Получение химерного белка-элиситора MF2/MF3 и оценка его защитной активности против вируса табачной мозаики

Автор: Ерохин Д.В., Синельников И.Г., Шашков И.А., Денисенко Ю.А., Поплетаева С.Б., Щербакова Л.А., Джавахия В.Г.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: ДНК-технологии

Статья в выпуске: 3 т.59, 2024 года.

Бесплатный доступ

Использование препаратов на основе безопасных для окружающей среды белковых элиситоров устойчивости растений к болезням может стать приемлемой альтернативой синтетическим пестицидам-ксенобиотикам, поскольку в естественных условиях такие элиситоры разлагаются до безвредных природных аминокислот. Этот подход также существенно снизит риск возникновения резистентности патогенов к средствам защиты растений. Ранее нами были выделены и исследованы бактериальные белки-элиситоры MF2 и MF3, способные индуцировать защитные реакции у широкого круга растений к вирусным и грибным патогенам. Белок MF2 размером 7,2 кДа выделен из Bacillus thuringiensis . Его первичная структура оказалась в высокой степени гомологичной аминокислотной последовательности бактериальных белков холодового шока CspD. Другой белок, MF3 (16,9 кДа) - пептидил-пролил цис/транс-изомераза FKBP типа, выделен из Pseudomonas fluo-rescens . В настоящей работе впервые был получен состоящий из двух элиситоров химерный белок MF2/MF3 и показана его защитная активность в патосистеме табак ( Nicotiana tabacum L.)-вирус табачной мозаики (ВТМ, семейство Virgaviridae , род Tobamovirus , вид Tobacco mosaic virus ). Также впервые установлено, что защитная активность MF2/MF3 не уступает активности смеси индивидуальных белков, взятых в эквивалентных концентрациях. Нашей целью было получение химерного белка MF2/MF3 методом гетерологичной экспрессии в Escherichia coli , оценка его способности индуцировать устойчивость к вирусу табачной мозаики, а также сравнение защитной активности полученного рекомбинантного элиситора с активностью индивидуальных элиситорных белков MF2 и MF3 и их смеси. Белок MF2/MF3, представлявший собой структуру из двух доменов, в которой элиситор MF2 был присоединен к N-концевому участку MF3 через полиаланиновый линкер (AAALIAA), получили на основе конструкции, созданной с использованием классической и Overlap-ПЦР. Рекомбинантный MF2/MF3 экспрессировался трансформированными клетками Escherichia coli Rosetta в виде растворимого белка массой около 25 кДа и был очищен до гомогенного состояния методом металл-аффинной хроматографии. Для оценки антивирусной активности химерного белка MF2/MF3 и сравнения его защитного эффекта с эффектом индивидуальных белков и их смеси использовали биотест с прединокуляционной обработкой отделенных от растения листьев табака некрозообразующего сорта Xanthi NN, которые затем заражали ВТМ. Растения выращивали в климатической камере (PGV 36, «Conviron», Канада) до стадии 3-5 настоящих листьев, в опытах использовали листья 3-го или 4-го яруса. Перед инокуляцией изолированные листьев обрабатывали препаратами химерного MF2/MF3 белка, индивидуальных белков (либо MF2, либо MF3) или их смеси. При этом на одну половинку листа наносили указанные препараты (5 капель по 10 мкл, 10 листьев на каждый вариант обработки), на другую половинку - соответствующий контроль. На следующий день листья инокулировали ВТМ. В первой серии экспериментов проверяли, сохранили ли препараты, полученные с помощью гетерологичной экспрессии свою целевую активность. Поэтому на половинки листьев наносили белки MF2/MF3, MF2, или MF3, а контрольные половинки листьев обрабатывали дистиллированной водой. Во второй серии опытов, целью которых было сравнение защитной активности химерного элиситора с каждым из индивидуальных элиситорных белков, на одну половинку листа наносили MF2/MF3, на вторую - MF2 или MF3. Наконец, в третьей серии экспериментов сравнивали защитный эффект химерного элиситора MF2/MF3 с эффектом смеси MF2 и MF3 после обработки половинок листьев MF2/MF3 и нанесения на их контрольные половинки смеси элиситорных белков. Кроме того, в каждую серию экспериментов включали вариант, в котором на обе половинки 5 листьев наносили капли дистиллированной воды, после чего листья заражали ВТМ (необработанный контроль). Было показано, что полученный химерный элиситор а также рекомбинантные MF2 и MF3 обладает высокой защитной активностью против ВТМ. При этом противовирусная активность элиситора MF2/MF3 приблизительно в 1,5 раза превышала активность каждого из белков. Сравнение уровней защитного эффекта смеси индивидуальных элиситоров и белка MF2/MF3 не выявило между ними статистически значимых различий. Таким образом, химерный MF2/MF3 обладал такой же целевой активностью, как и смесь MF2 и MF3. Эти результаты свидетельствуют о возможности использования вместо смеси элиситоров MF2 и MF3 рекомбинантного элиситора MF2/MF3, получение которого более технологично, чем приготовление смеси, требующее выращивания штаммов-продуцентов каждого из индивидуальных белков и их раздельного выделения.

