Рафтообразующие липиды мембран митохондрий и хлоропластов галофита Halocnemum strobilaceum

Автор: Розенцвет Ольга Анатольевна, Нестеров Виктор Николаевич

Журнал: Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии @ssc-sl

Статья в выпуске: 3 т.30, 2021 года.

Бесплатный доступ

В работе исследован состав липидов рафтовых структур, выделенных из мембран митохондрий и хлоропластов однолетних побегов дикорастущего галофита Halocnemum strobilaceum. В зоне опалесценции, полученной центрифугированием биологического материала в градиенте сахарозы, обнаружено высокое содержание стеринов, цереброзидов и насыщенных жирных кислот в составе липидов. На основании полученных данных сделано предположение, что функциональная роль рафтов может быть связана с солеустойчивостью галофита Halocnemum strobilaceum.

Halocnemum strobilaceum, галофиты дикой флоры, хлоропласты, митохондрии, липидные рафты, липиды и жирные кислоты

Короткий адрес: https://sciup.org/148323685

IDR: 148323685 | DOI: 10.24412/2073-1035-2021-10412

Список литературы Рафтообразующие липиды мембран митохондрий и хлоропластов галофита Halocnemum strobilaceum

Балнокин Ю.В., Куркова Е.Б., Мясоедов Н.А., Луньков Р.В., Шамсутдинов Н.З., Егорова Е.А.,Бухов Н.Г. Структурно-функциональное состояние тилакоидов у галофита Suaeda altissima L. в норме и при нарушении водно-солевого режима под действием экстремально высоких концентраций NaCl // Физиология растений. 2004. № 51. С. 905-912.
Валитова Ю.Н., Котлова Е.Р., Новиков А.В., Шаварда А.Л., Артеменко К.А., Зубарев Р.А., Минибаева Ф.В. Связывание стеринов влияет на функционирование мембран и состав сфинголипидов в корнях пшеницы // Биохимия. 2010. Т. 75. С. 644-653.
Kейтс М. Техника липидологии. Выделение, анализ и идентификация липидов. М.: Мир, 1975. 322 с.
Нестеров В.Н., Нестеркина И.С., Розенцвет О.А., Озолина Н.В. Обнаружение липид-белковых микродоменов (рафтов) и изучение их функциональной роли в хлоропластных мембранах галофитов // Доклады Академии наук. 2017. Т. 476. С. 350-352.
Нестёркина И.С., Озолина Н.В., Бадуев Б.К., Фёдорова Г.А., Нурминский В.Н., Спиридонова Е.В., Саляев Р.К. Рафты вакуолярной мембраны столовой свеклы содержатV-H+-ATP-азу // Биол. мембраны. 2016. Т. 33. С. 450-453.
Розенцвет О.А., Нестеров В.Н., Синютина Н.Ф., Танкелюн О.В. Влияние ионов Cu+2 и Cd+2 на метаболизм мембранных липидов и белков Hydrilla verticillata // Биол. мембраны. 2012. Т. 29. С. 284-292.
Розенцвет О.А., Нестеров В.Н., Богданова Е.С. Структурные и физиолого-биохимические аспекты солеустойчивости галофитов // Физиол. растений. 2017. Т. 64. С. 251-265.
Balnokin Yu.V., Kurkova E.B., Myasoedov N.A., Lunkov R.V., Shamsutdinov N.Z., Egorova E.A., Bukhov N.G. Structural and functional state of thylakoids in halophyte Suaeda altissima L. in norm and in violation of the water-salt regime under the influence of extremely high concentrations of NaCl // Physiology Plants. 2004. No. 51. P. 905-912. (In Russian).
Valitova Yu.N., Kotlova E.R., Novikov A.V., Shavarda A.L., Artemenko K.A., Zubarev R.A., Minibaeva F.V. Binding of sterols affects the functioning of membranes and the composition of sphingolipids in wheat roots // Biochemistry. 2010. V. 75. P. 644-653. (In Russian).
Kates M. Technique of lipidology. Isolation, analysis and identification of lipids. Moscow: Mir, 1975. 322 p. (In Russian).
Nesterov V.N., Nesterkina I.S., Rozentsvet O.A., Ozolina N.V. Detection of lipid-protein microdomains (rafts) and study of their functional role in chloroplast membranes of halophytes // Doklady Akademii nauk. 2017. V. 476. P. 350-352. (In Russian).
Nesterkina I.S., Ozolina N.V., Baduev B.K., Fedorova G.A., Nurminsky V.N., Spiridonova E.V., Salyaev R.K. Rafts of the vacuolar membrane of table beet contain V-H + -ATP-ase // Biol. Membranes. 2016. V. 33, P. 450-453. (In Russian).
Rozentsvet O.A., Nesterov V.N., Sinyutina N.F., Tankelyun O.V. Influence of Cu + 2 and Cd + 2 ions on the metabolism of membrane lipids and proteins Hydrilla verticillata // Biol. Membranes. 2012. V. 29. P. 284-292. (In Russian).
Rozentsvet O.A., Nesterov V.N., Bogdanova E.S. Structural and physiological-biochemical aspects of salt tolerance of halophytes // Physiology Plants. 2017. V. 64. P. 251-265. (In Russian).
Allakhverdiev S.I., Kinoshita M., Inaba M., Suzuki I., Murata N. Unsaturated fatty acids in membrane lipids protect the photosynthetic machinery against salt-induced damage in Synechococcus // Plant Physiol. 2001. V. 125. P. 1842-1853.
