Применение пробиотических препаратов в рациональном кормлении животных в промышленных условиях

В отрасли животноводства в последнее время в связи с активной хозяйственной деятельностью наблюдается рост негативных физических и химических факторов, негативно влияющих на физиологические процессы, протекающие в организме животных. В связи с чем возникает необходимость разработки научных подходов и рекомендаций по технологии кормления сельскохозяйственных животных, в том числе молодняка кроликов с использованием экологически безопасных добавок, обеспечивающих получение качественного и безопасного сырья.

Кролиководство – отрасль, позволяющая получать широкий спектр животноводческой продукции и требующая особого внимания и разработки научных подходов для рационального нормирования и балансирования рационов кроликов с широким спектром питательных веществ и кормовых пробиотических добавок, которые способствуют сохранности поголовья за счет нормализации микробного баланса в пищеварительном тракте, стимуляции роста, увеличению приростов живой массы [3].

На продуктивность кроликов влияет ряд факторов. В первую очередь наследственность, физиологическое состояние, рационы кормления. Как правило особое внимание уделяется сбалансированности рационов по основным питательным веществам, которую в свою очередь оказывают влияние на продуктивность животных [7, 11–14–17].

Одним из важных биологических рисков на кролиководческих фермах является высокая чувствительность поголовья к патогенной микрофлоре. Для снижения восприимчивости поголовья к патогенным инфекциям применяют противомикробные стимуляторы роста – антибиотики в качестве кормовых добавок, механизм действия которых заключается в снижении конкуренции микроорганизмов в борьбе за питательные вещества с организмом и сокращать их метаболиты, подавляющие рост животного [7, 10]. От использования данной группы препаратов часто получают побочные действия, в связи, с чем возникает необходимость поиска альтернативных средств, способствующих стимуляции роста животных. К таким препаратам в первую очередь относятся пробиотики кормового назначения, способствующие повышению резистентности организма животных, нормализации микробиоценоза кишечника, улучшению процессов усвоения питательных веществ кормов [1, 2]. Использование пробиотических препаратов позволяет получать безопасное и качественное мясное сырье, что связано со спросом на диетическое мясо, к которому относится крольчатина. В этом аспекте большое внимание должно уделяться не только количественным (выход мяса, жира и др.), но и качественным признакам, ценность которых определяет гистоморфологическая структура.

Мясо кролика относится к диетическому мясному сырью, характеризуется бледно-розовой окраской, достаточно нежной консистенцией и отличается тонковолокнистой мышечной тканью [5, 6]. Соединительной ткани в мясе кролика незначительное количество, поэтому оно характеризуется нежной консистенцией. В мясе кролика содержится много азотистых, минеральных (кислых солей фосфора (246 мг%) и калия (364 мг%). Наличие экстрактивных веществ придает мясу специфический запах и вкус. Содержание холестерина в мясе кролика составляет 25 мг на 100 г. мяса [9, 10, 12].

При сбалансированном кормлении организм кроликов накапливает большое количество биологически активных веществ, которые содержатся в зерновом сырье, такие как поли-ненасыщенные жирные кислоты, пищевые волокна, витамины, минеральные вещества, а также необходимые для человека минеральные вещества и витамины: железо, селен, фтор, кобальт, витамины группы В, витамина С, что предопределяет использование данного вида мяса в лечебно – профилактическом питании.

Цель работы – оценка эффективности применения пробиотического препарата Вето-спорин Ж на повышение продуктивности и качество мяса кроликов.

Материалы и методы

Для проведения эксперимента было подобрано 45 кроликов (самцов) гибридной формы Hycole, которые в возрасте 45 суток по принципу групп – аналогов были разделены на 3 группы. В каждой группе было подобрано по 15 голов. Кролики всех групп содержались в одинаковых условиях и получали одинаковый основной рацион. Исследования были проведены в условиях промышленного комплекса в 2021 году.

В качестве основного рациона использовали комбикорм ПЗК-92, полученного на основе зерновых культур, жмыха подсолнечника, пшеничных отрубей, травяной муки и премикса КВП П90–1К. Кролики 1 группы (контрольной) получали только комбикорм ПЗК-92, кроликам 2 и 3 группы вводили дополнительно к основному рациону пробиотический препарат «Ветоспо-рин Ж» (рисунок 2) в дозировке 0,5 см3 и 1,0 см3 на кг живой массы соответственно по схеме: в течение 10 дней после отсадки каждые 30 суток откорма. Динамику живой массы учитывали индивидуальным взвешиванием. Для определения мясной продуктивности провели убой по 3 головы кроликов из каждой группы по методике ВИЖ.

Рисунок 1. Кролики гибридной формы Hycole

Figure 1. Rabbits of the hybrid form of Hycole

Рисунок 2. Пробиотический препарат «Ветоспорин Ж»

Figure 2. Probiotic drug "Vetosporin Zh"

Аминокислотный состав определяли по ГОСТ 13496.21–2015 с использованием гидролиза и определения аминокислот методом высокоэффективной жидкостной хроматографии. Качество мяса кроликов оценивали по ГОСТ 20235.0–74. Оценку химического состава и биологической ценности, проводили в соответствии с рекомендациями (Антипова Л.В., 2004).