Еще

Защита растений, болезни растений, устойчивость растений, элиситорные белки, химерные белки, вирус табачной мозаики

Короткий адрес: https://sciup.org/142242467

IDR: 142242467   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2024.3.446rus

Список литературы Получение химерного белка-элиситора MF2/MF3 и оценка его защитной активности против вируса табачной мозаики

  • Mikaberidze A., Paveley N., Bonhoeffer S., van den Bosch F. Emergence of resistance to fungi-cides: the role of fungicide dose. Phytopathology, 2017, 107(5): 545-560 (doi: 10.1094/PHYTO-08-16-0297-R).
  • Thind T.S. New insights into fungicide resistance: a growing challenge in crop protection. Indian Phytopathology, 2022, 75: 927-939 (doi: 10.1007/s42360-022-00550-4).
  • Alengebawy A., Abdelkhalek S.T., Qureshi S.R., Wang M.-Q. Heavy metals and pesticides toxicity in agricultural soil and plants: ecological risks and human health implications. Toxics, 2021, 9(3): 42 (doi: 10.3390/toxics9030042).
  • Wee S.Z., Aris A.Z. Ecological risk estimation of organophosphorus pesticides in riverine ecosys-tems. Chemosphere, 2017, 188: 575-581 (doi: 10.1016/j.chemosphere.2017.09.035).
  • Mishra A.K., Sharma K., Misra R.S. Elicitor recognition, signal transduction and induced resistance in plants. Journal of Plant Interactions, 2012, 7(2): 95-120 (doi: 10.1080/17429145.2011.597517).
  • Peng D.-H., Qiu D.-W., Ruan L.-F., Zhou C.-F., Sun M. Protein elicitor PemG1 from Mag-naporthe grisea induces systemic acquired resistance (SAR) in plants. Molecular Plant-Microbe Interactions, 2011, 24(10): 1239-1246 (doi: 10.1094/MPMI-01-11-0003).
  • Shcherbakova L., Odintsova T., Stakheev A., Fravel D., Zavriev S. Identification of a novel small cysteine-rich protein in the fraction from the biocontrol Fusarium oxysporum strain CS-20 that mitigates Fusarium wilt symptoms and triggers defense responses in tomato. Front. Plant Sci., 2016, 6: 1207 (doi: 10.3389/fpls.2015.01207).
  • Shagdarova B.T., Ilyina A.V., Lopatin S.A., Kartashov M.I., Arslanova L.R., Dzhavakhiya V.G., Varlamov V.P. Study of the protective activity of chitosan hydrolyzate against septoria leaf blotch of wheat and brown spot of tobacco. Applied Biochemistry and Microbiology, 2018, 54: 71-75 (doi: 10.1134/S0003683818010118).
  • Wiesel L., Newton A.C., Elliott I., Booty D., Gilroy E.M., Birch P.R.J., Hein I. Molecular effects of resistance elicitors from biological origin and their potential for crop protection. Front. Plant Sci., 2014, 21(5): 655 (doi: 10.3389/fpls.2014.00655).
  • Albert M. Peptides as triggers of plant defence. Journal of Experimental Botany, 2013, 64(17): 5269-5279 (doi: 10.1093/jxb/ert275).
  • Erbs G., Newman M.-A. The role of lipopolysaccharide and peptidoglycan, two glycosylated bacterial microbe-associated molecular patterns (MAMPs), in plant innate immunity. Molecular Plant Pathology, 2012, 13(1): 95-104 (doi: 10.1111/j.1364-3703.2011.00730.x).
  • Newman M.-A., Sundelin T., Nielsen J.T., Erbs G. MAMP (microbe-associated molecular pat-tern) triggered immunity in plants. Front. Plant Sci., 2013, 4: 139 (doi: 10.3389/fpls.2013.00139).
