Получение вирулентного глубинного мицелия Stagonospora cirsii C-163 - потенциального микогербицида для борьбы с бодяком полевым Cirsium arvense (L.) Scop

Получение вирулентного глубинного мицелия Stagonospora cirsii C-163 - потенциального микогербицида для борьбы с бодяком полевым Cirsium arvense (L.) Scop

Автор: Сокорнова С.В., Берестецкий А.О.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Биопрепараты и биозащита

Статья в выпуске: 5 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

Биогербициды должны проявлять стабильную эффективность в полевых условиях, обладать специфичностью и скоростью действия, быть совместимыми с другими препаратами и востребованными на рынке. Основой микогербицидов может служить как мицелий, так и конидии фитопатогенных грибов. Мицелий менее устойчив к сушке, чем конидии. В то же время технологический процесс получения конидий зачастую сложнее, а эффективность в полевых условиях менее стабильна, чем у мицелия. Фитопатогенный гриб Stagonospora cirsii J.J. Davis, вызывающий заболевание пятнистости листьев у корнеотпрысковых сорных растений семейства Asteraceae, рассматривается как потенциальный микогербицид, предназначенный для борьбы с бодяком полевым Cirsium arvense (L.) Scop. В настоящей работе мы впервые показали, что, манипулируя составом жидкой питательной среды, можно существенно повысить патогенность мицелия гриба S. cirsii и его толерантность к высушиванию. Цель исследования - получить высокий выход вирулентного мицелия S...

Еще

Фитопатогенные грибы, бодяк полевой, глубинная жидкофазная ферментация, источники углерода и азота, мицелий, микогербицид

Короткий адрес: https://sciup.org/142216591

IDR: 142216591   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2018.5.1054rus

Список литературы Получение вирулентного глубинного мицелия Stagonospora cirsii C-163 - потенциального микогербицида для борьбы с бодяком полевым Cirsium arvense (L.) Scop

