and prote-omic changes in fetal spleens persistently infected with bovine viral diarrhea virus: repercussions for the developing immune system, bone, brain, and heart. Viruses, 2022, 14(3): 506 (doi: 10.3390/v14030506).
  • Chi S., Chen S., Jia W., He Y., Ren L., Wang X. Non-structural proteins of bovine viral diarrhea virus. Virus Genes, 2022, 58(6): 491-500 (doi: 10.1007/s11262-022-01914-8).
  • Lindberg A.L.E. Bovine viral diarrhea virus infections and its control. A review. Veterinary Quar-terly, 2003, 25(1): 1-16 (doi: 10.1080/01652176.2003.9695140).
  • Bielefeldt-Ohmann H. Special issue: bovine viral diarrhea virus and related pestiviruses. Viruses, 2020, 12(10): 1181 (doi: 10.3390/v12101181).
  • Глотов А.Г., Глотова Т.И., Котенева С.В. О контаминации импортируемой фетальной сыворотки крови крупного рогатого скота пестивирусами как факторе распространения вирусной диареи в условиях глобализации: мини-обзор. Сельскохозяйственная биология, 2018, 53(2): 248-257 (doi: 10.15389/agrobiology.2018.2.248rus).
  • Котенева С.В., Максютов Р.А., Глотова Т.И., Глотов А.Г. Идентификация атипичного пестивируса крупного рогатого скота в биологических образцах. Сельскохозяйственная биология, 2017, 52(6): 1259-1264 (doi: 10.15389/agrobiology.2017.6.1259rus).
  • Zhang P., Cao L., Ma Y.Y., Su B. Zhang C.Y., Li Y.P. Metagenomic analysis reveals presence of different animal viruses in commercial fetal bovine serum and trypsin. Zool Res., 2022, 43(5): 756-766 (doi: 10.24272/j.issn.2095-8137.2022.093).
  • Makoschey B., van Gelder P.T.J.A., Keijsers V., Goovaerts D. Bovine viral diarrhoea virus antigen in foetal calf serum batches and consequences of such contamination for vaccine production. Biologicals, 2003, 31(3): 203-208 (doi: 10.1016/s1045-1056(03)00058-7).
  • Pastoret P.P. Human and animal vaccine contaminations. Biologicals, 2010, 38(3): 332-334 (doi: 10.1016/j.biologicals.2010.02.015).
  • EMA. Guideline on the use of bovine serum in the manufacture of human biological medicinal prod-ucts. 2013. Режим доступа: https://www.ema.europa.eu/en/documents/scientific-guideline/guide-line-use-bovine-serum-manufacture-human-biological-medicinal-products-revision-1_en.pdf. Без даты.
  • Gstraunthaler G., Lindl T., van der Valk J. A plea to reduce or replace fetal bovine serum in cell culture media. Cytotechnology, 2013, 65(5): 791-793 (doi: 10.1007/s10616-013-9633-8).
  • Gstraunthaler G. Alternatives to the use of fetal bovine serum: serum-free cell culture. Altex, 2003, 20(4): 275-281.
  • Flatschart R.B., Caldas L.A., de Oliveira Almeida D., dos Santos N.C., da Cunha Boldrini L., Granjeiro J.M., Folgueras-Flatschart A.V. The Impact of BVDV presence on fetal bovine serum used in the biotechnology industry. In: Advances in medicine and biology /L.V. Berhardt (ed.). Nova Science Publishers, New York, 2016, 95: 75-95.
  • Caballero S., Diez J.M., Belda F.J., Otegui M., Herring S., Roth N.J., Lee D., Gajardo R., Jorquera J.I. Robustness of nanofiltration for increasing the viral safety margin of biological prod-ucts. Biologicals, 2014, 42(2): 79-85 (doi: 10.1016/j.biologicals.2013.10.003).
  • Van der Valk J., Bieback K., Buta C., Cochrane B., Dirks W.G., Fu J., Hickman J.J., Hohen-see C., Kolar R., Liebsch M., Pistollato F., Schulz M., Thieme D., Weber T., Wiest J., Win-kler S., Gstraunthaler G. Fetal bovine serum (FBS): past–present–future. ALTEX — Alternatives to Animal Experimentation, 2018, 35(1): 99-118 (doi: 10.14573/altex.1705101).