  • Щербакова Л. А., Джавахия В.Г., Duan Y., Zhang J. Микробные белки — элиситоры устойчивости растений к фитопатогенам и их потенциал для экологически ориентированной защиты сельскохозяйственных культур. Сельскохозяйственная биология, 2023, 58(5): 789-820 (doi: 10.15389/agrobiology.2023.5.789rus).
  • Qui D., Dong Y., Zhang Y., Li S., Shi F. Plant immunity inducer development and application. Molecular Plant-Microbe Interactions, 2017, 30(5): 355-360 (doi: 10.1094/MPMI-11-16-0231-CR).
  • Mejia-Teniente L., Torres-Pacheco I., González-Chavira M.M., Ocampo-Velazquez R.V., Her-rera-Ruiz G., Chapa-Oliver A.M., Guevara-González R.G. Use of elicitors as an approach for sustainable agriculture. African Journal of Biotechnology, 2010, 9(54): 9155-9162.
  • Gómez-Gómez L., Boller T. FLS2: an LRR receptor-like kinase involved in the perception of the bacterial elicitor flagellin in Arabidopsis. Molecular Cell, 2000, 5(6): 1003-1011 (doi: 10.1016/s1097-2765(00)80265-8).
  • Boller T., Felix G. A renaissance of elicitors: perception of microbe-associated molecular patterns and danger signals by pattern-recognition receptors. Annual Review of Plant Biology, 2009, 60: 379-406 (doi: 10.1146/annurev.arplant.57.032905.105346).
  • Popletaeva S.B., Statsyuk N.V., Voinova T.M., Arslanova L.R., Zernov A.L., Bonartsev A.P., Bonartseva G.A., Dzhavakhiya V.G. Evaluation of eliciting activity of peptidyl prolyl cys/trans isomerase from Pseudonomas fluorescens encapsulated in sodium alginate regarding plant resistance to viral and fungal pathogens. AIMS Microbiology, 2018, 4(1): 192-208 (doi: 10.3934/micro-biol.2018.1.192).
  • Wei Z.-M., Laby R.J., Zumoff C.H., Bauer D.W., He S.Y., Collmer A., Beer S.V. Harpin, elicitor of the hypersensitive response produced by the plant pathogen Erwinia amylovora. Science, 1992, 257(5066): 85-88 (doi: 10.1126/science.1621099).
  • Fontanilla J.M., Montes M., De Prado R. Induction of resistance to the pathogenic agent Botrytis cinerea in the cultivation of the tomato by means of the application of the protein “Harpin” (Messenger). Communications in Agricultural and Applied Biological Sciences, 2005 70(3): 35-40.
  • Wang H., Yang X., Guo L., Zeng H., Qiu D. PeBL1, a novel protein elicitor from Brevibacillus laterosporus strain A60, activates defense responses and systemic resistance in Nicotiana bentham-iana. Applied and Environmental Microbiology, 2015, 81(8): 2706-2716 (doi: 10.1128/AEM.03586-14).
  • Zhang Y., Zhang Y., Qiu D., Zeng H., Guo L., Yang X. BcGs1, a glycoprotein from Botrytis cinerea, elicits defence response and improves disease resistance in host plants. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2015, 457(4): 627-634 (doi: 10.1016/j.bbrc.2015.01.038).
  • Kulye M., Liu H., Zhang Y., Zeng H., Yang X., Qiu D. Hrip1, a novel protein elicitor from necrotrophic fungus, Alternaria tenuissima, elicits cell death, expression of defence-related genes and systemic acquired resistance in tobacco. Plant Cell Environ., 2012, 35(12): 2104-2120 (doi: 10.1111/j.1365-3040.2012.02539.x).
  • Zhang W., Yang X., Qiu D., Zeng H., Guo L., Mao J. Activator protein PeaT1 induced systemic resistance to Tobacco mosaic virus in tobacco. Acta Phytopathologica Sin., 2010, 40: 290-299.
