Применение композитных скаффолдов на основе стеклоуглерода в инженерии костной ткани
Автор: Тимощук Е. И., Пономарева Д. В., Гареев А. Р.
Журнал: Гений ортопедии @geniy-ortopedii
Рубрика: Оригинальные статьи
Статья в выпуске: 1 т.31, 2025 года.
Бесплатный доступ
Введение. Восстановление костных дефектов остаётся одной из острых проблем регенеративной медицины, для решения которой наиболее перспективным является использование тканево-инженерных конструкций на основе композитных скаффолдов, стимулирующих остеогенез. Одна из основных задач тканевой инженерии - разработка скаффолда, имитирующего трехмерную архитектуру, для остеогенных прогениторных клеток внутри скаффолда с возможностью взаимодействия клеток с химическими и физическими стимулами естественной кости.Цель работы - оценить возможность применения композитных скаффолдов на основе стеклоуглерода в тканевой инженерии.Материалы и методы. В данном исследовании описан воспроизводимый метод получения трехмерных пористых скаффолдов на основе стеклоуглерода с поверхностями, модифицированными пироуглеродом (CF-C) и пироуглеродом с гидроксиапатитом (СF-C-HAP), и исследованы пористость, прочностные характеристики, цитотоксичность, остеоиндуктивность полученных композитных скаффолдов. Остеогенную дифференциацию культивируемых мезенхимальных стволовых клеток (МСК) человека оценивали на скаффолдах CF-C и CF-C-HAP с использованием общих остеогенных маркеров, таких как активность щелочной фосфатазы (ЩФ), окрашивание ализарином красным и количественной ПЦР в реальном времени (qPCR).Результаты. Исследования in vitro показали биосовместимость разработанных скаффолдов. Установлена способность CF-C-HAP индуцировать дифференцировку МСК в остеогенном направлении и продуцировать кальцийсодержащий матрикс.Обсуждение. Получаемые на основе стеклоуглеродной пены скаффолды с покрытиями пироуглеродом и гидроксиапатитом обладают трехмерной структурой с открытой пористостью, прочностью, сопоставимой с прочностью замещаемой ткани, и имитируют структуру трабекулярной кости. При этом прочность стеклоуглеродной пены без покрытий отличается низкими значениями предела прочности при сжатии. Для всех исследуемых материалов установлено наличие адгезионной и пролиферативной активности МСК, высокой клеточной адгезии и отсутствие цитотоксичности. Определение уровня экспрессии мРНК методом ПЦР в реальном времени показало, что у клеток, культивированных на CS-C-HAP, через 14 сут. наблюдается экспрессия генов VDR, BMP7, IGFR1, SPP1, что демонстрирует остеогенный потенциал. Результаты наших исследований по изучению активности фосфатазы и окрашивания ализариновым красным продемонстрировали, что скаффолд CF-C-HAP стимулирует дифференцировку остеобластов in vitro в остеогенном направлении, а также процессы внутриклеточной минерализации.Заключение. Композитные скаффолды CF-C-HAP на основе стеклоуглеродной пены поддерживают пролиферацию и дифференциацию клеток и могут быть перспективными для использования в инженерии костной ткани.
Скаффолд, стеклоуглерод, гидроксиапатит, остеогенез, мезенхимальные стромальные клетки, восстановление костной ткани
Короткий адрес: https://sciup.org/142243889
IDR: 142243889 | DOI: 10.18019/1028-4427-2025-31-1-28-41
Список литературы Применение композитных скаффолдов на основе стеклоуглерода в инженерии костной ткани
- Садовой М.А., Ларионов П.М., Самохин А.Г., Рожнова О.М. Клеточные матрицы (скаффолды) для целей регенерации кости: современное состояние проблемы. Хирургия позвоночника. 2014;2:79-86. doi: 10.14531/ss2014.2.79-86.
- Phadke A, Hwang Y, Kim SH, et al. Effect of scaffold microarchitecture on osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells. Eur Cell Mater. 2013;25:114-129. doi: 10.22203/ecm.v025a08.
- Taylor B, Indano S, Yankannah Y, et al. Decellularized Cortical Bone Scaffold Promotes Organized Neovascularization In Vivo. Tissue Eng Part A. 2019;25(13-14):964-977. doi: 10.1089/ten.TEA.2018.0225.
- Sohn HS, Oh JK. Review of bone graft and bone substitutes with an emphasis on fracture surgeries. Biomater Res. 2019;23:9. doi: 10.1186/s40824-019-0157-y.
- Chiarello E, Cadossi M, Tedesco G, et al. Autograft, allograft and bone substitutes in reconstructive orthopedic surgery. Aging Clin Exp Res. 2013;25 Suppl 1:S101-S103. doi: 10.1007/s40520-013-0088-8.
- Hatzenbuehler J, Pulling TJ. Diagnosis and management of osteomyelitis. Am Fam Physician. 2011 Nov 1;84(9):1027-1033.
- Wang W, Zhang Y, Liu W. Bioinspired fabrication of high strength hydrogels from non-covalent interactions. Prog Polym Sci. 2017;71:1-25. doi: 10.1016/j.progpolymsci.2017.04.001.
