Разработка ПЦР в режиме реального времени для выявления полевых изолятов вируса заразного узелкового дерматита в пробах от крупного рогатого скота
Автор: Пестова Я.Е., Артюхова Е.Е., Кострова Е.Е., Шумилова И.Н., Кононов А.В., Спрыгин А.В.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Вирусология
Статья в выпуске: 2 т.53, 2018 года.
Бесплатный доступ
Заразный узелковый дерматит (нодулярный дерматит, НД, бугорчатка, nodular dermatitis, lumpy skin disease, LSD) представляет серьезную угрозу скотоводству, в связи с чем необходимы надежные экспресс-методы для лабораторной диагностики заболевания на фоне применения живых гомологичных вакцин. Ранее предложенные и рекомендованные World Organization for Animal Health (Международное эпизоотическое бюро, Париж, OIE - МЭБ) методы выявляют также ДНК вирусов оспы овец и оспы коз. В классической ПЦР существует риск контаминации продуктами амплификации в связи с необходимостью электрофоретической детекции. C.E. Lamien с соавт. (2011) разработали метод детекции вируса заразного узелкового дерматита, вируса оспы коз и вируса оспы овец амплификацией фрагментов ДНК с последующим анализом их кривых плавления с высоким разрешением. Однако высокая зависимость метода от качества и концентрации ДНК в исследуемой пробе не позволяет использовать его в рутинной диагностике. Нами представлены результаты разработки, применения и оптимизации метода ПЦР в режиме реального времени (ПЦР-РВ) для выявления ДНК полевых изолятов вируса LSD в образцах биоматериала от крупного рогатого скота. Специфичность метода оценили с использованием ДНК гомологичных и гетерологичных вирусов, депонированных в коллекции микроорганизмов ФГБУ ВНИИЗЖ. Разработанный метод продемонстрировал высокую специфичность в отношении полевых изолятов вируса заразного узелкового дерматита. Ложноположительных результатов с аттенуированным вакцинным штаммом и родственными каприпоксвирусами не выявлены. Чувствительность метода, которую оценивали, используя 10-кратные разведения ДНК референтного штамма ВНД КРС/Дагестан/2015 (диагностический), составила 0,21 lg ТЦД50/мл. Показана эффективность амплификации 98,6 % с вариабельностью стандартного отклонения (±SD) при тестировании пяти 10-кратных разведений в 3-кратной повторности от 0,11 до 0,33. Валидацию метода проводили с образцами от экспериментально зараженных животных. Быков заражали подкожно, отбирали пробы цельной крови и носовых смывов. Дополнительно образцы анализировали методом классической ПЦР по D.C. Ireland и Y.S. Binepal (1998) (данные не приведены). При тестировании предложенная нами тест-система ПЦР-РВ для выявления ДНК полевых изолятов вируса заразного узелкового дерматита показала высокую специфичность и чувствительность и может быть рекомендован для анализа полевых образцов в профильных ветеринарных лабораториях.
Заразный узелковый дерматит, диагностика, пцр-рв, геном, вирус
Короткий адрес: https://sciup.org/142214142
IDR: 142214142 | DOI: 10.15389/agrobiology.2018.2.422rus
Список литературы Разработка ПЦР в режиме реального времени для выявления полевых изолятов вируса заразного узелкового дерматита в пробах от крупного рогатого скота
- Tuppurainen E.S., Venter E.H., Shisler J.L., Gari G., Mekonnen G.A., Juleff N., Lyons N.A., De Clercq K., Upton C., Bowden T.R., Babiuk S., Babiuk L.A. Capripoxvirus diseases: current status and opportunities for control. Transbound. Emerg. Dis., 2017, 64: 729-745 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12444
- Beard P.M. Lumpy skin disease: a direct threat to Europe. Vet. Rec., 2016, 28: 557-558 ( ) DOI: 10.1136/vr.i2800
- Şevik M., Doğan M. Epidemiological and molecular studies on lumpy skin disease outbreaks in Turkey during 2014-2015. Transbound. Emerg. Dis., 2016, 64(4): 1268-1279 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12501
- Abutarbush S.M., Ababneh M.M., Al Zoubi I.G., Al Sheyab O.M., Al Zoubi M.G., Alekish M.O., Al Gharabat R.J. Lumpy skin disease in Jordan: disease emergence, clinical signs, complications and preliminary-associated economic losses. Transbound. Emerg. Dis., 2015, 62(5): 549-554 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12177
- Мищенко А. В., Караулов А. К. Мищенко В. А. Нодулярный дерматит крупного рогатого скота. Ветеринария, 2016, 4: 3-6.
