Прогнозирование эмбриопродуктивности коров-доноров на основании эхографической характеристики яичников

Автор: Бригида А.В., Сорокин В.И., Ковальчук Светлана Николаевна, Пантюх К.С., Рукин И.В., Рожин К.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Статья в выпуске: 4 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

Одно из основных ограничений широкого применения биотехнологий репродукции для ускоренного воспроизводства крупного рогатого скота - недостаточно разработанные методы отбора коров-доноров при трансплантации эмбрионов. Объективная причина заключается в вариабельности ответа яичников на введенные гонадотропины. Достоверная информация о возможности прогнозировать эмбриопродуктивность коров-доноров на этапе до введения гонадотропных препаратов до сих пор отсутствует, что существенно снижает экономическую эффективность этого биотехнологического приема. Мы применили постпрессинговую обработку эхограмм яичников для прогнозирования эмбриопродуктивности коров-доноров, сравнив ее количественные и качественные показатели при индукции суперовуляции в зависимости от эхографической характеристики яичников. Морфофункциональное состояние яичников коров-доноров (n = 30) оценивали на 10-е сут полового цикла, перед осеменением (эструс) и на 7-е сут индуцированного полового цикла, непосредственно перед извлечением эмбрионов с учетом данных постпрессинговой морфометрии яичников...

Еще

Корова, яичники, эструс, эхография, морфометрические показатели, полиовуляция, эмбрионы, эмбриопродуктивность

Короткий адрес: https://sciup.org/142216575

IDR: 142216575 | DOI: 10.15389/agrobiology.2018.4.753rus

Список литературы Прогнозирование эмбриопродуктивности коров-доноров на основании эхографической характеристики яичников

