Получение стабилизированных водных извлечений из плодов софоры, травы душицы, цветков липы
Автор: Шаталова Т.А., Айрапетова А.Ю., Мичник Л.А., Мичник О.В., Клишина И.И.
Журнал: Известия Самарского научного центра Российской академии наук @izvestiya-ssc
Рубрика: Биологические ресурсы: флора
Статья в выпуске: 1-4 т.13, 2011 года.
Бесплатный доступ
Водные извлечения из растений (настои и отвары) содержат водорастворимый комплекс биологически активных веществ (БАВ), изготавливаются без использования этанола и могут использоваться в составе сиропов, напитков, соков и йогуртов, обогащенных БАВ растений, а также лосьонов, шампуней, зубных паст, ополаскивателей для волос, кремов, средств для ванн, пропиток для влажных салфеток. Особенно важно при этом сохранить как концентрацию БАВ, так и химическую и микробиологическую стабильность водных извлечений, которые с течением времени подвергаются микробиологической порче, химической деструкции и окислению. Установлено, что оптимальными условиями получения извлечений, стабильных в течение 2 лет, являются: экстрагирование сырья кипящей водой очищенной, микробиологическая стабилизация путем добавления нипагина в концентрации 0,15%, химическая стабилизация путем добавления натрия метабисульфита (0,5%) и трилона Б (0,5%).
Водные извлечения, лекарственные растения, плоды софоры, трава душицы, цветки липы, origanum душицы
Короткий адрес: https://sciup.org/148199779
IDR: 148199779
Текст научной статьи Получение стабилизированных водных извлечений из плодов софоры, травы душицы, цветков липы
Айрапетова Ася Юрьевна, кандидат фармацевтических наук, старший преподаватель кафедры фармацевтической химии
Мичник Людмила Андреевна, кандидат фармацевтических наук, доцент кафедры технологии лекарств
Мичник Олег Викторович, кандидат фармацевтических наук, доцент кафедры технологии лекарств
Клишина Инна Ивановна, кандидат фармацевтических наук, преподаватель кафедры биохимии и микробиологии
Цель работы : изучение способов стабилизации водных извлечений из плодов софоры, травы душицы, цветков липы, содержащих, главным образом, флавоноиды [1].
Материалы и методы исследования. В работе использовали: плоды софоры, траву душицы, цветки липы, а также вспомогательные вещества: натрия метабисульфит, трилон Б, нипагин. При изучении микробиологической стабильности были использованы 2 вида извлечений, полученные экстрагированием растительного сырья водой очищенной в соотношении 1:10. Первый вид извлечений готовили по методике, описанной в Государственной фармакопее (ГФ). Второй вид извлечений изготавливали аналогично, но для экстрагирования сырья использовали воду очищенную кипящую. Затем извлечения подвергали испытанию на микробиологическую чистоту в соответствие с требованиями ГФ (определение числа жизнеспособных бактерий и грибов, выявление бактерий семейства Entero-bacteriaceae, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus).