  • Kwon S.Y., Kim I.S., Bae J.E., Kang J.W., Cho Y.J., Cho N.S., Lee S.W. Pathogen inactivation efficacy of Mirasol PRT System and Intercept Blood System for non-leucoreduced platelet-rich plasma-derived platelets suspended in plasma. Vox Sang., 2014, 107(3): 254-260 (doi: 10.1111/vox.12158).
  • Sadeghi M., Kapusinszky B., Yugo D.M., Phan T.G., Deng X., Kanevsky I., Opriessnig T., Woolums A.R., Hurley D.J., Meng X.J., Delwart E. Virome of US bovine calf serum. Biologicals, 2017, 46: 64-67 (doi: 10.1016/j.biologicals.2016.12.009).
  • Zabal O., Kobrak A.L., Lager I.A., Schudel A.A., Weber E.L. Contamination of bovine fetal serum with bovine viral diarrhea virus. Rev. Argent. Microbiol., 2000, 32(1): 27-32.
  • Paim W.P., Maggioli M.F., Falkenberg S.M., Ramachandran A., Weber M.N., Canal C.W., Bauermann F.V. Virome characterization in commercial bovine serum batches — a potentially needed testing strategy for biological products. Viruses, 2021, 3(12): 2425 (doi: 10.3390/v13122425).
  • Pecora A., Pérez López J., Jordán M.J., Franco L.N., Politzki R., Ruiz V., Alvarez I. Analysis of irradiated Argentinean fetal bovine serum for adventitious agents. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 2020, 32: 892-897 (doi: 10.1177/1040638720951556).
  • La Polla R., Goumaidi A., Daniau M., Legras-Lachuer C., De Saint-Vis B. NGS method by library enrichment for rapid pestivirus purity testing in biologics. Vaccine, 2023, 41(3): 855-861 (doi: 10.1016/j.vaccine.2022.12.040).
  • Carrondo M.J., Alves P.M., Carinhas N., Glassey J., Hesse F., Merten O.W., Micheletti M., Noll T., Oliveira R., Reichl U., Staby A., Teixeira A.P., Weichert H., Mandenius C.F. How can measurement, monitoring, modeling and control advance cell culture in industrial biotechnology? Biotechnology Journal, 2012, 7(12): 1522-1529 (doi: 10.1002/biot.201200226).
  • Xia H., Vijayaraghavan B., Belák S., Liu L. Detection and identification of the atypical bovine pestiviruses in commercial foetal bovine serum batches. PLoS One, 2011, 6(12): e28553 (doi: 10.1371/journal.pone.0028553).
  • Zhang S.Q., Guo B.T.L., Wang F.-X., Zhu H.-W., Wen Y.-J., Cheng S. Genetic diversity of bovine viral diarrhea viruses in commercial bovine serum batches of Chinese origin. Infection, Genetics and Evolution, 2014, 27: 230-233 (doi: 10.1016/j.meegid.2014.07.021).
  • Bauermann F.V., Harmon A., Flores E.F., Falkenberg S.M., Reecy J.M., Ridpath J.F. In vitro neutralization of HoBi-like viruses by antibodies in serum of cattle immunized with inactivated or modified live vaccines of bovine viral diarrhea viruses 1 and 2. Veterinary Microbiology, 2013, 166 (1-2): 242-245 (doi: 10.1016/j.vetmic.2013.04.032).
  • Giammarioli M., Ridpath J.F., Rossi E., Bazzucchi M., Casciari C., De Mia G.M. Genetic detection and characterization of emerging HoBi-like viruses in archival foetal bovine serum batches. Biologicals, 2015, 43(4): 220-224 (doi: 10.1016/j.biologicals.2015.05.009). 45. Luzzago C., Decaro N. Epidemiology of bovine pestiviruses circulating in Italy. Front. Vet. Sci., 2021, 8: 669942 (doi: 10.3389/fvets.2021.669942).