  • Bailey K.L., Falk S. Turning research on microbial bioherbicides into commercial products -a Phoma story. Pest Technology, 2011, 5(1): 73-79.
  • Hershenhorn J., Casella F., Vurro M. Weed biocontrol with fungi: past, present and future. Biocontrol Sci. Techn., 2016, 26(10): 1313-1326 ( ) DOI: 10.1080/09583157.2016.1209161
  • Amsellem Z., Zidack N.K., Quimby P.C. Jr., Gressel J. Long-term dry preservation of viable mycelia of two mycoherbicidal organisms. Crop Prot., 1999, 18(10): 643-649 ( ) DOI: 10.1016/S0261-2194(99)00070-8
  • Berestetskiy A., Sokornova S. Production and stabilization of mycoherbicides. In: Biological approaches for controlling weeds/R. Radhakrishnan (ed.). TechOpen, 2018: 63-88 ( ) DOI: 10.5772/intechopen.76936
  • Berestetskiy A.O., Kungurtseva O.V., Sokornova S.V. Can mycelial inoculum be an alternative to conidia in the case of Stagonospora cirsii J.J. Davis, a potential biocontrol agent of Cirsium arvense? Proc. 13th EWRS Symposium «Current status and future prospects in bioherbicide research and product development». Bari, Italy, 2005: 7.
  • Sokornova S.V., Berestetskiy A.O. Production of virulent mycelial inoculum of Stagonospora cirsii Davis by liquid state fermentation. Proc. XV Congress of European mycologists. SPb, 2007: 204-205.
  • Amsellem Z., Zidack N.J., Charles P., Quimby Jr., Cohen B., Gressel J. Novel formulations of mycelia from liquid fermentation. Proc. III International Weed Science Congress/A. Légère (ed). Foz do Iguassu, Brazil, 2000: 379.
  • Dokken F. Submerged fermentation of Colletotrichum truncatum for biological control of scentless chamomile. Master’s thesis. University of Saskatchewan, Saskatoon, 2007.
  • Makowski R.M.D. Effect of inoculum concentration, temperature, dew period, and plant growth stage on disease of round-leaved mellow and velvetleaf by Colletotrichum gloesporioides f. sp. malvae, Phytopathology, 1993, 83: 1229-1234 ( ) DOI: 10.1094/Phyto-83-1229
  • Ng S.C., Kadir J., Hailmi M.S., Rahim A.A. Efficacy of Exserohilum longirostratum on barnyard grass (Echinochloa crus-galli spp. crusgalli) under field conditions. Biocontrol Sci. Techn., 2011, 21(4): 449-460 ( ) DOI: 10.1080/09583157.2011.554972
  • Heiny D.K., Templeton G.E. Effects of spore concentration, temperature and dew period on disease of field bindweed caused by Phoma proboscis. Phytopathology, 1991, 81: 905-909 ( ) DOI: 10.1094/Phyto-81-905
  • Гасич Е.Л., Берестецкий А.О., Хлопунова Л.Б. Влияние экологических факторов на патогенность Calophoma complanata в отношении борщевика Сосновского. Микология и фитопатология, 2018, 3(52): 207-216.
  • Jahromi F.G., Van De Ven R.J., Cother E.J., Ash G.J. The interaction between Plectosporium alismatis and sublethal doses of bensulfuron-ethyl reduces the growth of starfruit (Damasonium minus) in rice. Biocontrol Sci. Techn., 2006, 16(9): 929-940 ( ) DOI: 10.1080/09583150600828106
  • Gressel J. Herbicides as synergists for mycoherbicides, and vice versa. Weed Science, 2010, 58(3): 324-328 ( ) DOI: 10.1614/WS-09-071.1
  • Weaver M.A., Boyette C.D., Hoagland R.E. Rapid kudzu eradication and switchgrass establishment through herbicide, bioherbicide and integrated programmes. Biocontrol Sci. Techn., 2016, 26(5): 640-650 ( ) DOI: 10.1080/09583157.2016.1141175
  • Wraight S.P., Jackson M.A., de Kock S.L. Production, stabilization and formulation of fungal biocontrol agents. In: Fungi as biocontrol agents. Progress, problems and potential/T.M. Butt, C. Jackson, N. Magan (eds.). CAB International, NY, 2001.
  • Bailey K.L. The bioherbicide approach to weed control using plant pathogens. In: Integrated pest management: current concepts and ecological perspective/D.P. Abrol (ed.). San Diego, Academic Press, 2014: 245-266 ( ) DOI: 10.1016/B978-0-12-398529-3.00014-2
  • Van Lenteren J.C., Bolckmans K., Köhl J., Ravensberg W.J., Urbaneja A. Biological control using invertebrates and microorganisms: plenty of new opportunities. BioControl, 2018, 63: 39-59 ( ) DOI: 10.1007/s10526-017-9801-4
  • Hershenhorn J., Casella F., Vurro M. Weed biocontrol with fungi: past, present and future. Biocontrol Sci. Techn., 2016, 26(10): 1313-1328 ( ) DOI: 10.1080/09583157.2016.1209161
  • Boyette C.D., Hoagland R.E., Stetina K.C. Efficacy improvement of a bioherbicidal fungus using a formulation-based approach. American Journal of Plant Sciences, 2016, 7(16): 2349-2358 ( ) DOI: 10.4236/ajps.2016.716206
  • Yu X., Hallet S.G., Sheppard J., Watson A.K. Effects of carbon concentration and carbon-to-nitrogen ratio on growth, conidiation, spore germination and efficacy of the potential bioherbicide Colletotrichum coccoides. J. Ind. Microbiol. Biot., 1998, 20(6): 333-338 ( ) DOI: 10.1038/sj.jim.2900534
  • Методы экспериментальной микологии/Под ред. В.И. Билай. Наукова Думка, Киев, 1982.
  • Jackson M.A., Cliquet S., Iten L.B. Media and fermentation processes for the rapid production of high concentrations of stable blastospores of the bioinsecticidal fungus Paecilomyces fumosoroseus. Biocontrol Sci. Techn., 2003, 13(1): 23-33 ( ) DOI: 10.1080/0958315021000054368
  • Schisler D. A., Jackson M. A., Bothast R. J. Influence of nutrition during conidiation of Colletotrichum truncatum on conidial germination and efficacy in inciting disease in Sesbania exaltata. Phytopathology, 1991, 81(6): 587-590.
  • Aybeke M. Several pesta tablet trials with Aspergillus alliaceus Thom & Church for effective underground and aboveground Orobanche L. biocontrol. Trakya University Journal of Natural Sciences, 2016, 17(1): 65-70.
  • Tehranchian P., Adair R.J., Lawrie A.C. Potential for biological control of the weed Angled Onion (Allium triquetrum) by the fungus Stromatinia cepivora in Australia. Australasian Plant Path., 2014, 43(4): 381-392 ( ) DOI: 10.1007/s13313-014-0279-6
  • Schisler D.A., Jackson M.A. Germination of soil-incorporated microsclerotia of Colletotrichum truncatum and colonization of seedlings of the weed Sesbania exaltata. Can. J. Microbiol., 1996, 42(10): 1032-1038 ( ) DOI: 10.1139/m96-132
  • Glare T., Caradus J., Gelernter W., Jackson T., Keyhani N., Köhl J., Marrone P., Morin L., Stewart A. Have biopesticides come of age? Trends Biotechnol., 2012, 30(5): 250-258 ( ) DOI: 10.1016/j.tibtech.2012.01.003
  • Boyette C.D., Hoagland R.E., Weaver M.A., Stetina K.C. Interaction of the bioherbicide Myrothecium verrucaria and glyphosate for kudzu control. American Journal of Plant Sciences, 2014, 5: 394-395 ( ) DOI: 10.4236/ajps.2014.526413
  • Duke S.O., Owens D.K., Dayan F.E. The growing need for biochemical bioherbicides. In: Biopesticides: state of the art and future opportunities. ACS Symposium Series. American Chemical Society, Washington, DC, 2014: 31-43 ( ) DOI: 10.1021/bk-2014-1172.ch003
  • Yuzikhin O., Mitina G., Berestetskiy A. Herbicidal potential of stagonolide, a new phytotoxic nonenolide from Stagonospora cirsii. J. Agr. Food Chem., 2007, 55(19): 7707-7711 ( ) DOI: 10.1021/jf070742c
  • Duke S.O., Dayan F.E. Discovery of new herbicide modes of action with natural phytotoxins. In: Discovery and synthesis of crop protection products. ACS Symposium Series. American Chemical Society, Washington, DC, 2015: 79-92 ( ) DOI: 10.1021/bk-2015-1204.ch007
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp