Продуктивность и экспрессия генов у цыплят-бройлеров (Gallus gallus L.) кросса Ross 308 под влиянием антибиотиков, глифосата и штамма Bacillus sp

Автор: Тюрина Д.Г., Лаптев Г.Ю., Йылдырым Е.А., Ильина Л.А., Филиппова В.А., Бражник Е.А., Тарлавин Н.В., Калиткина К.А., Пономарева Е.С., Дубровин А.В., Новикова Н.И., Ахматчин Д.А., Молотков В.В., Меликиди В.Х., Горфункель Е.П.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Генетика, геномика, генетическая инженерия

Статья в выпуске: 6 т.57, 2022 года.

Бесплатный доступ

Сочетание широкого использования антибиотиков и присутствия в кормах остаточных количеств пестицидов способно поставить под угрозу терапевтические и производственные эффекты от применения антибактериальных препаратов в промышленном птицеводстве. Происходящие при этом изменения могут сопровождаться модификацией экспрессии ряда генов. В настоящей работе впервые показано, что стимуляция мясной продуктивности цыплят-бройлеров кросса Ross 308 под влиянием ветеринарных антибиотиков энрофлоксацина и колистина, вероятно, имеет связь с индукцией экспрессии гена MYOG , который способствует развитию и дифференцировке мышц, генов антимикробной ( Gal9 , Gal10 ) и антивирусной ( IRF7 ) защиты, а также провоспалительных генов IL6 , IL8 и PTGS2 . Кроме того, впервые выявлено, что глифосат подавляет экспрессию антимикробных и антивирусных генов у цыплят-бройлеров. Наша цель заключалась в оценке продуктивности и изменения экспрессии генов, ассоциированных с иммунитетом, продуктивностью и устойчивостью к токсическим и лекарственным веществам, при воздействии антибиотиков, в том числе на фоне загрязнения кормов глифосатом и введения в рацион цыплят-бройлеров штамма Bacillus sp. Эксперименты проводили в 2022 году в виварии ООО «БИОТРОФ+» на бройлерах ( Gallus gallus L.) кросса Ross 308 от 1- до 35-суточного возраста. Для кормления с 1-х по 28-е сут использовали комбикорм ПК 5 для бройлеров, с 29-х по 35-е сут - ПК 6 для бройлеров. Птицу разделили на 4 группы по 40 гол. в каждой. Бройлеры в I группе (контроль) получали рацион без антибиотиков, глифосата и штамма микроорганизма; во II опытной - рацион с добавлением ветеринарных антибиотиков энрофлоксацина и колистина в виде препарата Энрофлон К (ООО «ВИК - здоровье животных», Россия) в дозировке 1 мл/л воды с 1-х по 5-е сут выращивания и флорфеникола (ООО «Агроветзащита С.-П. НВЦ», Россия) в дозировке 1 мл/л воды с 17-х по 20-е сут; в III опытной - рацион с добавлением препарата Энрофлон К по схеме, описанной выше, а также глифосата в составе препарата Агрокиллер (ЗАО Фирма «Август», Россия) в количестве 20 мг/кг корма, что соответствовало 1ПДК для продуктов питания; в IV опытной - рацион с добавлением энрофлоксацина, колистина, флорфеникола, глифосата, а также штамма Bacillus sp. ГЛ-8, выделенного из кишечника бройлеров. Для анализа содержания глифосатов методом ИФА в кормах и питательных средах использовали cтриповый иммуноферментный анализатор STAT FAX 303+ («Awareness Technology Co. LLC», США) и тест-систему Glyphosate ELISA, Microtiter Plate («Abraxis», США). В конце эксперимента у бройлеров отбирали ткани слепых отростков кишечника и грудных мышц. Анализ экспрессии генов проводили с помощью количественной ПЦР с обратной транскрипцией. Тотальную РНК выделяли с использованием мини-набора AurumТМ Total RNA («Bio-Rad», США), следуя инструкциям производителя. Реакцию обратной транскрипции проводили для получения кДНК на матрице РНК с использованием iScriptТМ Reverse Transcription Supermix («Bio-Rad», США). Для анализа экспрессии мРНК были выбраны специфические праймеры для генов интерлейкина 6 ( IL6 ), интерлейкина 8 ( IL8 ), синтеза регуляторного фактора интерферона 7 ( IRF7 ), простагландин-эндопероксидсинтазы ( PTGS2 ), синтеза