  • Zhang W., Yang X., Qiu D., Guo L., Zeng H., Mao J., Gao Q. Pea T1-induced systemic acquired resistance in tobacco follows salicylic acid-dependent pathway. Molecular Biology Reports, 2011, 38: 2549-2556 (doi: 10.1007/s11033-010-0393-7).
  • Mao J., Liu Q., Yang X., Long C., Zhao M., Zeng H., Liu H., Yuan J., Qiu D. Purification and expression of a protein elicitor from Alternaria tenuissima and elicitor-mediated defence responses in tobacco. Annals of Applied Biology, 2010, 156(3): 411-420 (doi: 10.1111/j.1744-7348.2010.00398.x).
  • Кромина К.А., Джавахия В.Г. Экспрессия бактериального гена CspD в растениях табака приводит к повышению устойчивости к грибным и вирусным фитопатогенам. Молeкуляр-ная генетика, микробиология и вирусология, 2006, 1: 31-34.
  • Shumilina D., Krämer R., Klocke E., Dzhavakhiya V. MF3 (peptidyl prolyl cis-trans isomerase of FKBP type from Pseudomonas fluorescens) — an elicitor of non-specific plant resistance against pathogens. Phytopathol. Polonica, 2006, 41: 39-49.
  • Джавахия В.Г., Воинова Т.М., Шумилина Д.В. Поиск активного центра пептидил-пролил-цис/транс-изомеразы из Pseudonomas fluorescens, ответственного за индукцию устойчивости к вирусу табачной мозаики у растений табака (Nicotiana tabacum L.). Сельскохозяйственная биология, 2016, 51(3): 392-400 (doi: 10.15389/agrobiology.2016.3.392rus).
  • Djavakhia V.G., Nikolaev O.N., Voinova T.M., Battchikova N.V., Korpela T., Khomutov R.M. DNA sequence of gene and amino acid sequence of protein from Bacillus thuringiensis, which induces non-specific resistance of plants to viral and fungal diseases. Journal of Russian Phyto-pathological Society, 2000, 1: 75-81.
  • Horn G., Hofweber R., Kremer W., Kalbitzer H.R. Structure and function of bacterial cold shock proteins. Cell. Mol. Life Sci., 2007, 64: 1457-1470 (doi: 10.1007/s00018-007-6388-4).
  • Скабкин М.А., Скабкина О.В., Овчинников Л.П. Мультифункциональные белки с доме-ном холодового шока в регуляции экспрессии генов. Успехи биологической химии, 2004, 44: 3-52.
  • Овчинников Л.П., Скабкин М.А., Рузанов П.В., Евдокимова В.М. Мажорные белки мРНП в структурной организации и функционировании мРНК в клетках эукариот. Молекулярная биология, 2001, 35(4): 548-558.
  • Subin C.S., Pradeep M.A., Vijayan K.K. FKBP-type peptidyl-prolyl cis-trans isomerase from thermophilic microalga, Scenedesmus sp.: molecular characterisation and demonstration of ac-quired salinity and thermotolerance in E. coli by recombinant expression. Journal of Applied Phy-cology, 2016, 28: 3307-3315 (doi: 10.1007/s10811-016-0854-z).
  • Chang H.-H., Lee C.-J., Chang C.-J., Jan F.-J. FKBP-type peptidyl-prolyl cis-trans isomerase interacts with the movement protein of tomato leaf curl New Delhi virus and impacts viral repli-cation in Nicotiana benthamiana. Molecular Plant Pathology, 2022, 23(4): 561-575 (doi: 10.1111/mpp.13181).
  • Кромина К.А., Игнатов А.Н., Абдеева И.А. Участие пептидил-пролил-цис/транс-изомераз в патологическом процессе. Биологические мембраны, 2008, 25(4): 243-251.