На втором этапе исследования изучали возможность получения стерильных извлечений микробиологически стабильных в течение года. Для этого в извлечения, полученные с помощью кипящей воды, добавляли консервант нипагин в количестве 0,05%; 0,10%; 0,15% на 100 мл настоя. Полученные извлечения закладывали на хранение в естественных условиях при комнатной температуре и проверяли их на микробиологическую чистоту через каждые 3 месяца в течение года. В связи с тем, что применение кипящей воды при изготовлении настоев может ухудшить качество извлечений (снизить концентрацию экстрактивных веществ и флавоноидов), определяли оптимальное время экстрагирования сырья. Критериями выбора продолжительности экстрагирования явились: величина сухого остатка, содержание флавоноидов (оценивали методом дифференциальной спектрофотометрии), сохранение стабильности БАВ (оценивали методом тонкослойной хроматографии (ТСХ, пластинки Сорб-фил–УФ-ПТСХ, система БУВ 4:1:2) и спектрофотометрически). Изучение химической стабильности стерильных извлечений, помещенных в стеклянные запаянные ампулы из нейтрального стекла и хранившихся при комнатной температуре в защищенном от света месте, показало, что химическая стабильность БАВ извлечений сохраняется только в течение 4-х месяцев. Поэтому с целью повышения химической стабильности и увеличения срока годности извлечений были использованы трилон Б и натрия метабисульфит в различных концентрациях. Предварительно было установлено, что данные вещества не вступают в химические реакции с БАВ изучаемых настоев (не наблюдали никаких изменений на ТСХ, УФ- спектрах, а также во внешнем виде извлечений). Для каждого вида сырья было приготовлено по 6 серий извлечений с добавлением нипагина ( серии №№ 1-6 -0,15%), трилона Б (серия 1 – 0,1%, серия 2 – 0,2%, серия 3 – 0,3%, серия 4 – 0,4%, серия 5 – 0,5%, серия 6 – 0,6%) и натрия метабисульфита (серия 1 – 0,1%, серия 2 – 0,2%, серия 3 – 0,3%, серия 4 – 0,4%, серия 5 – 0,5%, серия 6 – 0,6%). Для определения срока годности была применена методика «ускоренного старения». Подготовленные водные извлечения запаивали в ампулы из нейтрального стекла и закладывали пробы на хранение при комнатной температуре на 24 месяца. Через каждые 30 суток образцы анализировали: изучали органолептические свойства, УФ-спектры, ТСХ, определяли сухой остаток и содержание флавоноидов.
Результаты и обсуждение . Результаты изучения микробиологической стабильности извлечений, полученных с использованием воды очищенной, воды очищенной кипящей, с использованием нипагина, через год хранения в естественных условиях, приведены в табл. 1.
Таблица 1. Результаты испытания извлечений на микробиологическую чистоту (на примере извлечений софоры)
Наименование извлечения |
Содержание микроорганизмов в 1 г |
|||||
I*** |
II 1 |
III |
IV 1 |
V 1 |
VI |
|
(норма не более 10) |
(норма - должны отсутствовать) |
|||||
извлечение cофоры 1* |
271 |
15 |
-**** |
- |
- |
- |
извлечение софоры 2* |
10 |
- |
- |
- |
- |
- |
извлечение cофоры 2(0,05**) |
6 |
- |
- |
- |
- |
- |
извлечение cофоры 2(0,10) |
2 |
- |
- |
- |
- |
- |
извлечение cофоры 2(0,15) |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
Примечание : 1* - настои, приготовленные с использованием воды очищенной комнатной температуры; 2* - настои, приготовленные с использованием кипящей воды; (0,05**) - количество нипагина в 100 мл настоя; (***) - I – аэробные бактерии; II – грибы; III – энтеробактерии; IV – E. сoli; V – Pseudomonas aeruginosa; VI – Staphylococcus aureus; (-****) -микроорганизмы не обнаружены.
Из результатов исследования, представленных в табл. 1, следует, что извлечения, приготовленные с использованием второго способа, являются более микробиологически чистыми: не содержат грибов, бактерий семейства Enterobac-teriaceae, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus. Кроме того, настои, приготовленные 2 способом с применением нипагина в концентрации 0,15%, остаются стерильными в течение года. Результаты эксперимента по изучению влияния кипящей воды на качество извлечений представлены в табл. 2. Таким образом, из данных эксперимента, представленных в табл. 2, следует, что использование кипящей воды позволяет полу- чить более качественные извлечения; время экстрагирования составляет для: травы душицы – 15 минут; цветков липы – 15 минут, плодов софоры – 30 минут.
Результаты исследований по повышению химической стабильности извлечений представлены в табл. 3. Анализ результатов исследований показал, что стабильными остались образцы извлечений софоры, душицы, липы №5 и №6 (на ТСХ и в УФ-спектрах извлечений, подвергшихся хранению при комнатной температуре в течение 24 месяцев, не обнаружено каких-либо изменений).