b-дефензина 9 AvBD9 ( Gal9 ), b-дефензина 10 AvBD10 ( Gal10 ), инсулиноподобного фактора роста 1 ( LGF1 ), миогенина ( MYOG ), миозенина ( MYOZ2 ) и гена GSTA3 , связанного с устойчивостью к токсическим и лекарственным веществам. ПЦР проводили с использованием амплификатора ДТлайт («ДНК-Технология», Россия) и набора SsoAdvancedТМ Universal SYBR® Green Supermix («Bio-Rad», США). Живую массу бройлеров определяли в возрасте 7, 14, 21, 28 и 35 сут. Показано, что антибиотики стимулировали (p £ 0,05) продуктивность бройлеров с 14-х сут жизни до конца эксперимента на 4,8-23,3 % (II группа по сравнению с I группой). В конце эксперимента отмечали негативное влияние глифосата на продуктивность бройлеров (III группа по сравнению со II, p £ 0,05). Результаты оценки экспрессии генов бройлеров, связанных с ростом и формированием мышечных волокон, показали, что экспрессия гена MYOG была выше у бройлеров из II и IV групп соответственно в 2,0 и 2,1 раза по сравнению с I группой (p £ 0,05). В III группе количество мРНК гена MYOG не повышалось (р > 0,05), что свидетельствует о негативном влиянии глифосата на экспрессию генов продуктивности птицы. Глифосат (III группа) выступал и как супрессор экспрессии генов антимикробной и антивирусной защиты Gal9 , Gal10 и IRF7 (по сравнению со II группой) (p £ 0,05). Интродукция штамма микроорганизма в корм на фоне глифосата и антибиотиков (IV группа) вызывала усиление экспрессии Gal9 по сравнению с наблюдаемой в III группе (p £ 0,05). Прослеживалась тенденция резкого возрастания экспрессии провоспалительных генов IL6 , IL8 и PTGS2 во II группе (соответственно в 4,6; 11,2 и 6,6 раза по сравнению с контролем, p £ 0,05).

Еще

Микотоксины, антибиотик, глифосат, бройлеры, экспрессия генов

Короткий адрес: https://sciup.org/142237388

IDR: 142237388   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2022.6.1147rus

Список литературы Продуктивность и экспрессия генов у цыплят-бройлеров (Gallus gallus L.) кросса Ross 308 под влиянием антибиотиков, глифосата и штамма Bacillus sp

  • Danzeisen J.L., Clayton J.B., Huang H., Knights D., McComb B., Hayer S.S., Johnson T.J. Temporal relationships exist between cecum, ileum, and litter bacterial microbiomes in a com-mercial turkey flock, and subtherapeutic penicillin treatment impacts ileum bacterial community establishment. Frontiers in Environmental Science, 2015, 2: 56 (doi: 10.3389/fvets.2015.00056).
  • Pourabedin M., Guan L., Zhao X. Xylo-oligosaccharides and virginiamycin differentially modu-late gut microbial composition in chickens. Microbiome, 2015, 3(1): 15 (doi: 10.1186/s40168-015-0079-4).
  • Bohaychuk V.M., Gensler G.E., King R.K., Manninen K.I., Sorensen O., Wu J.T., Stiles M.E., McMullen L.M. Occurrence of pathogens in raw and ready-to-eat meat and poultry products collected from the retail marketplace in Edmonton, Alberta, Canada. Journal of Food Protection, 2006, 69(9): 2176-2182 (doi: 10.4315/0362-028x-69.9.2176).
  • Chrząstek K., Wieliczko A. The influence of enrofloxacin, florfenicol, ceftiofur and E. coli LPS interaction on T and B cells subset in chicks. Veterinary Research Communications, 2015, 39(1): 53-60 (doi: 10.1007/s11259-015-9632-7).
  • Khalifeh M.S., Amawi M.M., Abu-Basha E.A., Yonis I.B. Assessment of humoral and cellular-mediated immune response in chickens treated with tilmicosin, florfenicol, or enrofloxacin at the time of Newcastle disease vaccination. Poultry Science, 2009, 88(10): 2118-2124 (doi: 10.3382/ps.2009-00215).
  • Ellakany H.F., Abu El-Azm I.M., Bekhit A.A., Shehawy M.M. Studies on the effects of enroflox-acin overdose on different health parameters in broiler chickens. Journal of Veterinary Medical Research, 2008, 18(1): 176-186 (doi: 10.21608/jvmr.2008.77869).
