Разработка мультиплексной панели микросателлитов для генетической паспортизации сибирского осетра (Acipenser baerii)

Автор: Бардуков Н.В., Никипелова А.К., Белоус А.А., Зиновьева Н.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Генетика и геномика

Статья в выпуске: 6 т.58, 2023 года.

Бесплатный доступ

Сибирский осетр ( Acipenser baerii Brandt, 1869) - один из наиболее значимых видов рыб аквакультуры в России. Благодаря высокому спросу на ценную товарную продукцию, разведение сибирского осетра - перспективное направление в развитии отрасли. Однако селекционно-племенную работу с этим видом существенно осложняет наличие тетраплоидного генома, что в совокупности с необходимостью смешивания икры и спермы от нескольких производителей при получении потомства препятствует введению в практику хорошо зарекомендовавших себя молекулярно-генетических методов, таких как микросателлитный анализ. В настоящей работе впервые дана характеристика известным микросателлитным локусам у сибирского осетра с точки зрения возможности эффективного учета доз их аллелей в тетраплоидном геноме. Обнаружено семь локусов, соответствующих этому критерию. Целью нашей работы стало создание панели микросателлитных маркеров, адаптированной для использования в селекции сибирского осетра ленской популяции. Исследования проводили в 2023 году. В качестве биологического материала использовали срезы плавниковой ткани сибирского осетра ленской популяции, взятые от рыб экспериментального стада, содержащегося в установке замкнутого водоснабжения ФИЦ животноводства - ВИЖ им. академика Л.К. Эрнста. Экспериментальное стадо содержало две группы: I - рыбы, полученные на Можайском производственно-экспериментальном рыбоводном заводе (д. Горетово, Можайский городской округ, Московская обл.; n = 42), II - рыбы, полученные от ООО РТФ «Диана» (рабочий пос. Кадуй, Кадуйский р-н, Вологодская обл.; n = 47). ДНК выделяли помощью набора ДНК-Экстран-2 (НПК «Синтол», Россия) согласно протоколу фирмы-производителя. Качественную оценку ДНК осуществляли методом электрофореза в агарозном геле (1,2 % агарозы). ПЦР выполняли на амплификаторе Thermal Cycler SimpliAmp («Thermo Fisher Scientific, Inc», США). Электрофоретическое разделение продуктов амплификации проводили в системе капиллярного электрофореза Нанофор 05 (НПК «Синтол», Россия). Размеры аллелей определяли с помощью программного обеспечения GeneMаrker (Version 3.0.1). Для каждого локуса определяли дозу каждого аллеля. Для тестирования использовали 27 микросателлитных маркеров: Ls 19, Aox 45, Aox 9, Ls 68, Agu 38, Ag 49a, Agu 37, Agu 41, Agu 15, Agu 51, Agu 59, Agu 34, Agu 36, Agu 46, Agu 56, Agu 54, AoxD 161, AfuG 63, AfuG 51, AfuG 112, An 20, Aru 13, Aru 18, Afu 68 b, Spl 163, AfuG41, Ls 39, ранее известных для осетровых видов рыб. Из них для включения в мультиплексные панели было отобрано семь (Agu 38, An 20, Aru 18, Ls 19, Ag 49a, Agu 37, Agu 41). На основании полиморфизма семи микросателлитных локусов для двух исследуемых групп особей сибирского осетра был выполнен расчет классических популяционно-генетических показателей: среднего числа аллелей на локус (Na = 6,86), числа эффективных аллелей (Ne = 3,61), наблюдаемой (Ho = 0,839) и ожидаемой (He = 0,6535) гетерозиготности. Выявлено отсутствие инбридинга в исследуемых группах (FIS = -0,340 и -0,173), а также наличие значительной генетической дифференциации между ними: значение генетической дистанции M. Nei составило 0,1340, индекс Fst = 0,0796. Группы сформировали два четких, практически не пересекающихся кластера на PCA-плоте, несмотря на то, что предки особей сибирского осетра у обеих групп имели изначально родственное происхождение. Был оценен вклад дозы аллеля тетраплоидного локуса в эффективность микросателлитного анализа: в среднем информативность каждого локуса повышалась на 32 %. Сопоставление результатов генетического анализа с имеющимися данными литературы позволяет предположить, что в аквакультуральных стадах сибирского осетра ленской популяции происходят процессы, связанные с изменением частот аллелей микросателлитных локусов, которые постепенно усиливают их генетическую дифференциацию. В результате работы была подтверждена высокая эффективность созданных панелей микросателлитных маркеров и их потенциальная пригодность для использования в генетической паспортизации - каждая особь сибирского осетра имела собственный генетический профиль. Распределение аллелей семи микросателлитных локусов указывало на формирование уникальной генетической структуры в стадах сибирского осетра в каждом из двух рыбоводных предприятий, которые были источниками рыбопосадочного материала.