- Tasioudi K.E., Antoniou S.E., Iliadou P., Sachpatzidis A., Plevraki E., Agianniotaki E.I., Fouki C., Mangana-Vougiouka O., Chondrokouki E., Dile C. Emergence of lumpy skin disease in Greece, 2015. Transbound. Emerg. Dis., 2016, 63(3): 260-265 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12497
- Mercier A., Arsevska E., Bournez L., Bronner A., Calavas D., Cauchard J., Falala S., Caufour P., Tisseuil C., Lefrançois T., Lancelot R. Spread rate of lumpy skin disease in the Balkans, 2015-2016. Transbound. Emerg. Dis., 2018, 65(1): 240-243 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12624
- Tulman E.R., Afonso C.L., Lu Z., Zsak L., Kutish G.F., Rock D.L. Genome of lumpy skin disease virus. J. Virol., 2001, 75(15): 7122-7130 ( ) DOI: 10.1128/JVI.75.15.7122-7130.2001
- Chihota C.M., Rennie L.F., Kitching R.P., Mellor P.S. Mechanical transmission of lumpy skin disease virus by Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). Epidemiol. Infect., 2001, 126: 317-321 ( ) DOI: 10.1017/S0950268801005179
- Irons P.C., Tuppurainen E.S., Venter E.H. Excretion of lumpy skin disease virus in bull semen. Theriogenology, 2005, 63: 1290-1297 ( ) DOI: 10.1016/j.theriogenology.2004.06.013
- Annandale C.H., Holm D.E., Ebersohn K., Venter E. H. Seminal transmission of lumpy skin disease virus in heifers. Transbound. Emerg. Dis., 2013, 61: 443-448 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12045
- Tuppurainen E.S., Lubinga J.C., Stoltsz W.H., Troskie M., Carpenter S.T., Coetzer J.A., Venter E.H., Oura C.A. Evidence of vertical transmission of lumpy skin disease virus in Rhipicephalus decoloratus ticks. Ticks Tick Borne Dis., 2013, 4: 329-333 ( ) DOI: 10.1016/j.ttbdis.2013.01.006
- Lubinga J.C., Tuppurainen E.S., Mahlare R., Coetzer J.A., Stoltsz W.H., Venter E.H. Evidence of transstadial and mechanical transmission of lumpy skin disease virus by Amblyomma hebraeum ticks. Transbound. Emerg. Dis., 2013, 62: 174-182 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12102
- Макаров B.В., Грубый В.А., Груздев К.Н., Сухарев О.И. Список МЭБ и трансграничные инфекции животных: монография. М., 2012: 76-79.
- Beard P., Lubisi B.A. Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals 2017. Chapter 2.4.13. Lumpy skin disease. Режим доступа: http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_stand-ards/tahm/2.04.13_LSD.pdf. Дата обращения: 21.12.2017.
- Abera Z., Degefu H., Gari G., Ayana Z. Review on epidemiology and economic importance of lumpy skin disease. International Journal of Basic and Applied Virology, 2015, 4(1): 8-21 ( ) DOI: 10.5829/idosi.ijbav.2015.4.1.9117
- Мищенко А.В., Мищенко В.А., Кононов А.В., Шевкопляс В.Н., Джаилиди Г.А., Дресвянникова С.Г., Черных О.Ю. Проблема нодулярного дерматита крупного рогатого скота. Ветеринария Кубани, 2015, 5: 3-6.
- Ireland D.C., Binepal Y.S. Improved detection of capripoxvirus in biopsy samples by PCR. J. Virol. Methods, 1998, 74: 1-7 ( ) DOI: 10.1016/S0166-0934(98)00035-4
- Bowden T.R., Babiuk S.L., Parkyn G.R., Copps J.S., Boyle D.B. Capripoxvirus tissue tropism and shedding: a quantitative study in experimentally infected sheep and goats. Virology, 2008, 371(2): 380-393 ( ) DOI: 10.1016/j.virol.2007.10.002
- Lamien C.E., Lelenta M., Goger W., Silber R., Tuppurainen E., Matijevic M., Luckins A.G., Diallo A. Real time PCR method for simultaneous detection, quantitation and differentiation of capripoxviruses. J. Virol. Methods, 2011, 171: 134-140 ( ) DOI: 10.1016/j.jviromet.2010.10.014
- Кононова С.В., Шумилова И.Н., Бьядовская О.П. Методические рекомендации по выделению вируса нодулярного дерматита крупного рогатого скота в культуре клеток: методический материал. М., 2017: 5-17.
- Орлова Е.С., Щербаков А.В., Диев В.И., Захаров В.М. Видовая и штаммовая дифференциация каприпоксвирусов методом полимеразной цепной реакции. Молекулярная биология, 2006, 40(1): 158-164.
- Menasherow S., Rubinstein-Giuni M., Kovtunenko A., Eyngor Y., Fridgut O., Rotenberg D., Khinich Y., Stram Y. Development of an assay to differentiate between virulent and vaccine strains of lumpy skin disease virus (LSDV). J. Virol. Methods, 2014, 199: 95-101 ( ) DOI: 10.1016/j.jviromet.2013.12.013
- Şevik M., Avci O., Doğan M., İnce Ö.B. Serum biochemistry of lumpy skin disease virus-infected cattle. Biomed. Res. Int., 2016, 2016: 6257984 ( ) DOI: 10.1155/2016/6257984
- Balinsky C.A., Delhon G., Smoliga G., Prarat M., French R.A., Geary S.J., Rock D.L., Rodriguez L.L. Rapid preclinical detection of sheep pox virus by a real-time PCR assay. J. Clin. Microbiol., 2008, 46: 438-442 ( ) DOI: 10.1128/JCM.01953-07