  • Tokarzewski S. Influence of enrofloxacin and chloramphenicol on the level of IgY in serum and egg yolk after immunostimulation of hens with Salmonella enteritidis antigens. Polish Journal of Veterinary Sciences, 2002, 5(3): 151-158.
  • Mehdi Y., Létourneau-Montminy M.P., Gaucher M.L., Chorfi Y., Suresh G., Rouissi T., Brar S.K., Côté C., Ramirez A.A., Godbout S. Use of antibiotics in broiler production: global impacts and alternatives. Animal Nutrition, 2018, 4(2): 170-178 (doi: 10.1016/j.aninu.2018.03.002).
  • Eyssen H., de Somer P. The mode of action of antibiotics in stimulating growth of chicks. Journal of Experimental Medicine, 1963, 117(1): 127-38 (doi: 10.1084/jem.117.1.127).
  • Lin J., Hunkapiller A.A., Layton A.C., Chang Y.J., Robbins K.R. Response of intestinal micro-biota to antibiotic growth promoters in chickens. Foodborne Pathogens and Disease, 2013, 10(4): 331-337 (doi: 10.1089/fpd.2012.1348).
  • Jankowski J., Tykałowski B., Stępniowska A., Konieczka P., Koncicki A., Matusevičius P., Og-nik K. Immune parameters in chickens treated with antibiotics and probiotics during early life. Animals (Basel), 2022, 12(9): 1133 (doi: 10.3390/ani12091133).
  • Yu M., Mu C., Yang Y., Zhang C., Su Y., Huang Z., Yu K., Zhu W. Increases in circulating amino acids with in-feed antibiotics correlated with gene expression of intestinal amino acid transporters in piglets. Amino Acids, 2017, 49(9): 1587-1599 (doi: 10.1007/s00726-017-2451-0).
  • Lu P., Choi J., Yang C., Mogire M., Liu S., Lahaye L., Adewole D., Rodas-Gonzalez A., Yang C. Effects of antibiotic growth promoter and dietary protease on growth performance, apparent ileal digestibility, intestinal morphology, meat quality, and intestinal gene expression in broiler chick-ens: a comparison. Journal of Animal Science, 2020, 98(9): skaa254 (doi: 10.1093/jas/skaa254).
  • Tallentire C.W., Leinonen I., Kyriazakis I. Breeding for efficiency in the broiler chicken: a review. Agronomy for Sustainable Development, 2016, 36(4): 66 (doi: 10.1007/s13593-016-0398-2).
  • Cuhra M., Bøhn T., Cuhra P. Glyphosate: Too much of a good thing? Frontiers in Environment Science, 2016, 4: e28 (doi: 10.3389/fenvs.2016.00028).
  • Xu J., Smith S., Smith G., Wang W., Li Y. Glyphosate contamination in grains and foods: an overview. Food Control, 2019, 106(12): 106710 (doi: 10.1016/j.foodcont.2019.106710).
  • Tarazona J.V., Court-Marques D., Tiramani M., Reich H., Pfeil R., Istace F., Crivellente F. Glyphosate toxicity and carcinogenicity: a review of the scientific basis of the European Union assessment and its differences with IARC. Archives of Toxicology, 2017, 91(11): 2723-2743 (doi: 10.1007/s00204-017-1962-5).
  • Székács A., Darvas B. Re-registration challenges of glyphosate in the European Union. Frontiers in Environmental Science, 2018, 6: 35 (doi: 10.3389/fenvs.2018.00078).
  • Oswald I.P. Role of intestinal epithelial cells in the innate immune defence of the pig intestine. Veterinary Research, 2006, 37(3): 359-368 (doi: 10.1051/vetres:2006006).
  • Nochi T., Jansen C.A., Toyomizu M., van Eden W. The well-developed mucosal immune systems of birds and mammals allow for similar approaches of mucosal vaccination in both types of ani-mals. Frontiers in Nutrition, 2018, 5: 60 (doi: 10.3389/fnut.2018.00060).
  • Casteleyn C., Doom M., Lambrechts E., Van den Broeck W., Simoens P., Cornillie P. Locations of gut-associated lymphoid tissue in the 3-month-old chicken: a review. Avian Pathology, 2010, 39(3): 143-150 (doi: 10.1080/03079451003786105).