Анзоров В.А., Шириев В.М., Сергеев Н.И., Титов В.А., Насибов Ф.Н., Байтлесов Е.У. Сравнительная характеристика и оценка жизнеспособности эмбрионов, полученных от здоровых и племенных коров-доноров с разным уровнем молочной продуктивности. Сельскохозяйственная биология, 2005, 6: 37-41.
Кононов В.П., Черных В.Я. Биотехника репродукции в молочном скотоводстве. М., 2009.
Baruselli P.S., Vieira1 L.M., Batista E.O.S., Ferreira R.M., Sales J.N.S., Gimenes L.U., Torres-Junior J.R.S., Martins C.M., SáFilho M.F., Bo G.A. Updates on embryo production strategies. Anim. Reprod., 2015, 12(3): 375-382.
Hopper R.M. Bovine reproduction. Wiley Blackwell, 2015: 696-733.
Kugonza D.R., Kayitesi A., Semahoro F., Ingabire D., Manzi M., Hirwa C.A., Gahakwa D. Factors affecting suitability of surrogate dams for embryo transfer in cattle. Journal of Animal Science Advances, 2013, 3(4): 203-210 ( ) DOI: 10.5455/jasa.20130430123202
Vasconcelos J.L.M., Dementrio D.G.B., Santos R.M., Chiari J.R., Rodrigues C.A., Filho O.G. Factors potentially affecting fertility of lactating dairy cow recipients. Therlogenology, 2006, 65: 192-200 ( ) DOI: 10.1016/j.theriogenology.2005.09.030
Пташинская М. Краткое руководство по репродукции животных. Intervet International BV, 2009.
Эрнст Л.К., Варнавский А.Н. Репродукция животных. М., 2007.
Mapletoft J., Garcia Guerra A., Dias F.C.F., Singh J., Adams G.P. In vitro and in vivo embryo production in cattle superstimulated with FSH for 7 days. Anim. Reprod., 2015, 12 (3): 759-388.
Petroman I., Pacala N., Petroman C., Bencsik I., Orboi M.D., Dronca D., Băneş A. Utilization of gestagen hormones and pituitary FSH extracts in inducing the superovulation at embryo donor cows. Journal of Food Agriculture & Environment, 2009, 7(2): 193-195.
Воронин Е.С., Петров А.М., Серых М.М., Девришов Д.А. Иммунология. М, 2002.
Косовский Г.Ю., Попов Д.В., Бригида А.В. Эффективность индукции суперовуляции у коров-доноров эмбрионов при применении различных схем введения препарата фолликулостимулирующего гормона. Ветеринария и кормление, 2016, 5: 29-31.
Косовский Г.Ю., Попов Д.В., Бригида А.В., Волколупов Г.В. Суперовуляция у коров -доноров эмбрионов калмыцкой породы при применении пролонгированной формы препарата ФСГ. Известия Нижневолжского агроуниверситетского комплекса: наука и высшее профессиональное образование, 2015, 3(39): 106-108.
Sanchez Z., Lammoglia M.A., Alarcon M.A., Romero J.J., Galina C.S. Is the production of embryos in small-scale farming an economically feasible enterprise? Reprod. Domest. Anim., 2015, 50(4): 574-579 ( ) DOI: 10.1111/rda.12526
Косовский Г.Ю., Попов Д.В., Бригида А.В., Волколупов Г.В. Эмбриопродуктивность при индукции суперовуляции пролонгированной формой препарата ФСГ-супер коров калмыцкой породы в период воспроизводства. Известия Нижневолжского агроуниверситетского комплекса: наука и высшее профессиональное образование, 2015, 2(38): 148-152.
Liang A., Salzano A., D'Esposito M., Comin A., Montillo M., Yang L., Campanile G., Gasparrini B. Anti-Mullerian hormone (AMH) concentration in follicular fluid and mRNA expression of AMH receptor in granulose cell as predictive markers of good buffalo (Bubalus bubalis) donors. Theriogenology, 2016, 86(4): 963-970 ( ) DOI: 10.1016/j.theriogenology.2016.03.020
Rao M.M., Uma Mahesh Y., Misra A.K. Evaluation of ovarian response and embryo production pattern in Ongole cows. Indian Journal of Animal Science, 2010, 80(10): 973-975.
Baruselli P.S., Batista E.O.S., Vieira L.M., Sales J.N.S., Gimenes L.U., Ferreira R.M. Intrinsic and extrinsic factors that influence ovarian environment and efficiency of reproduction in cattle. Anim. Reprod., 2017, 14(1): 48-60 ( ) DOI: 10.21451/1984-3143-AR907
Ali M.S., Khandoker M.A.M.Y., Afroz M.A., Bhuiyan A.K.F.H. Ovarian response to different dose levels of follicle stimulating hormone (FSH) in different genotypes of Bangladeshi cattle. Asian-Australasian Journal of Animal Science, 2012, 25(1): 52-58 ( ) DOI: 10.5713/ajas.2011.11167