  • Bauermann F.V., Flores E.F., Falkenberg S.M., Weiblen R., Ridpath J.F. Lack of evidence for the presence of emerging HoBi-like viruses in North American fetal bovine serum lots. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 2014, 26(1): 10-17 (doi: 10.1177/1040638713518208).
  • Kozasa T., Aoki H., Nakajima N., Fukusho A., Ishimaru M., Nakamura S. Methods to select suitable fetal bovine serum for use in quality control assays for the detection of adventitious viruses from biological products. Biologicals, 2011, 39(4): 242-248 (doi: 10.1016/j.biologicals.2011.06.001).
  • Котенева С.В., Нефедченко А.В., Глотова Т.И., Глотов А.Г. Генетический полиморфизм возбудителя вирусной диареи (болезни слизистых оболочек) крупного рогатого скота на молочных комплексах Сибири. Сельскохозяйственная биология, 2018, 53(6): 1238-1246 (doi: 10.15389/agrobiology.2018.6.1238rus).
  • Nims R.W., Gauvin G., Plavsic M. Gamma irradiation of animal sera for inactivation of viruses and mollicutes — a review. Biologicals, 2011, 39(6): 370-377 (doi: 10.1016/j.biologicals.2011.05.003).
  • Merten O.W. Virus contaminations of cell cultures — a biotechnological view. Cytotechnology, 2002, 39(2): 91-116 (doi: 10.1023/A:1022969101804).
  • Uysal O., Sevimli T., Sevimli M., Gunes S., Eker Sariboyac A., Barh D., Azevedo V. Chapter 17 — Cell and tissue culture: the base of biotechnology. In: Omics technologies and bio-engineering. Academic Press, 2018: 391-429 (doi: 10.1016/B978-0-12-804659-3.00017-8).
  • Lee D.Y., Lee S.Y., Yun S.H., Jeong J.W., Kim J.H., Kim H.W., Choi J.S., Kim G.-D., Joo S.T., Choi I., Hur S.J. Review of the current research on fetal bovine serum and the development of cultured meat. Food Sci. Anim. Resour., 2022, 42(5): 775-799 (doi: 10.5851/kosfa.2022.e46).
  • Lung O., Candlish R., Nebroski M., Kruckiewicz P., Buchanan C., Moniwa M. High-throughput sequencing for species authentication and contamination detection of 63 cell lines. Sci. Rep., 2021, 11(1): 21657 (doi: 10.1038/s41598-021-00779-5).
  • Barone P.W., Wiebe M.E., Leung J.C., Hussein I.T.M., Keumurian F.J., Bouressa J., Brussel A., Chen D., Chong M., Dehghani H., Gerentes L., Gilbert J., Gold D., Kiss R., Kreil T.R., Laba-tut R., Li Y., Müllberg J., Mallet L., Menzel C., Moody M., Monpoeho S., Murphy M., Plavsic M., Roth N.J., Roush D., Ruffing M., Schicho R., Snyder R., Stark D., Zhang C., Wolfrum J., Sinskey A.J., Springs S.L. Viral contamination in biologic manufacture and implica-tions for emerging therapies. Nat. Biotechnol., 2020, 38(5): 563-572 (doi: 10.1038/s41587-020-0507-2).
  • Viau S., Eap S., Chabrand L., Lagrange A., Delorme B. Viral inactivation of human platelet lysate by gamma irradiation preserves its optimal efficiency in the expansion of human bone marrow mesenchymal stromal cells. Transfusion, 2019, 59(3): 1069-1079 (doi: 10.1111/trf.15205).
  • Bolin S.R., Ridpath J.F., Black J., Macy M., Roblin R. Survey of cell lines in the American Type Culture Collection for bovine viral diarrhea virus. Journal of Virological Methods, 1994, 48(2-3): 211-221 (doi: 10.1016/0166-0934(94)90120-1).
  • Dezengrini R., Weiblen R., Flores E.F. Selection and characterization of canine, swine and rabbit cell lines resistant to bovine viral diarrhea virus. Journal of Virological Methods, 2006, 137(1): 51-57 (doi: 10.1016/j.jviromet.2006.05.032).