Еще

Микросателлиты, тетраплоиды, сибирский осетр, осетроводство, нуль-аллели

Короткий адрес: https://sciup.org/142240677

IDR: 142240677   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2023.6.1057rus

Список литературы Разработка мультиплексной панели микросателлитов для генетической паспортизации сибирского осетра (Acipenser baerii)

  • Ashouri G .., Mahboobi Soofiani N., Hoseinifar S. H.H., Torfi Mozanzadeh M., Mani A., Khosravi A., Carnevali O. Compensatory growth, plasma hormones and metabolites in juvenile Siberian sturgeon ( Acipenser baerii , Brandt 1869) subjected to fasting and re feeding. Aquaculture Nutrition, 20 19 , 26 ( 400 409 (doi: 10.1111/anu.13002).
  • Bronzi P., Rosenth а l H. Present and future sturgeon and c а vi а r production and m а rketing: а glob аl mаrket overview. Journal of Applied Ichthyology , 2014, 30 ( 6): 1536 1546 (doi: 10.1111/jai.12628).
  • Bronzi P .., Chebanov M .., Michaels J T .., Wei Q .., Rosenthal H .., Gessner J. Sturgeon meat and caviar production: global update 2017. Journal of Applied Ichthyology 2019, 35 ( 257 266 (doi: 10.1111/jai.13870).
  • Ruban G., Mugue N. Acipenser baerii The IUCN Red List of Threatened Species , 2022: e.T244A156718817 (doi: 10.2305/IUCN.UK.2022 1.RLTS.T244A156718817.en).
  • Gisbert E. Williot P. Advances in the larval rearing of Siberian sturgeon. Journal of Fish Biology , 2002, 60 ( 5): 1071 1092 (doi : 10.1111/j.1095 8649.2002. tb01705.x).
  • Красильникова А.А., Тихомиров А. М. Получение жизнеспособной молоди русского осетра Acipenser gueldenstaedtii ) при использовании криоконсервированной спермы и оценка веденческих реакций у криопотомства. Сельскохозяйственная биология , 2018, 53(4): 762 768 (doi: 10.15389/agrobiology.2018.4. 762rus
  • Селионова М.И., Трухачев В.И., Айбазо в A M.M. M., Столповский Ю.А., Зиновьева Н. Генетические маркеры в козоводстве (обзор). Сельскохозяйственная биология , 2021, 56 6 1031 1048 ( doi : 10.15389/agrobiology.
  • Абдельманова А. С., Форнара М.С., Бардуков Н. В.В., Сермя гин А.А., Доцев А.В., Зиновьева Н.А. Полногеномное исследование ассоциаций SNP с высотой в холке в популяциях локальных и трансграничных пород крупного рогатого скота в России. Сельскохозяйственная биология , 2021, 56(6): 1111 1122 (doi: 10.15389/agrobiology.2021.6.1111rus).
  • Zhang W .., Zhao J .., He J .., Kang L .., Wang X .., Zhang F .., Hao C .., Ma X .., Chen D. Functional gene assessment of bread wheat: breeding implications in Ningxia Province. BMC Plant Biology, 2021, 21(1): 103 (do i: 10.1186/s12870 021 02870 5).
  • Barmintseva A. E., Mugue N.S. Natural genetic polymorphism and phylogeography of Siberian sturgeon Acipenser baerii Brandt, 1869. Russian Journal of Genetics 2017, 53: 358 368 ( doi: 10.1134/S1022795417030024
  • Shivaramu S .., Lebeda I .., Vuong D T .., Rodina M .., Gela D .., Flaj Flajšhans M. Ploidy l evels and itness r elated t raits in p urebreds and h ybrids o riginating from Sterlet ( Acipenser ruthenus ) and nusual p loidy l evels of Siberian s turgeon ( A. baerii ). Genes , 2020, 11( 1164 (doi: 10.3390/genes11101164).
  • Havelka M .., Bytyutskyy D .., Symonov Symonová R .., R Ráb P .., Flaj Flajšhans M. The second highest chromosome count among vertebrates is observed in cultured sturgeon and is associated with genome plasticity. Genetics Selection Evolution 2016, 48: 12 (doi: 10.1186/s12711 016 0194 0).
  • Ludwig A., Belfiore N., Pitra C., Svirsky V., Jenneckens I. Genome d uplication e vents and f unctional r eduction of p loidy l evel s in s turgeon (Acipenser, Huso and Scaphirhynchus). Genetics , 2001, 158 ( 1203 1215 ( doi: 10.1093/genetics/158.3.1203).
  • Барминцева А.Е. Филогеография и внутривидовой генетический полиморфизм сибирского осетра Acipenser baerii Brandt , 1869 в природе и аквакультуре. Канд . дис . М 2018.
  • Nei M. Estimation of average heterozygosity and genetic distance for small number of individuals. Genetics 1978, 89 ( 3): 583 590 (doi: 10.1093/genetics/89.3.583).
  • Nielsen R., Tarpy D.R .., Kern H. Estimating effective paternity number in social insects and the effective number of alleles in a population. Molecular Ecology , 2003, 12 ( 11): 3157 3164 (doi: 10.1046/j.1365 294X.2003.01994. x).