- Zamborsky R, Svec A, Bohac M, et al. Infection in bone allograft transplants. Exp Clin Transplant. 2016;14(5):484-490. doi: 10.6002/ ect.2016.0076.
- Oakley MJ, Smith WR, Morgan SJ, ey al. Repetitive posterior iliac crest autograft harvest resulting in an unstable pelvic fracture and infected non-union: case report and review of the literature. Patient Saf Surg. 2007;1(1):6. doi: 10.1186/1754-9493-1-6.
- Gao Y, Ma O. Bacterial infection microenvironment-responsive porous microspheres by microfluidics for promoting anti-infective therapy. Sm^rt Med. 2022;1(1):e20220012. doi: 10.1002/SMMD.20220012.
- Zhu Y, Kong B, Liu R, Zhao Y. Developing biomedical engineering technologies for reproductive medicine. Smart Med. 2022;1(1):e20220006. doi: 10.1002/SMMD.20220006.
- Dixon DT, Gomillion CT. Conductive Scaffolds for Bone Tissue Engineering: Current State and Future Outlook. J Funct Biomater. 2021;13(1):1. doi: 10.3390/jfb13010001.
- Perez JR, Kouroupis D, Li DJ, et al. Tissue Engineering and Cell-Based Therapies for Fractures and Bone Defects. Front Bioeng Biotechnol. 2018;6:105. doi: 10.3389/fbioe.2018.00105.
- Liu H, Xia L, Dai Y, et al. Fabrication and characterization of novel hydroxyapatite/porous carbon composite scaffolds. Materials Letters. 2012;66(1):36-38. doi: 10.1016/j.matlet.2011.08.053.
- Guillen T, Ohrndorf A, Tozzi G, et al. Compressive fatigue behavior of bovine cancellous bone and bone analogous materials under multi-step loading conditions. Advanced Engineering Materials. 2012;14(5):B199-B207. doi: 10.1002/adem.201180060.
- Ramaswamy G, Bidez MW, Misch CE. Bone response to mechanical loads. In: Misch CE. Dental Implant Prosthetics (Second Edition). Mosby; 2015:107-125. doi: 10.1016/B978-0-323-07845-0.00006-3.
- Попов А.Л., Татарникова О.Г., Шекунова Т.О. и др. Исследование воздействия нанокристаллического диоксида церия, допи-рованного гадолинием (Ce1-xGdxO2-y), на функциональное состояние и жизнеспособность клеток линии NCTC clone L929. Вестник Томского государственного университета. Химия. 2017;(8):68-87. doi: 10.17223/24135542/8/6.
- Wutticharoenmongkol P, Pavasant P, Supaphol P. Osteoblastic phenotype expression of MC3T3-E1 cultured on electrospun polycaprolactone fiber mats filled with hydroxyapatite nanoparticles. Biomacromolecules. 2007;8(8):2602-2610. doi: 10.1021/ bm700451p.
- Tsukamoto Y, Fukutani S, Mori M. Hydroxyapatite-induced alkaline-phosphatase activity of human pulp fibroblasts. J Mater Sci: Mater Med. 1992;3:180-183. doi: 10.1007/bf00713446.
- Lao L, Wang Y, Zhu Y, et al. Poly(lactide-co-glycolide)/hydroxyapatite nanofibrous scaffolds fabricated by electrospinning for bone tissue engineering. J Mater Sci Mater Med. 2011;22(8):1873-1884. doi: 10.1007/s10856-011-4374-8.
- Chung S, King MW. Design concepts and strategies for tissue engineering scaffolds. Biotechnol Appl Biochem. 2011;58(6):423-438. doi: 10.1002/bab.60.
- Saberi A, Kouhjani M, Mohammadi M, Hosta-Rigau L. Novel scaffold platforms for simultaneous induction osteogenesis and angiogenesis in bone tissue engineering: a cutting-edge approach. JNanobiotechnology. 2023;21(1):351. doi: 10.1186/s12951-023-02115-7.
- He X, Zhao O, Zhang N, et al. Impact of a staggered scaffold structure on the mechanical properties and cell response in bone tissue engineering./Appl Biomater Funct Mater. 2023;21:22808000231181326. doi: 10.1177/22808000231181326.
- Abbasi N, Hamlet S, Love RM, Nguyen NT. Porous Scaffolds for Bone Regeneration. J Sci: Adv Mater Dev. 2020;5(1):1-9. doi: 10.1016/j. jsamd.2020.01.007.
- Aghali A. Craniofacial Bone Tissue Engineering: Current Approaches and Potential Therapy. Cells. 2021;10(11):2993. doi: 10.3390/ cells10112993.
- Persson M, Lehenkari PP, Berglin L, et al. Osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells in a 3D woven scaffold. Sci Rep. 2018;8(1):10457. doi: 10.1038/s41598-018-28699-x.