  • Stringfellow D.A., Riddell K.P., Givens M.D., Galik P.K., Sullivan E., Dykstra C.C., Robl J., Kasinathan P. Bovine viral diarrhea virus (BVDV) in cell lines used for somatic cell cloning. Theriogenology, 2005, 63(4): 1004-1013 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2004.05.021).
  • Урываев Л.В., Ионова К.С., Дедова А.В., Дедова Л.В., Селиванова Т.К., Парасюк Н.А., Мезенцева М.В., Костина Л.В., Гущина Е.А., Подчерняева Р.Я., Гребенникова Т.В. Ана-лиз контаминации клеточных культур пестивирусом BVDV и микоплазмами. Вопросы вирусологии, 2012, 5(57): 15-21.
  • Урываев Л.В., Дедова А.В., Дедова Л.В., Ионова К.С., Парасюк Н.А., Селиванова Т.К., Бунькова Н.И., Гущина Е.А., Гребенникова Т.В., Подчерняева Р.Я. О контаминации клеточных культур вирусом диареи — болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота (BVDV). Бюллетень экспериментальной биологии медицины, 2012, 153(1): 88-93.
  • Вангели С.В., Надточей Г.А., Гальнбек Т.В. Смешанные инфекции РНК-содержащих вирусов, в перевиваемых культурах клеток. Инфекционные болезни, 2016, 14(S1): 57.
  • Алексеенкова C.В., Юров Г.К., Гальнбек Т.В., Калита И.А., Юров К.П. Проверка клеточных культур на контаминацию вирусом диареи крупного рогатого скота ― необходимое условие производства биологических препаратов. Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные, 2013, 1: 15-18.
  • Черных О.Ю., Мищенко А.В., Мищенко В.А., Кривонос Р.А., Дробин Ю.Д., Лысенко А.А. Проблема контаминации противовирусных вакцин в мире и России. Ветеринария Кубани, 2019, 3: 3-60 (doi: 10.33861/2071-8020-2019-3-3-6).
  • Глотов А.Г., Котенева С.В., Глотова Т.И., Южаков А.Г., Максютов Р.А, Забережный А.Д. Филогенетический анализ пестивирусов крупного рогатого скота, выявленных в Сибири. Вопросы вирусологии, 2018, 63(4): 185-191 (doi: 10.18821/0507-4088-2018-63-4-185-191).
  • Holinka-Patterson L.G., Fish I.H., Bertram M.R., Hartwig E.J., Smoliga G.R., Stenfeldt C., Rodriguez L.L., Arzt J. Genome of bovine viral diarrhea virus (BVDV) contaminating a contin-uous LFBK-Vβ6 cell line. Microbiology Resource Announcements, 2022, 11(2): e0116721 (doi: 10.1128/mra.01167-21).
  • Djemal L., Fournier C., von Hagen J., Kolmar H., Deparis V. Review: High temperature short time treatment of cell culture media and feed solutions to mitigate adventitious viral contamination in the biopharmaceutical industry. Biotechnol. Progress, 2021, 37(3): e3117 (doi: 10.1002/btpr.3117).
  • Gray A.R., Wood B.A., Henry E., King D.P., Mioulet V. Elimination of non-cytopathic bovine viral diarrhea virus from the LFBK-vβ6 cell line. Front Vet Sci., 2021, 8: 715120 (doi: 10.3389/fvets.2021.715120).
  • Актуальные инфекционные болезни крупного рогатого скота. Руководство. М., 2021.
  • Oguejiofor C.F., Thomas C., Cheng Z., Wathes D.C. Mechanisms linking bovine viral diarrhea virus (BVDV) infection with infertility in cattle. Animal Health Research Reviews, 2019, 20(1): 72-85 (doi: 10.1017/S1466252319000057).
  • Liebler-Tenorio E.M., Ridpath J.E., Neill J.D. Distribution of viral antigen and tissue lesions in persistent and acute infection with the homologous strain of noncytopathic bovine viral diarrhea virus. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 2004, 16(5): 388-396 (doi: 10.1177/104063870401600504).