  • Weir B.S., Cockerham C. C. Estimating F statistics for the analysis of population structure. Evolution , 1984, 38 ( 6): 1358 1370 doi : 2307/2408641).
  • Clark L V Jasieniuk M. polysat: an R package for polyploid microsatellite analysis. Molecular Ecology Resources 2011, 11(3): 562 566 ( doi : 10.1111/j.1755 0998.2011. 02985.x).
  • Hubisz M J .., Falush D .., Stephens M .., Pritchard J K. Inferring weak population structure with the assistance of sample group information. Molecular Ecology Resources , 2009, 9( 1322 1332 (doi : 10.1111/j.1755 0998.2009.02591. x).
  • Hardy O., Vekemans X. SPAGeDI: A versatile computer program to analyse spatial genetic structure at the individual or population levels. Molecular Ecology Notes, 2002, 2(4): 618-620 (doi: 10.1046/j.1471-8286.2002.00305.x).
  • Bruvo R., Michiels N.K., D'souza T.G., Schulenburg H. A simple method for the calculation of microsatellite genotype distances irrespective of ploidy level. Molecular Ecology , 2004, 13(7): 2101 2106 (doi: 10.1111/j.1365 294X.2004.02209.x).
  • Georgescu S., Canareica O., Dudu A., Costache M. Analysis of the m icrosatellite v ariation in thec ommon h ybrid b etween Russian s turgeon ( Acipenser g ueldenstaedtii Brandt and Ratzeburg, 1833) and S iberian s turgeon ( Acipenser b aerii Brandt, 1869) from a quaculture. Transylvanian Review of Systematical and Ecological Research , 2013, 15 ( 117 124 ( doi: 10.2478/trser 2013 0024).
  • Georgescu S., Sergiu E., Canareica O., Popa G., Dudu A., Costache M. Characterization of five m icrosatellites in the Siberian s turgeon Acipenser b aerii from a quaculture. Journal of Animal Science and Biotechnology , 2013, 46: 95 98.
  • Kohlmann K., Kersten P., Ge Geßner J., Eroglu, O., Firidin S., Ciorpac M., Suciu R. Validation of 12 species specific, tetrasomic microsatellite loci from the Russian sturgeon, Acipenser guelden-staedtii , for genetic broodstock management. Aquaculture International , 2018, 26: 1365 1376 (10.1007/s10499 018 0290 y).
  • Smith C. T., Nel son R. J., Pollard S. S., Rubidge E., McKay S., Rodzen J., May B., Koop B. Population genetic analysis of white sturgeon ( Acipenser transmontanus ) in the Fraser River. Journal of Applied Ichthyology, 2002, 18 (4 6)6): 307 312 ( 10.1046/j.1439 0426.2002.00418.x).
  • Fopp Bayat D. Microsatellite DNA v ariation in the Siberian s turgeon, Acipenser b aeri Actinopterygii , Acipenseriformes , Acipenseridae ), cultured in a Polish f ish f arm. Acta Ichthyologica et Piscatoria , 2010, 40 ( 1): 21 25 doi: 10.3750/AIP2010.40.1.03).
  • Zhao N., Ai W., Shao Z., Zhu B., Brosse S., Chang J. Microsatellites assessment of Chinese sturgeon ( Acipenser sinensis Gray) genet ic variability. Journal of Applied Ichthyology , 2005 , 21 ( 1): 7 13 (doi 10.1111/j.1439 0426.2004.00630.x
  • Cui X., Li C., Qin S., Huang Z., Gan B., Jiang Z., Huang X., Yang X., Li Q., Xiang X. Chen J., Zhao Y., Rong J. High throughput sequencing based microsatellite genotyping for polyploids to resolve allele dosage uncertainty and improve analyses of genetic diversity, structure and differ-entiation: A case study of the hexaploidy Camellia oleifera . Molecular Ecology Resources , 2022, 22 ( 199 211 ( doi : 10.1111/1755 0998.13469).
  • Dakin E.E .., Avise J.C. Microsatellite null alleles in parentage analysis. Heredit y 2004, 93: 504 509 (doi: 10.1038/sj.hdy.6800545).
  • Parisod C .., Salmon A .., Zerjal T., Tenaillon M., Grandbastien M., A Aïnouche M. Rapid structural andepigenetic reorganization near transpo sable elements inhybrid and allopolyploid genomes in Spartina . New Phytologist , 2009, 184 ( 1003 1015 (doi 1 0.1111/j.1469 8137.2009.03029. x).
  • Dufresne F., Stift M., Vergilino R., Mable B. K. Recent progress and challenges in population genetics of polyploid organisms: an overview of current state of the art molecular and statistical tools. Molecular Ecology , 2013, 23(1): 40 69 (doi: 10.1111/mec.12581).
  • Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Генетический полиморфизм сибирского осетра Acipenser baerii Brandt, 186 9 в аквакультуре. Генетика, 2018, 54: 216 223 (doi: 10.7868/S0016675818020030
  • Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию. Т. 2. Породы животных . М., 2016.
Еще
Статья научная