Таблица 2 . Процентный выход БАВ из плодов софоры, травы душицы, цветков липы при экстрагировании кипящей водой
Время настаивания, мин |
Среднее значение концентрации флавонои- |
Среднее значение сухого остат-ка,% |
Среднее значение концентрации флаво-ноидов,% |
Среднее значение сухого остат-ка,% |
Среднее значение концентрации флаво-ноидов,% |
Среднее значение сухого остат-ка,% |
дой ечепие софоры |
извлечение душицы |
извлечение липы |
||||
15 контроль |
0,064 |
13,27 |
0,069 |
12,87 |
0,018 |
19,36 |
15* |
0,051 |
10,29 |
0,091 |
16,72 |
0,022 |
22,92 |
20* |
0,059 |
12,18 |
0,077 |
14,24 |
0,019 |
20,71 |
25* |
0,067 |
13,81 |
0,067 |
12,85 |
0,017 |
17,67 |
30* |
0,080 |
16,51 |
0,061 |
11,26 |
0,011 |
11,07 |
40* |
0,065 |
13,54 |
0,048 |
9,12 |
0,008 |
8,73 |
Таблица 3. Результаты анализа стабилизированных извлечений (на примере извлечений душицы и липы)
Время настаивания, мин |
Среднее значение концентрации флавонои-дов,% |
Среднее значение сухого остат-ка,% |
Данные об УФ-спектре, max, нм |
Данные о ТСХ -величины Rf пятен |
|||||
380-700 нм |
365 нм УФ свет |
365 нм УФ свет +AlCl 3 |
|||||||
контроль** |
извлечение душицы |
0,069 |
12,87 |
406 нм |
0,42 0,53 0,62 0,69 0,91-(лютеолин) |
0,42 0,53 0,62 0,69 0,91-(лютеолин) |
0,42 0,53 0,62 0,69 0,91-(лютеолин) |
||
серия 1 |
0,051 |
9,33 |
-«- |
снижение интенсивности окраски, уменьшение размеров и исчезновение отдельных пятен |
|||||
серия 2 |
0,065 |
11,98 |
-«- |
||||||
серия 3 |
0,074 |
13,41 |
-«- |
||||||
серия 4 |
0,080 |
14,57 |
-«- |
||||||
серия 5 |
0,092 |
16,72 |
-«- |
без изменений |
|||||
серия 6 |
0,091 |
16,68 |
-«- |
без изменений |
|||||
контроль *** |
извлечение липы |
0,018 |
19,36 |
403 нм |
- 0,45 0,66 0,70-(кверцетин) - - - |
0,36 0,45 0,66 0,70-(кверцетин) 0,74 0,49 - |
0,36 0,45 0,66 0,70-(кверцетин) - 0,59 |
||
серия 1 |
0,013 |
15,21 |
-«- |
снижение интенсивности окраски, уменьшение размеров пятен |
|||||
серия 2 |
0,015 |
17,45 |
-«- |
||||||
серия 3 |
0,017 |
19,67 |
-«- |
||||||
серия 4 |
0,018 |
21,03 |
-«- |
||||||
серия 5 |
0,020 |
22,92 |
-«- |
без изменений |
|||||
серия 6 |
0,019 |
22,89 |
-«- |
без изменений |
Примечание: контроль* , ** , ***- свежеприготовленные извлечения
Выводы: в результате проведенного исследования установлено, что оптимальными условиями получения стабильных водных извлечений из плодов софоры, травы душицы, цветков липы являются: экстрагирование водой с температурой 95-100°С в течение 15, 30, 15 минут, соответственно, с последующей стабилизацией нипагином (0,15%), трилоном Б (0,5%), натрия метабисульфитом (0,5%).
Список литературы Получение стабилизированных водных извлечений из плодов софоры, травы душицы, цветков липы
- Георгиевский, В.П. Биологически активные вещества лекарственных растений/В.П. Георгиевский, Н.Ф. Комиссаренко, С.Е. Дмитрук. -Новосибирск: Наука, 1990. 336 с.