  • Bruschke C.J., Paal H.A., Weerdmeester K. Detection of bovine virus diarrhea virus in a live bovine herpes virus 1 marker vaccine. Tijdschr Diergeneeskd, 2001, 126: 189-190.
  • Barkema H.W., Bartels C.J., van Wuijckhuise L. Hesselink J.W.Holzhauer M., Weber M.F., Franken P., Kock P.A., Bruschke C.J., Zimmer G.M. Outbreak of bovine virus diarrhea on Dutch dairy farms induced by a bovine herpesvirus 1 marker vaccine contaminated with bovine virus diarrhea virus type 2. Tijdschr Diergeneeskd, 2001, 126(6): 158-165.
  • Falcone E., Cordioli P., Tarantino M., Muscillo M., Sala G., La Rosa G., Archetti I.L., Marian-elli C., Lombardi G., Tollis M. Experimental infection of calves with bovine viral diarrhoea virus type-2 (BVDV-2) isolated from a contaminated vaccine. Veterinary Research Communications, 2003, 27(7): 577-589 (doi: 10.1023/a:1026064603630).
  • Harasawa R. Adventitious pestivirus RNA in live virus vaccines against bovine and swine diseases. Vaccine, 1995, 13(1): 100-103 (doi: 10.1016/0264-410x(95)80018-9).
  • Gómez-Romero N., Velazquez-Salinas L., Ridpath J.F., Verdugo-Rodríguez A., Basurto-Alcán-tara F.J. Detection and genotyping of bovine viral diarrhea virus found contaminating commercial veterinary vaccines, cell lines, and fetal bovine serum lots originating in Mexico. Arch Virol., 2021, 166(7): 1999-2003 (doi: 10.1007/s00705-021-05089-9).
  • Юров К.П., Аноятбекова А.М., Алексеенкова С.В. Новый пестивирус — Хобби вирус — контаминант вакцины против чумы мелких жвачных животных. Ветеринария, 2016, 10: 8-10.
  • Giangaspero M., Vacirca G., Harasawa R., Buttner M., Panuccio A., De Giuli Morghen C., Zanetti A., Belloli A., Verhulst A. Genotypes of pestivirus RNA detected in live virus vaccines for human use. The Journal of Veterinary Medical Science, 2001, 63(7): 723-733 (doi: 10.1292/jvms.63.723).
  • Giangaspero M., Vacirca G., Harasawa R., Buttner M., Panuccio A., De Giuli Morghen C., Zanetti A., Belloli A., Verhulst A. Genotypes of Pestivirus RNA detected in anti-influenza virus vaccines for human use. Vet. Ital., 2004, 40(1): 7-21.
  • Harasawa R., Tomiyama T. Evidence of pestivirus RNA in human virus vaccines. Journal of Clinical Microbiology, 1994, 32(6): 1604-1605 (doi: 10.1128/jcm.32.6.1604-1605.1994).
  • Audet S.A., Crim R.L., Beeler J. Evaluation of vaccines, interferons and cell substrates for pes-tivirus contamination. Biologicals, 2000, 28(1): 41-46 (doi: 10.1006/biol.1999.0240).
  • Studer E., Bertoni G., Candrian U. Detection and characterization of pestivirus contaminations in human live viral vaccines. Biologicals, 2002, 30(4): 289-296 (doi: 10.1006/biol.2002.0343).
  • Laassri M., Mee E.T., Connaughton S.M., Manukyan H., Gruber M., Rodriguez-Hernandez C., Minor P.D., Schepelmann S., Chumakov K., Wood D.J. Detection of bovine viral diarrhoea virus nucleic acid, but not infectious virus, in bovine serum used for human vaccine manufacture. Biologicals, 2018, 55: 63-70 (doi: 10.1016/j.biologicals.2018.06.002).
  • Giangaspero M. Pestivirus species potential adventitious contaminants of biological products. Trop. Med. Surg, 2013, 1(6): 1000153 (doi: 10.4172/2329-9088.1000153).
  • Yolken R., Leister F., Almeido-Hill J., Dubovi E., Reid R., Santosham M. Infantile gastroenter-itis associated with excretion of pestivirus antigens. Lancet, 1989, 333(8637): 517-520 (doi: 10.1016/s0140-6736(89)90066-4).