Результаты

Изменение живой массы молодняка довольно точно характеризует характер и уровень кормления кроликов (таблица 1).

Проведенный анализ морфологического состава охлажденных тушек кроликов показал, что включение в рацион кроликов пробиотической добавки «Ветоспорин Ж» оказало благоприятное влияние на выход мышечной ткани (таблица 2).

Показатели качества мяса напрямую зависят от химического состава и энергетической ценности. В таблице 3 представлен химический состав мяса кроликов.

Биологическую ценность белков мяса кроликов оценивали по белково-качественному показателю (таблица 4).

Таблица 1.

Динамика живой массы кроликов, г

Table 1.

Dynamics of live weight of rabbits, g

Возраст, суток Age, days	Группа
	Контроль Control	Опыт 1 Exp 1	Опыт 2 Exp 2
1	40,60 ± 0,12	40,70 ± 0,16	40,90 ± 0,15
45	1590,00 ± 22,60	1600,00 ± 18,56	1591,00 ± 22,71
105	3182,00 ± 20,17	3319,00 ± 32,18	3520,00 ± 38,36
Среднесуточный прирост Average daily increase	26,53 ± 0,72	28,65 ± 0,89*	32,15 ± 0,92
Сохранность, % Safety, %	86,67	86,67	100,00

Таблица 2.

Морфологический состав тушек (n = 3)

Table 2.

Morphological composition of carcasses (n = 3)

Показатель Indicator	Контроль Control	Опыт 1 Exp 1	Опыт 2 Exp 2
Предубойная живая масса, г Pre-slaughter live weight, g	3041,0 ± 11,17	3110,0 ± 18,23	3282,0 ± 19,24
Масса парной тушки, г Weight of the paired carcass, g	1688,0 ± 22,57	1794,0 ± 24,36	2062,0 ± 27,19
Убойный выход, % Killer exit, %	55,51 ± 0,17	57,68 ± 0,27	62,83 ± 0,31
Выход мякоти, % Pulp yield, %	66,24 ± 10,54	71,36 ± 12,63	75,29 ± 3,11
Индекс мясности Meat index	3,12 ± 0,86	3,65 ± 0,49	4,26 ± 0,68

Таблица 3.

Химический состав мяса кроликов

Table 3.

Chemical composition of rabbit meat

Массовая доля Mass fraction	Группа | Group
	Контроль Control	Опыт 1 Exp 1	Опыт 2 Exp 2
Влага Moisture	73,40 ± 0,55	72,80 ± 0,66	72,30 ± 0,58
Белок Protein	19,40 ± 0,29	20,02 ± 0,32	20,55 ± 0,40
Жир Fat	6,17 ± 0,46	6,14 ± 0,42	6,10 ± 0,41
Зола Ash	1,03 ± 0,05	1,04 ± 0,03	1,05 ± 0,04

Таблица 4.

Оценка биологической ценности средней пробы мяса кроликов

Table 4.

Assessment of the biological value of an average sample of rabbit meat

Показатель Indicator	Группа/Group
	Контроль Control	Опыт 1 Exp 1	Опыт 2 Exp 2
Триптофан, мг% Tryptophan, mg%	319,00 ± 1,41	340,00 ± 2,83**	349,67 ± 2,86***
Оксипролин, мг% Oxyproline, mg%	71,33 ± 2,94	69,33 ± 2,48	62,00 ± 1,41
Белковокачественный показатель (БКП) Protein-quality indicator (PQI)	4,48 ± 0,17	4,91 ± 0,21*	5,64 ± 1,16
** Р ≥ 0,99; *** Р ≥ 0,999

Обсуждение

На этапе постановки эксперимента масса кроликов контрольной и опытных групп была практически одинаковой и составила в среднем 40,70 г. По достижении возраста 105 суток кролики 1-й группы (контрольной) характеризовались живой массой, которая была меньше массы особей 1-й опытной группы на 137,0 г, или 4,30% (Р < 0,05), 2-й опытной группы – на 338,0 г, или 10,62% (Р < 0,01) (таблица 1).

Показатели убоя животных характеризуют в основном количественную сторону мясной продуктивности животного. Однако, такие показатели как предубойная масса, масса парной туши и ее выход, отражают пищевую ценность не полностью, так как не указывают на удельный вес в туше съедобных частей. Важным является морфологический состав туш, который отражает количественное соотношение мышечной, жировой, костной и соединительной тканей.

Высокая биологическая пластичность и приспособленность к самым различным условиям содержания выделяет кроликов из всех сельскохозяйственных животных. Следует отметить, что недостаточное и несбалансированное кормление приводит к задержке роста отдельных частей тела животных, особенно снижается выход мышечной ткани и возрастает доля костной и соединительной тканей. Поэтому результаты исследования морфологического состава тушек кроликов позволяют более точно охарактеризовать изменения, которые происходят на фоне применения пробиотического препарата «Ветоспорин Ж» (ТУ 9291–058–20672718–2013). Пробиотический препарат Содержит биомассу споровых бактерий Bacillus subtilis 12В и Bacillus subtilis 11В в среде культивирования. Общее количество жизнеспособных клеток в 1 мл кормовой добавки не менее 1×108 КОЕ/мл.

