Распространенность в костромской породе наследственных аномалий, характерных для бурых пород (обзор)

Автор: Баданина Л.С., Лемякин А.Д., Чаицкий А.А., Сабетова К.Д.

Рубрика: Разведение, селекция и генетика сельскохозяйственных животных

Статья в выпуске: 4 т.6, 2023 года.

Бесплатный доступ

Глобальное внедрение молекулярно-генетических технологий во все сферы племенного дела началось в первые годы XXI века. Возникшие преобразования навсегда изменили существовавший на тот момент первоначальный образ молочного скотоводства. Применение современных методов селекции в последние десятилетия привело к значительному росту продуктивности молочного скота. Наряду с этим в популяциях крупного рогатого скота стали накапливаться рецессивные летальные аллели, названные гаплотипами фертильности. Отрицательное действие сильно отразилось как на экономической эффективности хозяйств, так и на самих животных: существенно снизился уровень продуктивного долголетия коров. Гаплотипом называют участок или сегмент ДНК, передающийся потомкам от родителей как единое целое. Изучение гаплотипов в геномах животных имеет важное значение для понимания вариаций их влияния на формирование фенотипа, на этиологию и патогенез заболеваний. В представленном обзоре рассматриваются генетические аномалии, присущие бурому швицкому скоту. Исследование на их носительство особенно актуально для костромской породы крупного рогатого скота. В настоящее время в бурой швицкой породе регистрируется 5 гаплотипов фертильности (SDM, SAA, SMA, Weaver, BH2), ассоциированных с эмбриональной и ранней постэмбриональной смертностью на различных стадиях. Определяются возможные причины распространения гаплотипов фертильности в популяциях крупного рогатого скота, а именно: постоянное использование в практике искусственного осеменения быков, являющихся скрытыми носителями мутации, большой промежуток времени от возникновения до выявления мутации, составляющий примерно 18-59 лет. Отмечается ключевая роль ДНК-диагностики в контроле и ликвидации гаплотипов фертильности в популяции племенного скота, сосредоточенного на территории Российской Федерации, как следствие, генетических дефектов.

Еще

Крупный рогатый скот, костромская порода, воспроизводительная способность, генетические дефекты, гаплотипы фертильности

Короткий адрес: https://sciup.org/147242481

IDR: 147242481 | DOI: 10.15838/alt.2023.6.4.6

Список литературы Распространенность в костромской породе наследственных аномалий, характерных для бурых пород (обзор)