  • Nogueira F.C.S., Velasquez E., Melo A.S.O., Domont G.B., Sawa A. Zika virus may not be alone: proteomics associates a bovine-like viral diarrhea virus to microcephaly. bioRxiv, 2016: 062596 (doi: 10.1101/062596).
  • Colucci C. Brazil to investigate if other factors act with Zika to cause congenital defects. BMJ, 2016, 354: i4439 (doi: 10.1136/bmj.i4439).
  • Giangaspero M., Okabayashi T. Serological survey on bovine viral diarrhea virus in man and evaluation of relation with Zika virus-associated microcephaly. Open Veterinary Journal, 2023, 13(4): 400-406 (doi: 10.5455/OVJ.2023.v13.i4.1).
  • Gard J.A., Givens M.D., Stringfellow D.A. Bovine viral diarrhea virus (BVDV): epidemiologic concerns relative to semen and embryos. Theriogenology, 2007, 68(3): 434-442 (doi: 10.1016/j.the-riogenology.2007.04.003).
  • Givens M.D., Riddell K.P., Edmondson M.A., Walz P.H., Gard J.A., Zhang Y., Galik P.K., Brodersen B.W., Carson R.L., Stringfellow D.A. Epidemiology of prolonged testicular infections with bovine viral diarrhea virus. Veterinary Microbiology, 2009, 139(1-2): 42-51 (doi: 10.1016/j.vetmic.2009.04.029).
  • Galuppo A.G., Junior N.B., Arruda N.S., Corbellini A.O. Chiappetta C.M., Pavão D.L., D'An-gelo M., Canal C.W., Rodrigues J.L. Evaluation of the effectiveness of semen processing tech-niques to remove bovine viral diarrhea virus from experimentally contaminated semen samples. Journal of Virological Methods, 2013, 187(2): 443-448 (doi: 10.1016/j.jviromet.2012.11.029).
  • Read A.J., Gestier S., Parrish K., Finlaison D.S., Gu X., O'Connor T.W., Kirkland P.D. Pro-longed detection of bovine viral diarrhoea virus infection in the semen of bulls. Viruses, 2020, 12(6): 674 (doi: 10.3390/v12060674).
  • Нефедченко А.В., Котенева С.В., Глотова Т.И., Глотов А.Г. Мониторинг инфицированности спермы быков-производителей вирусами на головном племпредприятии. Ветеринария, 2022, 9: 18-23 (doi: 10.30896/0042-4846.2022.25.9.18-23).
  • Gregg K., Gosch G., Guerra T., Chen S.H., Xiang T., Broek D., Bruner B., Polejaeva I. Large scale in vivo risk assessment of bovine viral diarrhea virus (BVDV) transmission through transfer of bovine embryos produced via somatic cell nuclear transfer (SCNT). Theriogenology, 2010, 74(7): 1264-1270 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2010.05.032).
  • Stringfellow D.A., Riddell K.P., Galik P.K., Damiani P., Bishop M.D., Wright J.C. Quality controls for bovine viral diarrhea virus-free IVF embryos. Theriogenology, 2000, 53(3): 827-839 (doi: 10.1016/S0093-691X(99)00277-0).
  • WOAH Terrestrial Manual 2023. Chapter 1.1.9. Tests for sterility and freedom from contamination of biological materials intended for veterinary use. Paris, 2023: 1-15.
  • ОФС.1.7.2.0006.15. Испытание вирусных вакцин на присутствие посторонних агентов. Госу-дарственная фармакопея Российской Федерации. XIV изд. в 4 т.; 2018: 2773-2782.
  • European pharmacopoeia. 10th ed. Council of Europe, Strasbourg, 2019.
  • Pilgrim C.R., McCahill K.A., Rops J.G., Dufour J.M., Russell K.A., Koch T.G. A review of fetal bovine serum in the culture of mesenchymal stromal cells and potential alternatives for veterinary medicine. Front. Vet. Sci, 2022, 9: 859025 (doi: 10.3389/fvets.2022.859025).
Еще
Статья обзорная