Villaseron Gonzaleza F., de la Torre Sanchez J.F., Martinez Velazques G., Gallardo H.A., Reynozo S.P., Fránquez J.A.P., Sojo R.P., Bermúdez M.M. Characterization of the ovarian response to superovulation in Creole Coreno cattle using reduced doses of FSH. Revista Mexicana De Ciencias Pecuarias, 2017, 8(3): 225-232.
Sartori R., Monteiro P.L.J. Jr., Wiltbank M.C. Endocrine and metabolic differences between Bos taurus and Bos indicus cows and implications for reproductive management. Anim. Reprod., 2016, 13(3): 168-181 ( ) DOI: 10.21451/1984-3143-AR868
Aziz R.L.A., Khalil A.A.Y., Abdel-Wahab A., Hassan N.Y., Abdel-Hamied E., Kasimanickam R. Relationship among circulating anti-Mullerian hormone, insulin like growth factor 1, cadmium and superovulatory response in dairy cows. Theriogenology, 2017, 100: 72-79 ( ) DOI: 10.1016/j.theriogenology.2017.06.007
Baruselli P.S., Batista E.O.S., Vieira L.M., Souza A.H. Relationship between follicle population, AMH concentration and fertility in cattle. Anim. Reprod., 2015, 12(3): 487-497.
Mossa F., Jimenez-Krassel F., Scheetz D., Weber-Nielsen M., Evans A.C.O., Ireland J.J. Anti-Mullerian Hormont (AMH) and fertility management in agricultural species. Reproduction, 2017, 154(1): R1-R11 ( ) DOI: 10.1530/REP-17-0104
Redhead A.K., Siew N., Lambie N., Carnarvon D., Ramgattie R., Knights M. The relationship between circulating conception of AMH and LH content in the follicle stimulating hormone (FSH) preparations on follicular growth and ovulatory response to superovulation in water buffaloes. Animal Reproduction Science, 2018, 188: 66-73 ( ) DOI: 10.1016/j.anireprosci.2017.11.010
Yang W.C., Tang K.Q., Li S.J., Yang L. Association analysis between variants in bovine progesterone receptor gene and superovulation traits in Chinese Holstein cows. Reprod. Domest. Anim., 2011, 46(6): 1029-1034 ( ) DOI: 10.1111/j.1439-0531.2011.01780.x
Yang W.C., Li S.J., Tang K.Q., Hua G.H., Zhang C.Y., Yu J.N., Han L., Yang L.G. Polymorphisms in 5´ upstream region of the FSH receptor gene, and their association with superovulation traits in Chinese Holstein cows. Animal Reproduction Science, 2010, 119(3-4): 172-177 ( ) DOI: 10.1016/j.anireprosci.2010.02.004
Yang W.C., Tang K.Q., Li S.J., Chao L.M., Yang L.M. Polymorphisms of the bovine luteinizing hormone/choriogonadotropin receptor (LHCGR) gene and its association with superovulation traits. Molecular Biology Reports, 2012, 39(3): 2481-2487 ( ) DOI: 10.1007/s11033-011-0999-4
Yang W.C. Li S.J., Xie Y.H., Tang K.Q., Hua G.H., Zhang C., Yang L.G. Two novel SNPs of the type I gonadotropin releasing hormone receptor gene and their associations with superovulation traits in Chinese Holstein cows. Livestock Science, 2011, 136: 164-168 ( ) DOI: 10.1016/j.livsci.2010.08.012
Yu Y., Pang Y., Zhao H., Xu X., Wu Z., An L., Tian J. Association of a missense mutation in the luteinizing hormone/choriogonadotropin receptor gene (LHCGR) with superovulation trains in Chinese Holstein heifers. Journal of Animal Science and Biotechnology, 2012, 3(1): 35 ( ) DOI: 10.1186/2049-1891-3-35
Bezdicek J., Makarevich A., Stadnik A., Kubovičová E., Louda F., Hegedüšová Z., Holásek R., Ducháček J., Stupka R. Analysis of factors affecting the quantity and quality of embryo production in superovulated cows. Zuchtungskunde, 2015, 87(4): 249-264.
Mehmood M.U., Mehmood S., Riaz A., Ahmad N., Sattar A. Superovulatory response in Summer anestrus Buffaloes and cattle treated with estrus synchronization protocol. Journal of Animal and Plant Science, 2012, 22(4): 888-893.
Глазко Т.Т., Косовский, Г.Ю., Попов Д.В., Бригида А.В. Взаимосвязь геномной нестабильности и эмбриопродуктивности у коров-доноров эмбрионов. Ветеринария Кубани, 2015, 6: 9-11.
Косовский, Г.Ю., Попов Д.В., Бригида А.В. Методы корректировки индукции суперовуляции с целью получения оптимального количества эмбрионов, пригодных к трансплантации. Ветеринария Кубани, 2015, 5: 15-17.
Tomac J., Cekinovich D., Arapovic J. Biology of the corpus luteum. Periodicum Biologorum, 2011, 113(1): 43-49.
Kayacik V., Salmanoglu M.R., Polat B., Ozluer A. Evaluations of the corpus luteum size throughout the cycle by ultrasonography and progesterone assay in cows. Turk. J. Vet Anim Sci., 2005, 29: 1311-1316.

Еще

Статья научная