  • Bar-Shira E., Sklan D., Friedman A. Establishment of immune competence in the avian GALT during the immediate post-hatch period. Developmental and Comparative Immunology, 2003, 27(2): 147-157 (doi: 10.1016/s0145-305x(02)00076-9).
  • Goitsuka R., Chen C.-L.H., Benyon L., Asano Y., Kitamura D., Cooper M.D. Chicken catheli-cidin-B1, an antimicrobial guardian at the mucosal M cell gateway. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2007, 104(38): 15063-15068 (doi: 10.1073/pnas.0707037104).
  • Nile C.J., Townes C.L., Michailidis G., Hirst B.H., Hall J. Identification of chicken lysozyme g2 and its expression in the intestine. CMLS, Cell. Mol. Life Sci., 2004, 61(21): 2760-2766 (doi: 10.1007/s00018-004-4345-z).
  • Cuperus T., van Dijk A., Dwars R.M., Haagsman H.P. Localization and developmental expres-sion of two chicken host defense peptides: cathelicidin-2 and avian β-defensin 9. Developmental and Comparative Immunology, 2016, 61: 48-59 (doi: 10.1016/j.dci.2016.03.008).
  • Kurenbach B., Marjoshi D., Amábile-Cuevas C.F., Ferguson G.C., Godsoe W., Gibson P., Heinemann J.A. Sublethal exposure to commercial formulations of the herbicides dicamba, 2,4-dichlorophenoxyacetic acid, and glyphosate cause changes in antibiotic susceptibility in Esche-richia coli and Salmonella enterica serovar Typhimurium. mBio, 2015, 6(2): e00009-15 (doi: 10.1128/mBio.00009-15).
  • Ognik K., Konieczka P., Stępniowska A., Jankowski J. Oxidative and epigenetic changes and gut permeability response in early-treated chickens with antibiotic or probiotic. Animals, 2020, 10(12): 2204 (doi: 10.3390/ani10122204).
  • Krauze M., Abramowicz K., Ognik K. The effect of addition of probiotic bacteria (Bacillus subtilis or Enterococcus faecium) or phytobiotic containing cinnamon oil to drinking water on the health and performance of broiler. Annals of Animal Science, 2020, 20: 191-205 (doi: 10.2478/aoas-2019-0059).
  • Abramowicz K., Krauze M., Ognik K. Use of Bacillus subtilis PB6 enriched with choline to improve growth performance, immune status, histological parameters and intestinal microbiota of broiler chickens. Animal Production Science, 2020, 60(5): 625-634 (doi: 10.1071/AN18737).
  • Chen Y., Wen C., Zhou Y. Dietary synbiotic incorporation as an alternative to antibiotic improves growth performance, intestinal morphology, immunity and antioxidant capacity of broilers. Jour-nal of the Science of Food and Agriculture, 2018, 98(9): 3343-3350 (doi: 10.1002/jsfa.8838).
  • Łukasik J., Guo Q., Boulos L., Szajewska H., Johnston B.C. Probiotics for the prevention of antibiotic-associated adverse events in children-A scoping review to inform development of a core outcome set. PLoS ONE, 2020, 15(5): e0228824 (doi: 10.1371/journal.pone.0228824).
  • Cheng G., Hao H., Xie S., Wang X., Dai M., Huang L., Yuan Z. Antibiotic alternatives: The substitution of antibiotics in animal husbandry? Frontiers in Microbiology, 2014, 5: 217 (doi: 10.3389/fmicb.2014.00217).
  • Nichols R.G., Davenport E.R. The relationship between the gut microbiome and host gene ex-pression: a review. Human Genetics, 2021, 140(5): 747-760 (doi: 10.1007/s00439-020-02237-0).
  • Rashidi N., Khatibjoo A., Taherpour K., Akbari-Gharaei M., Shirzadi H. Effects of licorice ex-tract, probiotic, toxin binder and poultry litter biochar on performance, immune function, blood indices and liver histopathology of broilers exposed to aflatoxin-B1. Poultry Science, 2020, 99(11): 5896-5906 (doi: 10.1016/j.psj.2020.08.034).
  • Firdous S., Iqbal S., Anwar S. Optimization and modeling of glyphosate biodegradation by a novel Comamonas odontotermitis P2 through response surface methodology. Pedosphere, 2017, 30(5): 618-627 (doi: 10.1016/S1002-0160(17)60381-3).