- Rahman SF, Ghiffary MM, Tampubuluon JY, et al. Effect of graphite, graphene oxide, and multi-walled carbon nanotubes on the physicochemical characteristics and biocompatibility of chitosan/hyaluronic acid/hydroxyapatite scaffolds for tissue engineering applications. J Sci: Adv Mater Dev. 2024;9(2):100719. doi: 10.1016/j.jsamd.2024.100719.
- Bagal R, Bahir M, Lenka N, Patro TU. Polymer derived porous carbon foam and its application in bone tissue engineering: a review. Int J Polymer Mater Polymer Biomat. 2022;72(12):909-924. doi: 10.1080/00914037.2022.2066669.
- Islam M, Sadaf A, Gomez MR, et al. Carbon fiber/microlattice 3D hybrid architecture as multi-scale scaffold for tissue engineering. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2021;126:112140. doi: 10.1016/j.msec.2021.112140.
- Dong J, Ding H, Wang Q, Wang L. A 3D-Printed Scaffold for Repairing Bone Defects. Polymers (Basel). 2024;16(5):706. doi: 10.3390/ polym16050706.
- Lee DJ, Kwon J, Kim YI, et al. Effect of pore size in bone regeneration using polydopamine-laced hydroxyapatite collagen calcium silicate scaffolds fabricated by 3D mould printing technology. Orthod CraniofacRes. 2019;22 Suppl 1(Suppl 1):127-133. doi: 10.1111/ ocr.12261.
- Koushik TM, Miller CM, Antunes E. Bone tissue engineering scaffolds: function of multi-material hierarchically structured scaffolds. AdvHealthcMater. 2023;12(9):e2202766. doi: 10.1002/adhm.202202766.
- Cao J, Lian R, Jiang X, Rogachev AV. In vitro degradation assessment of calcium fluoride-doped hydroxyapatite coating prepared by pulsed laser deposition. Surface and Coatings Technology. 2021;416:127177. doi: 10.1016/j.surfcoat.2021.127177.
- Zhang Y, Chen SE, Shao J, van den Beucken JJJP. Combinatorial Surface Roughness Effects on Osteoclastogenesis and Osteogenesis. ACS Appl Mater Interfaces. 2018;10(43):36652-36663. doi: 10.1021/acsami.8b10992.
- Meyer MB, Goetsch PD, Pike JW. Genome-wide analysis of the VDR/RXR cistrome in osteoblast cells provides new mechanistic insight into the actions of the vitamin D hormone. J Steroid Biochem Mol Biol. 2010;121(1-2):136-141. doi: 10.1016/j.jsbmb.2010.02.011.
- Li Y, Zhao P, Jiang B, et al. Modulation of the vitamin D/vitamin D receptor system in osteoporosis pathogenesis: insights and therapeutic approaches. J Orthop Surg Res. 2023; 18(1):860. doi: 10.1186/s13018-023-04320-4.
- Ott SM, Elder G. Osteoporosis associated with chronic kidney disease. In: Marcus R, Feldman D, Dempster DW, et al. (eds). Osteoporosis. 4th ed. Elsevier Pub.; 2013:1387-1424. doi: 10.1016/B978-0-12-415853-5.00058-3.
- Yakar S, Rosen CJ. From mouse to man: redefining the role of insulin-like growth factor-I in the acquisition of bone mass. Exp Biol Med (Maywood). 2003;228(3):245-252. doi: 10.1177/153537020322800302.
- Fang J, Zhang X, Chen X, et al. The role of insulin-like growth factor-1 in bone remodeling: A review. Int J Biol Macromol. 2023;238:124125. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2023.124125.
- Canalis E, Rydziel S, Delany AM, et al. Insulin-like growth factors inhibit interstitial collagenase synthesis in bone cell cultures. Endocrinology. 1995;136:1348-1354. doi: 10.1210/endo.136.4.7895645.
- Brennan-Speranza TC, Rizzoli R, Kream BE, et al. Selective osteoblast overexpression of IGF-I in mice prevents low protein-induced deterioration of bone strength and material level properties. Bone. 2011;49(5):1073-1079. doi: 10.1016/j.bone.2011.07.039.
- Denhardt DT, Noda M. Osteopontin expression and function: Role in bone remodeling. J Cell Biochem. 1998;72 Suppl 30-31(S30-31): 92-102. doi: 10.1002/(SICI)1097-4644(1998)72:30/31+<92::AID-JCB13-3.0.m;2-A.
- Choi ST, Kim JH, Kang EJ, et al Osteopontin might be involved in bone remodelling rather than in inflammation in ankylosing spondylitis. Rheumatology (Oxford). 2008;47(12):1775-1779. doi: 10.1093/rheumatology/ken385.
- Martín-Márquez BT, Sandoval-García F, Corona-Meraz FI, et al. Osteopontin: A Bone-Derived Protein Involved in Rheumatoid Arthritis and Osteoarthritis Immunopathology. Biomolecules. 2023;13(3):502. doi: 10.3390/biom13030502.
- Singh A, Gill G, Kaur H, et al. Role of osteopontin in bone remodeling and orthodontic tooth movement: a review. Prog Orthod. 2018;19(1):18. doi: 10.1186/s40510-018-0216-2.