Протеинограмма крови у телят с гнойными ранами

В соответствии с этим возникает необходимость поиска доступных и недорогих ранозаживляющих препаратов. Подходящим сырьем выступают растения. Ведь известно, что из всего арсенала лекарственных средств, применяемых в медицине и ветеринарии, 40% приходится на препараты растительного происхождения [4]. Растительные препараты действуют комплексно и мягче, чем синтетические аналоги [3]. Они менее токсичны, не вызывают аллергических реакций, не оказывают отрицательного побочного действия и повышают резистентность организма [0]. Учитывая вышесказанное, нами был создан препарат, на основе вытяжки березового гриба чаги и получивший название «Ранинон».

Целью настоящего исследования явилась оценка показателей общего белка и белковых фракций плазмы крови телят при лечении гнойных ран препаратом «Ранинон».

Материалы и методы. Исследования проходили в СПСК «Дружба» Чердаклинского района Ульяновской области. Объектом исследования служили телята чёрно-пестрой породы (n=10) в возрасте 12 месяцев с живой массой 200-220 кг. По принципу аналогов были сформированы 2 группы по 5 голов в каждой. Животные двух групп находились в одинаковых условиях кормления и содержания.

Экспериментальным животным наносили кожно-мышечные раны в области бедра с латеральной стороны, предварительно подготовив операционное поле по Н.И. Пирогову и проведя местную инфильтрационную анестезию 0,5 % раствором новокаина по линии разреза. Для нанесения ран использовали трафарет, длина которого составляла-8,0 см, а глубина-2,0 см. Для воспроизведения гнойного воспаления раны инфицировались микробной взвесью Enterococcus feacalis в количестве 2x109 м.к./мл. Тампон, обильно смоченный микробной взвесью, помещали в рану после остановки кровотечения. Для предотвращения его выпадения накладывались провизорные швы. Швы снимали через сутки и приступали у лечению. Раны у животных контрольной группы лечили мазью Левомиколь, а у опытной группы -ранозаживляющей мазью «Ранинон».

Материалом исследований явилась кровь, которую брали из яремной вены до нанесения ран, а затем после ранения - через час, затем на 1,3, 6, 9, 12, 15 и 23 сутки.

В соответствии с поставленной целью нами изучались следующие показатели плазмы крови: общий белок, α1-глобулины, α2-глобулины, β-глобулины и γ-глобулины. Изучение показателей проводили на анализаторе акустическом компьютеризированном АКБа-01 БИОМ. Полученные данные подвергались статистической обработке с помощью программы «Statistika 6».

Результаты исследований. При исследовании плазмы крови через час после ранения в опытной группе наблюдалось уменьшение количества общего белка на 6,2 %, а в контрольной группе на 10,6 %. На 1-е сутки лечения уровень общего белка в опытной группе увеличился на 2,5 %, а в контрольной группе на 3,3 % по сравнению с фоновыми показателями. Наивысшее количество общего белка за весь период лечения наблюдалось на 6-е сутки, увеличение составило в опытной группе на 11,2 % и на 8,8 % в контрольной соответственно. К концу лечения уровень белка в плазме крови постепенно снижался и на момент выздоровления был выше фонового показателя на 3,4 %, а в контрольной группе - на 7,7 %.

Уровень α1-глобулинов через час после нанесения ран в опытной группе повысился на 6,1%, но уже на 1-е сутки лечения снизился на 13,8 %. Увеличение содержания α1-глобулинов наблюдалось на 12-е сутки по сравнению с предыдущими днями. К концу лечения количество α1-глобулинов увеличилось на 9,7 % в сравнении с днем нанесения раны. Анализируя уровень изменения α1-глобулинов в контрольной группе, отмечали, что через час после ранения, показатель снизился на 15,9 % и на протяжении всего лечения оставался ниже. На 23-е сутки, по сравнению с фоновым показателем, уровень α1-глобулинов был ниже на 14,3 %.

Показатели фракций α2-глобулинов в первый час после ранения в опытной и контрольной группах повышались на 40,1 % и понижались на 25,7 %, соответственно. В опытной группе, уровень α2-глобулинов начиная с 12-х суток начал повышаться, и стал выше фоновых на 14,1 %, а к концу лечения -на 7,9 %. В контрольной же группе на протяжении всего лечения эти значения были ниже, и на момент заживления ран количество α2-глобулинов было снижено на 9,6 %.

Уровень β-глобулинов в опытной группе на всем протяжении исследования оставался высоким по сравнению с контрольной. Через час после ранения в опытной группе наблюдалось увеличение на 8,4 %, а в контрольной уменьшение на 2,7 %. И на момент выздоровления содержание β-глобулиновой фракции в опытной группе увеличилось на 5,5 %, а в контрольной лишь на 0,8 % по сравнению с показателями фона.

Снижение γ-глобулинов в опытной группе наблюдалось уже через час после нанесения раны, уровень фракции снизился на10,8 %, аналогичная картина наблюдалась и в контрольной группе, снижение произошло на 18.4 %. В последующие 9 дней наблюдалась тенденция к снижению уровня γ-глобулинов в двух группах, однако, в опытной группе уже к 12-м суткам уровень белковых фракций стал увеличиваться, и в момент выздоровления показатель был выше фонового на 5,8%. В контрольной же группе количество γ-глобулинов оставалось низким, и к концу лечения показатель был ниже фонового на 12,8 %.

Выводы. Анализируя полученные данные, можно сделать вывод, что у животных опытной группы, лечение которых проводили применяя растительный препарат «Ранинон», сопротивляемость организма была выше, о чем свидетельствует повышенное содержание α1-глобулинов, α2-глобулинов, β-глобулинов и γ-глобулинов. Также отмечалось снижение общего белка, что говорит об уменьшении воспалительного процесса в организме животного. В контрольной же группе, содержание общего белка на всем протяжении лечения оставалось повышенным, а уровень белковых фракций был ниже по сравнению с опытной группой.

Исходя из вышеперечисленного, можно сделать вывод, что заживление гнойных кожно-мышечных ран у телят контрольной группы наступало на 5-7 дней раньше, чем в контрольной группе, что говорит о высокой регенерирующей способности препарата «Ранинон».

ЛИТЕРАТУРА: 1. Авакаянц Б. Лекарственные растения в ветеринарной медицине.-М. «АКВАРИУМ ЛТД», 2001- 336с. 2. Виденин В.Н. Профилактика и лечение гнойно-воспалительных послеоперационных осложнений ран у животных. Методические рекомендации для врачей ветеринарной медицины.- Санкт-Петербург, 2001-37с. 3. Зориков П.С., Короткова И.П. Влияние бархата амурского и солодки уральской на заживление ран у свиней / П.С. Зориков, И.П. Короткова //Ветеринария,-М., 2009. №4. С.47-49. 4. Чиков П.С. Лекарственные растения: Справочник.- 2 –е изд., перераб. и доп.- М.: Агропромиздат, 1989.- 431с.

ПРОТЕИНОГРАММА КРОВИ У ТЕЛЯТ С ГНОЙНЫМИ РАНАМИ

Сухина И.С., Ермолаев В.А.

Резюме

В работе представлены результаты исследования изменений показателей общего белка и белковых фракций при процессе заживления гнойных кожно- мышечных ран у телят. Выявлена положительная динамика при лечении гнойных ран препаратом Ранинон.

PROTEINOGRAM BLOOD CALVES WITH PURULENT WOUNDS

Sukhina I.S, Ermolaev V. A.