Природная очаговость инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в Московской области

Автор: Пчельников А.В., Яцентюк С.П., Красникова М.С., Долинская К.Г.

Журнал: Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана @uchenye-zapiski-ksavm

Статья в выпуске: 4 т.256, 2023 года.

Бесплатный доступ

Целью работы было определение возможной природной очаговости инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота. Активный рандоминизированный мониторинг животноводческих хозяйств Московской области, проведенный в 2020 г., позволил установить хозяйства с активной циркуляцией возбудителя ИРТ КРС. Молекулярно-генетические и серологические исследования материала от диких парнокопытных животных, добытых на территории Московской области в 2019-2022 гг., позволил установить факт циркуляции герпесвируса крупного рогатого скота 1 типа среди этих животных. В результате установлено, что 4 из 5 животноводческих хозяйств, в которых зафиксирована циркуляция полевых штаммов возбудителя ИРТ КРС, находятся в зоне природных очагов этой болезни. Этот факт, а также особенности механизма передачи возбудителя ИРТ КРС между дикими и домашними животными необходимо учитывать при разработке стратегии профилактики и борьбы с этой экономически значимой болезнью.

Еще

Ирт, крс, дикие жвачные, пцр, серологические исследования

Короткий адрес: https://sciup.org/142239415

IDR: 142239415   |   DOI: 10.31588/2413_4201_1883_4_256_206

Список литературы Природная очаговость инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в Московской области

  • Пчельников, А. В. Эпизоотическая ситуация по ИРТ КРС на территории Московской и Тверской областей / А. В. Пчельников, С. П. Яцентюк, Е. Р. Сафина // Ветеринария и кормление. - 2021. - № 2. - С. 38-41. DOI: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2021-2-10 EDN: WNDBHU
  • Сюрин, В. Н. Вирусные болезни животных / В. Н. Сюрин, А. Я. Самуйленко, Б. В. Соловьев, Н. В. Фомина - М., ВНИТИБП, 1998, 928 с.
  • Cripps, J. K.Introduced deer and their potential role in disease transmission to livestock in Australia /j. K. Cripps, C. Pacioni, M. P. Scroggie, A. P. Woolnough, D. S. L. Ramsey // Mammal. - 2019. - V. 49. - P. 60-77. -. DOI: 10.1111/mam.12142
  • Lillehaug, A. Antibodies to ruminant alpha-herpesviruses and pestiviruses in Norwegian cervids / A. Lillehaug, T. Vikøren, I. L. Larsen, J. Akerstedt, J. Tharaldsen, K. Handeland //j. Wildl. Dis. - 2003. - V. 39(4). - V. 779-86. -. DOI: 10.7589/0090-3558-39.4.779
  • Rola, J. Seroprevalence of bovine herpesvirus 1 related alphaherpesvirus infections in free-living and captive cervids in Poland /j. Rola, M. Larska, W. Socha, J. G. Rola [et al.] // Vet. Microbiol. - 2017. - V. 204. - P. 77-83. -. DOI: 10.1016/j.vetmic.2017.04.006
  • Ros, C. Studies of genetic relationships between bovine, caprine, cervine, and rangiferine alphaherpesviruses and improved molecular methods for virus detection and identification / C. Ros, S. Belák //j. Clin. Microbiol. - 1999. - V. 37(5). - P. 1247-53. DOI: 10.1128/JCM.37.5.1247-1253.1999
  • Thiry, J.Ruminant alphaherpesviruses related to bovine herpesvirus 1 /j. Thiry, V. Keuser, B. Muylkens, F. Meurens [et al.] // Vet. Res. - 2006. - V. 37(2). - V. 169-90. -:2005052. DOI: 10.1051/vetres
Еще
Статья научная