Предубойная живая масса, а также масса парной тушки кроликов опытных групп была выше по сравнению с массой животных контрольной группы.

Наиболее высокая предубойная масса была во 2-й опытной группе кроликов и составила 3282 г. По сравнению с контрольной группой кроликов предубойная масса 2 опытной группы кроликов была больше на 241,0 г или 7,92%, по сравнению с 1 опытной группой на 172,0 г, или 5,65% (Р < 0,05). Во 2-й опытной группе кроликов выход тушки составил 62,83%, что больше по сравнению с контрольной и 1-й группами на 7,32 и 5,15% соответственно.

Кролики 1 опытной группы превосходили животных контрольной группы по массе парной тушки на 106,0 г (6,27%; Р < 0,05), 2 опытной группы – на 374,0 г (22,15%; Р < 0,01). Аналогичная закономерность была отмечена по выходу мышечной ткани, полученной после обвалки. Кролики контрольной группы уступали по данному показателю сверстникам опытных групп на 3,93 и 9,05% соответственно (Р < 0,01).

Рассчитанный индекс мясности показал, что кролики, получавшие пробиотическую добавку «Ветоспорин Ж» в дозировке 1,0 см3 на кг живой массы (2 опытная группа) имеют больший показатель индекса мясности – 4,26, по сравнению с кроликами 1 опытной группы и контрольной – 3,65 и 3,12 единиц соответственно.

Применение при кормлении кроликов пробиотической добавки «Ветоспорин Ж» способствовало повышению массовой доли белка в мышечной ткани (таблица 3). Содержание массовой доли жира в мышечной ткани кроликов контрольной группы и опытных групп отличалось незначительно, достоверных различий выявлено не было, хотя наименьшее количество жира отмечено у кроликов 2 опытной группы, получавших пробиотический препарат «Ветоспорин Ж» в дозировке 1,0 см3 на 1 кг живого веса в соответствии с выбранной схемой.

Наибольшее содержание белка отмечено в мясе кроликов 2-й опытной группы. По содержанию жира кролики опытных групп статистически значимо не отличались между собой и контрольной группы. Также максимальное количество зольных веществ было отмечено у кроликов 2 опытной группы.

Установлено, что в опытных группах кроликов, получавших в составе рациона пробиотический комплекс «Ветоспорин Ж», содержание триптофана находится на высоком уровне и наблюдается увеличение БКП за счет снижения соединительнотканных белков (таблица 4). Установлено, что кролики контрольной группы уступали по белково-качественному показателю подопытным животным 2 и 3 опытных групп на 0,43 и 1,16 ед. (9,60% и 25,89% соответственно), что подтверждает высокую биологическую ценность полученного мяса.

Проведенная органолептическая оценка мяса и бульона кроликов контрольной и опытных групп, показала положительное влияние пробиотической кормовой добавки «Ветоспорин Ж» на формирование вкусо-ароматического профиля как вареного мяса, так и бульона. Наибольшей бальной оценкой характеризовались образцы вареного мяса и бульона, полученного от тушек 2 опытной группы (8,5 и 8,2 балла соответственно). Образцы вареного мяса и бульона, полученного от тушек кроликов контрольной и первой группы достоверно не отличались (7,8–8,0 и 7,4–7,6 балла соответственно).

В контрольной группе кроликов гистологическая структура печени сохранена (рисунок 5). Балочная структура не нарушена и лучисто расходится от центральной вены.

Figure 3. Architectonics of the stomach of rabbits (control group). Hematoxylin-eosin staining. Approx. 10×40

Figure 4. Architectonics of the stomach of rabbits (Exp al group). Hematoxylin-eosin staining. Approx. 10×40

Рисунок 5. Гистологическое строение печени кроликов (опытная группа). Окраска гематоксилин-эозин. Ок. 10×об 40

Рисунок 6. Архитектоника печени кроликов (контрольная группа). Окраска гематоксилин-эозин. Ок. 10×об 40

• Figure 5.    Histological structure of the liver of rabbits (Exp al group). Hematoxylin-eosin staining. Approx. 10×40

• Figure 6.    Architectonics of rabbit liver (control group). Hematoxylin-eosin staining. Approx. 10×40

В гепатоцитах диагностированы дистрофические изменения как со стороны цитоплазмы, так и ядерного аппарата. В цитоплазме выявлены пустоты как крупные, так и мелкие, которые местами сливаются в одну большую вакуоль, в которых видно растворение ядра. Под капсулой органа, в гепатоцитах присутствуют оскифильные мелкие зерна, которые также в свою очередь негативно влияют на ядерный аппарат клеток.

При гистологическом исследовании печени кроликов опытной группы (рисунок 6) выявлено, радиальное расположение балок. Гепатоциты формируют тяжи, плотно прилегающие друг к другу.

Ядерный аппарат клеток печени выражен, без дистрофических изменений. Ядра базофильно окрашены. Выявлено появления двуядерных гепатоцитов. Местами в сосудах было отмечено кровенаполнение.