  • European Convention for the Protection of Vertebrate Animals used for Experimental and other Scientific Purposes (ETS № 123) (Strasburg, 18.03.1986).
  • Егоров И.А., Манукян В.А., Ленкова Т.Н., Околелова Т.М., Лукашенко В.С. Методика проведения научных и производстве нных исследований по кормлению сельскохозяйственной птицы. Молекулярно генетические методы определения микрофлоры кишечника /Под ред. В.И. Фисинина. Сергиев Посад, 2013
  • СанПиН 1.2.3685-21. Гигиенические нормативы и требования к обеспечению безопасности и (или) безвредности для человека факторов среды обитания.
  • Zeka F., Vanderheyden K., De Smet E., Cuvelier C. A.A., Mestdagh P., Vandesompele J. forward and sensitive RT qPCR based gene expression analysis of FFPE samples. Scientific Re- ports , 2016, 6: 21418 (doi: 10.1038/srep21418).
  • Yue H., Lei X.W., Yang F.L., Li M.Y., Tang C. Reference gene selection for normalization of PCR analysis in chicken embryo fibroblast infected with H5N1 AIV. Virol Sin .., 2010, 25(6): 425 4 31 (doi: 10.1007/s12250 010 3114 4).
  • Meza Cerda M.I., Gray R., Higgins D.P. Cytokine RT qPCR and ddPCR for immunological investigations of the endangered Australian sea lion ( Neophoca cinerea ) and other mammals. PeerJ , 2020, 8: e10306 (doi: 10.7717/peerj.10306).
  • Laptev G.Y., Filippova V.A., Kochish I.I., Yildirim E.A., Ilin a L.A., Dubrovin A.V., Brazhnik E.A., Novikova N.I., Novikova O.B., Dmitrieva M.E., Smol ensky V.I., Surai P.F., Griffin D.K., Romanov M.N. Examination of the expression of immunity genes and bac terial profiles in the caecum of growing chickens infected with Salmonella enteritidis and fed a phytobiotic. Animals , 2019, 9(9): 615 (doi: 10.3390/ani9090615).
  • Livak K.J., Schmittgen T.D. Analysis of relative gene expression data using real time quantitative PCR and the 2  ΔΔCT method. Methods , 2001, 25(4): 402 408 (doi: 10.1006/meth.2001.1262).
  • Имангулов Ш.А., Егоров И.А., Околелова Т. М., Тишенков А.Н., Ленкова Т.Н., Паньков П.Н., Езерская А.В., Игнатова Г.В., Догадаева И.В., Авдонин Б.Ф., Петрина З.А., Борисова Т.В., Громова Т.И. Методика проведения научных и производственных исследований по кормлению сельскохозяйственной птицы: рекомендации /Под ред. В.И. Фисинина, Ш.А. Иман-гулова. Сергиев Посад, 2004
  • Hove Jensen B., Zechel D.L., Jochimsen B. Utilization of glyphosate as phosphate source: Biochemistry and genetics of bacterial carbon phosphorus lyase. Microbiol. Mol. Biol. Rev 2014, 78 ( 176 197 (doi: 10.1128/MMBR.00040 13)
  • Zhan H., Feng Y., Fan X., Chen S. Recent advances in glyphosate biodegradation. Appl. Micro-biol. Biotechnol., 2018, 102(12): 5033-5043 (doi: 10.1007/s00253-018-9035-0).
  • Balthazor T.M., Hallas L.E. Glyphosate-degrading microorganisms from industrial activated sludge. Applied and Environmental Microbiology, 1986, 51(2): 432-434 (doi: 10.1128/AEM.51.2.432-434.1986).
  • Średnicka P., Juszczuk-Kubiak E., Wójcicki M., Akimowicz M., Roszko M.Ł. Probiotics as a biological detoxification tool of food chemical contamination: a review. Food Chem. Toxicol., 2021, 153: 112306 (doi: 10.1016/j.fct.2021.112306).
  • Pop O.L., Suharoschi R., Gabbianelli R. Biodetoxification and protective properties of probiotics. Microorganisms, 2022, 10(7): 1278 (doi: 10.3390/microorganisms10071278).
  • Gill J.P.K., Sethi N., Mohan A., Datta S., Girdhar M. Glyphosate toxicity for animals. Environ-mental Chemistry Letters, 2018, 16(10): 401-426 (doi: 10.1007/s10311-017-0689-0).