Bagam P., Singh D.P., Inda M.E., Batra S. Unraveling the role of membrane microdomains during microbialinfections // Cell Biol. Toxicol. 2017. V. 33. P. 429-455.
Bassil E., Ohto M., Esumi T., Tajima H., Zhu Z., Cagnac O., Belmonte M., Peleg Z., Yamaguchi T., Blumwald E. The Arabidopsis intracellular Na+/H+ antiporters NHX5 and NHX6 are endosome associated and necessary for plant growth and development // Plant Cell. 2011. V. 23. P. 224-239.
Beck J.G., Mathieu D., Loudet C., Buchoux S., Dufourc E.J. Plant sterols in «rafts»: a better way to regulate membrane thermal shocks // FASEB J. 2007. V. 21. P. 1714-1723.
Bessueille L., Sindt N., Guichardant M., Djerbi S., Teeri T.T., Bulone V. Plasma membrane microdomains from hybrid aspen cells are involved in cell wall polysaccharide biosynthesis // Biochem. J. 2009. V. 420. P. 93-103.
Cacas J.-L., Furt F., Le Guedard M., Schmitter J.- M., Bure C., Gerbeau-Pissot P., Moreau P., Bessoule J.-J., Simon-Plas F., Mongrand S. Lipids of plant membrane rafts // Prog. Lipid Res. 2012. V. 5. P. 272-299.
Carmona-Salazar L., El Hafidi M., Enriquez-Arredondo C., Vazquez-Vazquez C., Gonzalez de la Vara L.E., Gavilanes-Ruiz M. Isolation of detergent-resistant membranes from plant photosynthetic and nonphotosynthetic tissues // Anal. Biochem. 2011. V. 417. P. 220-227.
Caroni P. Actin cytoskeleton regulation through modulation of PI(4,5)P2 rafts // EMBO Journal. 2001. V. 20. P. 4332-4336.
Clouse S.D. Plant development: A role for sterols in embryogenesis // Curr. Biol. 2000. V. 10. P. 11601-11604.
Cosentino C. Na+/H+ transporters of the halophyte Mesembryanthemum crystallinum L. Ph.D. Thesis, Vom Fachbereich Biologie der Technischen Universitat Darmstadt, Darmstadt, 2008. 72 p.
Garofalo T., Manganelli V., Grasso M., Mattei V., Ferri A., Misasi R., Sorice M. Role of mitochondrial raft-like microdomains in the regulation of cell apoptosis // Apoptosis. 2015. V. 20. P. 621-634.
Harder T., Scheiffele P., Verkade P., Simons K. Lipid-domain structure of the plasma membrane revealed by patching of membrane components // J. Cell Biol. 1998. V. 141. P. 929-942.
Hullin-Matsuda F., Kobayashi T. Monitoring the distribution and dynamics of signaling microdomains in living cells with lipid-specific probes // Cell. Mol. Life Sci. 2007. V. 64. P. 2492-2504.
Pike L.J. Rafts defined: a report on the keystone symposium on lipid rafts and cell function // J. Lipid Res. 2006. V. 47. P. 1597-1598.
Simons K., Ikonen E. Functional rafts in cell membranes // Nature. 1997. V. 387. P. 569-572.
Laloi M., Perret A.-M., Chatre L., Melser S., Cantrel C., Vaultier M.-N., Zachowski A., Bathany K., Schmitter J.-M., Vallet M., Lessire R., Hartmann M.- A., Moreau P. Insights into the role of specific lipids in the formation and delivery of lipid microdomains to the plasma membrane of plant cells // Plant Physiol. 2007. V. 143. P. 461-472.
Lang T., Bruns D., Wenzel D.R., Holroyd P., Thiele C., Jahn R. SNAREs are concentrated in cholesteroldependent clusters that define docking and fusion sites for exocytosis // EMBO Journal. 2001. V. 20. P. 2202-2213.
Lingwood D., Simons K. Lipid rafts as a membraneorganizing principle // Science. 2010. V. 327. P. 46-50.
Martin S.W., Konopka J.B. Lipid raft polarization contributes to hyphal growth in Candida albicans // Eukaryot. Cell. 2004. V. 3. P. 675-684.
Malinsky J., Opekarova M., Grossmann G., Tanner W. Membrane microdomains, rafts, and detergentresistant membranes in plants and fungi // Annu. Rev.Plant Biol. 2013. V. 64. P. 501-529.
Mongrand S., Stanislas T., Bayer E.M., Lherminier J., Simon-Plas F. Membrane rafts in plant cells // Trends Plant Sci. 2010. V. 15. P. 656-663.
Nickels J.D., Chatterjee S., Stanley C.B., Qian S., Cheng X., Myles D.A.A., Standaert R.F., Elkins J.G., Katsaras J. The in vivo structure of biological membranes and evidence for lipid domains // PLoS Biology. 2017. V. 15. e2002214.
Ott T. Membrane nanodomains and microdomains in plant-microbe interactions // Curr. Opin. Plant Biol. 2017. V. 40. P. 82-88.
Ozolina N.V., Nesterkina I.S., Kolesnikova E.V., Salyaev R.K., Nurminsky V.N., Rakevich A.L., Martynovich E.F., Chernyshov M.Y. Tonoplast of Beta vulgaris L. contains detergent-resistant membrane microdomains // Planta. 2013. V. 237. P. 859-871.

Еще

Статья научная