  • Dzhavakhiya V.G., Filippov A.V., Skryabin K.G., Voinova T.M., Kouznetsova M.A., Shulga O.A., Shumilina D.V., Kromina K.A., Pridannikov M.V., Battchikova N.V., Korpela T. Proteins inducing multiple resistance of plants to phytopathogens and pests. Intern. Pat. Classifica-tion: C07K 14/21. Intern. applic. number: PCT/FI2004/000766. Intern. Filing date: 17 December 2004 (17.12.2004). Priority data: 20031880 22 December 2003. Intern. Public. number: WO 2005/061533 A1.
  • Popletaeva S., Erokhin D., Dzhavakhiya V. Comparison of the protective activity of elicitor pro-teins MF2 and MF3 applied individually or in combination against tobacco mosaic virus on tobacco leaves. In: Agriculture digitalization and organic production. ADOP 2023. Smart innovation, systems and technologies. V. 362 /A. Ronzhin, A. Kostyaev (eds.). Springer, Singapore, 2023: 225-234 (doi: 10.1007/978-981-99-4165-0_21).
  • Urban L., Lauri F., Ben Hdech D., Aarrouf J. Prospects for increasing the efficacy of plant resistance inducers stimulating salicylic acid. Agronomy, 2022, 12(12): 3151 (doi: 10.3390/agron-omy12123151).
  • Reglinski T., Havis N., Rees H.J., de Jong H. The practical role of induced resistance for crop protection. Phytopathology, 2023, 113(4): 719-731 (doi: 10.1094/PHYTO-10-22-0400-IA).
  • Walters D.R., Havis N.D., Paterson L., Taylor J., Walsh D.J., Sablou C. Control of foliar path-ogens of spring barley using a combination of resistance elicitors. Frontiers in Plant Science, 2014, 5: 241 (doi: 10.3389/fpls.2014.00241).
  • Oxley S.J., Walters D.R. Control of light leaf spot (Pyrenopeziza brassicae) on winter oilseed rape (Brassica napus) with resistance elicitors. Crop Protection, 2012, 40: 59-62 (doi: 10.1016/j.cro-pro.2012.04.028).
  • Aćimović S.G., Meredith C.L., Santander R.D., Khodadadi F. Proof of concept for shoot blight and fire blight canker management with postinfection spray applications of prohexadione-calcium and acibenzolar-S-methyl in apple. Plant Disease, 2021, 105(12): 4095-4105 (doi: 10.1094/PDIS-08-20-1744-RE).
  • Anith K.N., Momol M.T., Kloepper J.W., Marois J.J., Olson S.M., Jones J.B. Efficacy of plant growth-promoting Rhizobacteria, acibenzolar-S-methyl, and soil amendment for integrated management of bacterial wilt on tomato. Plant Disease, 2004, 88(6): 669-673 (doi: 10.1094/PDIS.2004.88.6.669).
  • Bahadou S.A., Ouijja A., Boukhari M.A., Tahiri A. Development of field strategies for fire blight control integrating biocontrol agents and plant defense activators in Morocco. Journal of Plant Pathology, 2017, 99: 51-58.
  • Percival G.C., Noviss K., Haynes I. Field evaluation of systemic inducing resistance chemicals at different growth stages for the control of apple (Venturia inaequalis) and pear (Venturia pirina) scab. Crop Protection, 2009, 28(8): 629-633 (doi: 10.1016/j.cropro.2009.03.010).
  • Esquivel-Cervantes L.F., Tlapal-Bolaños B., Tovar-Pedraza J.M., Pérez-Hernández O., Leyva-Mir S.G., Camacho-Tapia M. Efficacy of biorational products for managing diseases of tomato in greenhouse production. Plants, 2022, 11(13): 1638 (doi: 10.3390/plants11131638).
  • Park K., Park J.-W., Lee S.-W., Balaraju K. Disease suppression and growth promotion in cucumbers induced by integrating PGPR agent Bacillus subtilis strain B4 and chemical elicitor ASM. Crop Protection, 2013, 54: 199-205 (doi: 10.1016/j.cropro.2013.08.017).
Еще
Статья научная