  • Manservisi F., Lesseur C., Panzacchi S., Mandrioli D., Falcioni L., Bua L., Manservigi M., Spinaci M., Galeati G., Mantovani A., Lorenzetti S., Miglio R., Andrade A.M., Kristensen D.M., Perry M.J., Swan S.H., Chen J., Belpoggi F. The Ramazzini Institute 13-week pilot study glypho-sate-based herbicides administered at human-equivalent dose to Sprague Dawley rats: effects on development and endocrine system. Environmental Health, 2019, 18(1): 15 (doi: 10.1186/s12940-019-0453-y).
  • Alarcón R., Ingaramo P.I., Rivera O.E., Dioguardi G.H., Repetti M.R., Demonte L.D., Mi-lesi M.M., Varayoud J., Muñoz-de-Toro M., Luque E.H. Neonatal exposure to a glyphosate-based herbicide alters the histofunctional differentiation of the ovaries and uterus in lambs. Mo-lecular and Cellular Endocrinology, 2019, 482: 45-56 (doi: 10.1016/j.mce.2018.12.007).
  • Van Bruggen A., He M.M., Shin K., Mai V., Jeong K.C., Finckh M.R., Morris J.G. Jr. Envi-ronmental and health effects of the herbicide glyphosate. Science of The Total Environment, 2018, 616-617: 255-268 (doi: 10.1016/j.scitotenv.2017.10.3090).
  • Leino L., Tall T., Helander M., Saloniemi I., Saikkonen K., Ruuskanen S., Puigbò P. Classifi-cation of glyphosate’s target enzyme (5-enolpyruvylshikimate-3-phosphate synthase). BioRxiv, 2020, 408: 124556 (doi: 10.1101/2020.05.27.118265).
  • Aitbali Y., Ba-M'hamed S., Elhidar N., Nafis A., Soraa N., Bennis M. Glyphosate based-herbi-cide exposure affects gut microbiota, anxiety and depression-like behaviors in mice. Neurotoxicol-ogy and Teratology, 2018, 67: 44-49 (doi: 10.1016/j.ntt.2018.04.002).
  • Motta E.V.S., Raymann K., Moran N.A. Glyphosate perturbs the gut microbiota of honey bees. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2018, 115(41): 10305-10310 (doi: 10.1073/pnas.1803880115). 57. Mesnage R., Teixeira M., Mandrioli D., Falcioni L., Ducarmon Q.R., Zwittink R.D., Mazzacuva F., Caldwell A., Halket J., Amiel C., Panoff J.-M., Belpoggi F., Antoniou M.N. Use of shotgun metagenomics and metabolomics to evaluate the impact of glyphosate or roundup MON 52276 on the gut microbiota and serum metabolome of Sprague-Dawley rats. Environmental Health Perspectives, 2021, 129(1): CID 017005 (doi: 10.1289/EHP6990).
  • Faralli H., Dilworth E.J. Turning on myogenin in muscle: a paradigm for understanding mecha-nisms of tissue-specific gene expression. Comparative and Functional Genomics, 2012, 2012: 836374 (doi: 10.1155/2012/836374).
  • Xiao Y., Wu C., Li K., Gui G., Zhang G., Yang H. Association of growth rate with hormone levels and myogenic gene expression profile in broilers. Journal of Animal Science and Biotechnol-ogy, 2017, 8: 43 (doi: 10.1186/s40104-017-0170-8).
  • Flynn J.E., Meadows E., Fiorotto M., Klein W.H. Myogenin regulates exercise capacity and skeletal muscle metabolism in the adult mouse. PLoS ONE, 2011, 5(10): e13535 (doi: 10.1371/journal.pone.0013535).
  • van Dijk A., Veldhuizen E.J.A., Haagsman H.P. Avian defensins. Veterinary Immunology and Immunopathology, 2008, 124(1-2): 1-18 (doi: 10.1016/j.vetimm.2007.12.006).
  • Yang D., Chertov O., Bykovskaia S.N., Chen Q., Buffo M.J., Shogan J., Anderson M., Schrö-der J.M., Wang J.M., Howard O.M., Oppenheim J.J. Beta-defensins: linking innate and adaptive immunity through dendritic and T cell CCR6. Science, 1999, 286(5439): 525-528 (doi: 10.1126/science.286.5439.525).