Абылкасымов Д.А., Ионова Л.В., Сударев Н.П., Камынин П.С. (2014). Молочная продуктивность и показатели воспроизводительной способности коров в зависимости от отдельных факторов // Молочное и мясное скотоводство. № 1. С. 9–11.
Баранов А.В., Шалугин Б.В. (2011). Оценка и рациональное использование генофонда костромской породы скота // Достижения науки и техники АПК. № 9. С. 48–51.
Баранова Н.С., Парамонова Н.Ю., Гусева Т.Ю. [и др.] (2019). Костромская порода крупного рогатого скота в новом столетии: состояние и перспективы (обзор) // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. № 6. С. 533–547.
Басонов О.А., Колесникова А.В. (2016). Влияние генотипа голштинских быков-производителей различной селекции на продуктивные показатели черно-пестрой породы // Зоотехния. № 5. С. 2–3.
Белокуров С.Г., Бадин Г.А., Егоров О.С. [и др.] (2012). Генетическая характеристика генеалогической структуры костромской породы крупного рогатого скота // Сельскохозяйственная биология. № 4. С. 42–46.
Гладырь Е.А., Терновская О.А., Костюнина О.В. (2018). Скрининг гаплотипа фертильности АН1 айрширской породы крупного рогатого скота Центрального и Северо-Западного региона России // АгроЗооТехника. Т. 1. № 4. C. 3–6. DOI: 10.15838/alt.2018.1.4.1
Зимина А.А. (2020). Полиморфизм гена TUBD1 в популяции крупного рогатого скота костромской породы // Безопасность и качество сельскохозяйственного сырья и продовольствия: сб. ст. Всерос. науч.-практ. конф. (г. Москва, 16 декабря 2020 г.). Москва: ЭйПиСиПаблишинг. С. 105–108.
Зиновьева Н.А. (2016). Гаплотипы фертильности голштинского скота // Сельскохозяйственная биология. Т. 51. № 4. С. 423–435. DOI: 10.15389/agrobiology.2016.4.423rus
Зиновьева Н.А., Стрекозов Н.И., Ескин Г.В. [и др.] (2015). Моногенные наследственные дефекты и их роль в воспроизводстве // Животноводство России. № 6. С. 30–31.
Мишхожев А.А., Айсанов З.М., Тарчоков Т.Т., Тлейншева М.Г. (2017). Молочная продуктивность голштинских коров различных линий // Зоотехния. № 9. С. 2–5.
Солтынская И.В., Крылова Е.В. Тестирование на носительство наследственных заболеваний крупного рогатого скота бурой швицкой породы / ФГБУ «ВГНКИ». URL: https://www.vgnki.ru/assets/files/broshyura-o-testah-buroj-shvickoj-porody.pdf (дата обращения 26.06.2023).
Стрекозов Н.И., Сивкин Н.В., Чинаров В.И., Баутина О.В. (2017). Оценка молочных пород по воспроизводительным и адаптационным способностям // Зоотехния. № 5. С. 2–6.
Сударев Н.П., Шаркаева Г.А., Абылкасымов О.П. (2016). Разведение крупного рогатого скота голштинской и черно-пестрой пород в хозяйствах России, Центрального федерального округа и Тверской области // Зоотехния. № 3. С. 2–5.
Улимбашев М.Б., Хуранов А.М. (2017). Воспроизводительные качества голштинских помесей разного уровня продуктивности // Зоотехния. № 5. С. 25–27.
Федосенко Е.Г. (2012). Оценка племенного подбора при разведении скота костромской породы // Проблемы и перспективы аграрной науки в России: сб. ст. 11-й Всерос. науч.-практ. конф. молодых ученых и специалистов, посв. 135-летию А.И. Стебута. Саратов: РАСХН ГНУ НИИСХ Юго-Востока Россельхозакадемии. С. 135–138.
Федосенко Е.Г., Никонорова Н.В., Баранов А.В. (2016). Внутрилинейный подбор, кроссирование и сочетаемость линий крупного рогатого скота костромской породы // Современные наукоемкие технологии. Региональное приложение. № 4 (48). С. 131–135.
Шичкин Г.И., Тяпугин Е.Е., Амерханов Х.А. [и др.] (2023). Ежегодник по племенной работе в молочном скотоводстве в хозяйствах Российской Федерации – 2022. Лесные Поляны: ФГБНУ ВНИИПД. 255 с.
Яковлев А.Ф., Племяшов К.В. (2017). Молекулярные маркеры в повышении воспроизводства молочного скота // Генетика и разведение животных. № 4. С. 3–11.
Biscarini F., Schwarzenbacher H., Pausch H. [et al.] (2016). Use of SNP genotypes to identify carriers of harmful recessive mutations in cattle populations. BMC Genomics, 17 (1), 857. DOI: 10.1186/s12864-016-3218-9
Cole J.B., Null D.J., Vanraden P.M. (2016). Phenotypic and genetic effects of recessive haplotypes on yield, longevity, and fertility. Journal of Dairy Science, 99 (9), 7274–7288. DOI: 10.3168/jds.2015-10777
Cooper T.A., Wiggans G.R., Null D.J., Hutchison J.L., Cole J.B. (2013). Genomic evaluation of Ayrshire dairy cattle and new haplotypes affecting fertility and stillbirth in Holstein, Brown Swiss and Ayrshire breeds. Journal of Dairy Science, 97 (6), 3878–3882. DOI: 10.3168/jds.2013-7427
Frischknecht M., Bapst B., Seefried F.R. [et al.] (2017). Genome-wide association studies of fertility and calving traits in Brown Swiss cattle using imputed whole-genome sequences. BMC Genomics, 18 (1), 910. Available at: https://doi.org/10.1186/s12864-017-4308-z
Guarini A.R., Sargolzaei M., Brito L.F. [et al.] (2018). Estimating the impact of deleterious recessive haplotypes AH1 and AH2 on reproduction in Ayrshire Cattle. Journal of dairy Science, 102 (6), 5315–5322. DOI: 10.3168/jds.2018-15366
Häfliger I.M., Seefried F.R., Spengeler M., Drögemüller C. (2021). Mining massive genomic data of two Swiss Braunvieh cattle populations reveals six novel candidate variants that impair reproductive success. Genetics, selection, evolution: GSE, 53 (1), 95. Available at: https://doi.org/10.1186/s12711-021-00686-3
Kunz E., Rothammer S., Pausch H. [et al.] (2016). Confirmation of a non-synonymous SNP in PNPLA8 as a candidate causal mutation for Weaver syndrome in Brown Swiss cattle. Genetics, Selection, Evolution: GSE, 48, 21. DOI: 10.1186/s12711-016-0201-5
McClure M., Kim E., Bickhart D. [et al.] (2013). Fine mapping for Weaver syndrome in Brown Swiss cattle and the identification of 41 concordant mutations across NRCAM, PNPLA8 and CTTNBP2. PloS One, 8 (3), e59251. DOI: 10.1371/journal.pone.0059251
Mee J.F. (2020). Investigation of bovine abortion and stillbirth/perinatal mortality – similar diagnostic challenges, different approaches. Irish Veterinary Journal, 73, 20. Available at: https://doi.org/10.1186/s13620-020-00172-0
Miglior F. (2000). Impact of inbreeding – Managing a declining Holstein gene pool. Proceedings of the 10th World Holstein Friesian Federation Conference Sydney, 108–113.
Null D.J., Hutchison J.L., Bickhart D., Vanraden P.M., Cole J.B. (2017). Discovery of a haplotype affecting fertility in Ayrshire dairy cattle and identification of putative causal variant. Journal of Dairy Science, 100 (2), 199.
Sabetova K.D. [et al.] (2021). Test system for BLAD mutation diagnosis in cattle populations. Russian Journal of Genetics, 57, 8. 936–941. DOI: 10.1134/S1022795421080135
Schwarzenbacher H.A., Burgstaller J., Seefried F.R. [et al.] (2016). Missense mutation in TUBD1 is associated with high juvenile mortality in Braunvieh and Fleckvieh cattle. BMC Genomics, 17, 400. DOI: 10.1186/s12864-016-2742-y
Thomsen B., Nissen P.H., Agerholm J.S., Bendixen C. (2010). Congenital bovine spinal dysmyelination is caused by a missense mutation in the SPAST gene. Neurogenetics, 11 (2), 175–183. DOI: 10.1007/s10048-009-0214-0
Upperman, L.R., Kinghorn B.P., MacNeil M.D., van Eenennaam A.L. (2019). Management of lethal recessive alleles in beef cattle through the use of mate selection software. Genetics, selection, evolution: GSE, 51 (1), 36. Available at: https://doi.org/10.1186/s12711-019-0477-3
Venhoranta H., Pausch H., Flisikowski K. [et al.] (2014). In frame exon skipping in UBE3B is associated with developmental disorders and increased mortality in cattle. BMC Genomics, 15 (1), 890. DOI: 10.1186/1471-2164-15-890

Еще

Статья научная