  • Niyonsaba F., Iwabuchi K., Matsuda H., Ogawa H., Nagaoka I. Epithelial cell-derived human beta-defensin-2 acts as a chemotaxin for mast cells through a pertussis toxin-sensitive and phospholipase C-dependent pathway. International Immunology, 2002, 14(4): 421-426 (doi: 10.1093/intimm/14.4.421).
  • Yacoub H.A., Elazzazy A.M., Abuzinadah O.A.H., Al-Hejin A.M., Mahmoud M.M., Harakeh S.M. Antimicrobial activities of chicken β-defensin (4 and 10) peptides against patho-genic bacteria and fungi. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology, 2015, 5: 36 (doi: 10.3389/fcimb.2015.00036).
  • Ning S., Pagano J.S., Barber G.N. IRF7: activation, regulation, modification and function. Genes and Immunity, 2011, 12(6): 399-414 (doi: 10.1038/gene.2011.21).
  • Haller O., Kochs G., Weber F. The interferon response circuit: induction and suppression by pathogenic viruses. Virology, 2006, 344(1): 119-130 (doi: 10.1016/j.virol.2005.09.024).
  • Terada T., Nii T., Isobe N., Yoshimura Y. Effect of antibiotic treatment on microbial composition and expression of antimicrobial peptides and cytokines in the chick cecum. Poultry Science, 2020, 99(7): 3385-3392 (doi: 10.1016/j.psj.2020.03.016).
  • Russo M., Humes S.T., Figueroa A.M., Tagmount A., Zhang P., Loguinov A., Lednicky J.A., Sabo-Attwood T., Vulpe C.D., Liu B. Organochlorine pesticide dieldrin suppresses cellular inter-feron-related antiviral gene expression. Toxicological Sciences, 2021, 182(2): 260-274 (doi: 10.1093/toxsci/kfab064).
  • Dalhoff A., Shalit I. Immunomodulatory effects of quinolones. The Lancet Infectious Diseases, 2003, 3(6): 359-371 (doi: 10.1016/S1473-3099(03)00658-3).
  • Moldawer L.L., Gelin J., Scherstén T., Lundholm K.G. Circulating interleukin 1 and tumor necrosis factor during inflammation. The American Journal of Physiology, 1987, 253(6): 922-928 (doi: 10.1152/ajpregu.1987.253.6.R922).
  • Cannon J.G., Tompkins R.G., Gelfand J.A., Michie H.R., Stanford G.G., van der Meer J.W., Endres S., Lonnemann G., Corsetti J., Chernow B., Wilmore D.W., Wolff S.M., Burke J.F., Dinarello C.A. Circulating IL-1 and TNF in septic shock and experimental endotoxin fever. The Journal of Infectious Diseases, 1990, 161(1): 79-84 (doi: 10.1093/infdis/161.1.79).
  • Darif D., Hammi I., Kihel A., El Idrissi Saik I., Guessous F., Akarid K. The pro-inflammatory cytokines in COVID-19 pathogenesis: What goes wrong? Microbial Pathogenesis, 2021, 153: 104799 (doi: 10.1016/j.micpath.2021.104799).
  • Broom L.J., Kogut M.H. Inflammation: friend or foe for animal production? Poultry Science, 2018, 97(2): 510-514 (doi: 10.3382/ps/pex314).
  • Tracey K.J., Wei H., Manogue K.R., Fong Y., Hesse D.G., Nguyen H.T., Kuo G.C., Beutler B., Cotran R.S., Cerami A. Cachectin/tumor necrosis factor induces cachexia, anemia, and inflamma-tion. The Journal of Experimental Medicine, 1988, 167(3): 1211-1227 (doi: 10.1084/jem.167.3.1211).
  • Fong Y., Moldawer L.L., Marano M., Wei H., Barber A., Manogue K., Tracey K.J., Kuo G. Cachectin/TNF or IL-1 alpha induces cachexia with redistribution of body proteins. The American Journal of Physiology, 1989, 256(3): R659-R665 (doi: 10.1152/ajpregu.1989.256.3.R659).
  • Prescott S.M., Fitzpatrick F.A. Cyclooxygenase-2 and carcinogenesis. Biochimica et Biophysica Acta, 2000, 1470(2): 69-78 (doi: 10.1016/s0304-419x(00)00006-8).
  • Thuresson E.D., Lakkides K.M., Rieke C.J., Sun Y., Wingerd B.A., Micielli R., Mulichak A.M., Malkowski M.G., Garavito R.M., Smith W.L. Prostaglandin Endoperoxide H Synthase-1: The functions of cyclooxygenase active site residues in the binding, positioning, and oxygenation of arachidonic acid 210. Journal of Biological Chemistry, 2001, 276(13): 10347-10357 (doi: 10.1074/jbc.M009377200).
  • Binukumar B.K., Bal A., Gill K.D. Chronic dichlorvos exposure: microglial activation, proin-flammatory cytokines and damage to nigrostriatal dopaminergic system. Neuromolecular Medicine, 2011, 13(4): 251-265 (doi: 10.1007/s12017-011-8156-8).
  • Zhang Y., Ren M., Li J., Wei Q., Ren Z., Lv J., Niu F., Ren S. Does omethoate have the potential to cause insulin resistance? Environmental Toxicology and Pharmacology, 2014, 37(1): 284-290 (doi: 10.1016/j.etap.2013.11.030).
  • Wellen K.E., Hotamisligil G.S. Inflammation, stress, and diabetes. The Journal of Clinical Inves-tigation, 2005, 115(5): 1111-1119 (doi: 10.1172/JCI25102).
  • Zhang K., Shen X., Wu J., Sakaki K., Saunders T., Rutkowski D.T., Back S.H., Kaufman R.J: Endoplasmic reticulum stress activates cleavage of CREBH to induce a systemic inflammatory response. Cell, 2006, 124(3): 587-599 (doi: 10.1016/j.cell.2005.11.040).
  • Yudkin J.S., Stehouwer C.D., Emeis J.J., Coppack S.W. C-reactive protein in healthy subjects: associations with obesity, insulin resistance, and endothelial dysfunction: a potential role for cy-tokines originating from adipose tissue? Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology, 1999, 19(4): 972-978 (doi: 10.1161/01.atv.19.4.972).
  • Tan J., McKenzie C., Potamitis M., Thorburn A.N., Mackay C.R., Macia L. The role of short-chain fatty acids in health and disease. Advances in Immunology, 2014, 121: 91-119 (doi: 10.1016/B978-0-12-800100-4.00003-9).
  • Usami M., Kishimoto K., Ohata A., Miyoshi M., Aoyama M., Fueda Y., Kotani J. Butyrate and trichostatin A attenuate nuclear factor κB activation and tumor necrosis factor α secretion and increase prostaglandin E2 secretion in human peripheral blood mononuclear cells. Nutrition Re-search, 2008, 28(5): 321-328 (doi: 10.1016/j.nutres.2008.02.012).
  • Xu C., Li C.Y., Kong A.N. Induction of phase I, II and III drug metabolism/transport by xeno-biotics. Archives of Pharmacal Research, 2005, 28(3): 249-268 (doi: 10.1007/BF02977789).
  • McLellan L.I., Judah D.J., Neal G.E., Hayes J.D. Regulation of aflatoxin B1-metabolizing alde-hyde reductase and glutathione S-transferase by chemoprotectors. The Biochemical Journal, 1994, 300(1): 117-124 (doi: 10.1042/bj3000117).
  • Kelly V.P., Ellis E.M., Manson M.M., Chanas S.A., Moffat G.J., McLeod R., Judah D.J., Neal G.E., Hayes J.D. Chemoprevention of aflatoxin B1 hepatocarcinogenesis by coumarin, a natural benzopyrone that is a potent inducer of aflatoxin B1-aldehyde reductase, the glutathione S-transferase A5 and P1 subunits, and NAD(P)H:quinone oxidoreductase in rat liver. Cancer Research, 2000, 60(4): 957-969.
  • Murcia H.W., Diaz G.J. Protective effect of glutathione S-transferase enzyme activity against aflatoxin B1 in poultry species: relationship between glutathione S-transferase enzyme kinetic parameters, and resistance to aflatoxin B1. Poultry Science, 2021, 100(8): 101235 (doi: 10.1016/j.psj.2021.101235).
  • Meinl W., Sczesny S., Brigelius-Flohé R., Blaut M., Glatt H. Impact of gut microbiota on intes-tinal and hepatic levels of phase 2 xenobiotic-metabolizing enzymes in the rat. Drug Metabolism and Disposition, 2009, 37(6): 1179-1186 (doi: 10.1124/dmd.108.025916).
Еще
Статья научная